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文檔簡介

1、二氮嗪預(yù)處理對缺氧復(fù)氧后大鼠海馬神經(jīng)元凋亡及JNK表達(dá)的影響 作者:劉榮國, 崔翔, 宋娜, 陳彥青【摘要】 目的 探討二氮嗪(DZ)預(yù)處理能否抑制CJun氨基末端激酶(JNK)表達(dá)而減輕缺氧復(fù)氧后大鼠海馬神經(jīng)元的凋亡。 方法 原代培養(yǎng)910 d的SD大鼠海馬神經(jīng)元隨機分為5組:對照組、DZ 0,30,100 mol/L和DZ 100 mol/L+5羥癸酸(5HD)100 mol/L預(yù)處理組。除對照組外,其余4組神經(jīng)元自缺氧前2 d開始,每天實施以上對應(yīng)濃度DZ預(yù)處理1 h,連續(xù)3 d。于體外缺氧4 h復(fù)氧48 h后,采用四唑藍(lán)比色法測定海馬神經(jīng)元活力,AnnexinFITC流式細(xì)胞術(shù)測定凋亡

2、率,Western blotting法檢測JNK蛋白表達(dá)。 結(jié)果 與對照組比較,缺氧復(fù)氧后海馬神經(jīng)元的活力下降,凋亡率增大,JNK蛋白表達(dá)增強(P<0.05)。與其他預(yù)處理組比較,DZ 100 mol/L預(yù)處理組的神經(jīng)元活力高,凋亡率低(P<0.05),其他預(yù)處理組間比較無統(tǒng)計學(xué)意義。DZ預(yù)處理后,JNK蛋白表達(dá)減低,且DZ 100 mol/L組表達(dá)弱于DZ 30 mol/L組(P<0.05)。同時給于5HD預(yù)處理后,DZ未能抑制JNK蛋白表達(dá)。 結(jié)論 DZ預(yù)處理可能抑制JNK表達(dá)而減輕缺氧復(fù)氧后大鼠海馬神經(jīng)元的凋亡。 【關(guān)鍵詞】 二氮嗪; 海馬; 疾

3、病模型,動物; 缺氧缺血,腦; 神經(jīng)元; 細(xì)胞凋亡; JNK絲裂原活化蛋白激酶類2 / 17 以二氮嗪(Diazoxide,DZ)為代表的線粒體內(nèi)膜上ATP敏感鉀通道(Mitochondrial ATP Sensitive Potassium Channel, MitoKATP)開放劑可模擬缺血預(yù)處理,激發(fā)腦的內(nèi)源性保護機制而增強抗損傷效果12。腦損傷患者的愈后與凋亡密切相關(guān)。cJun氨基末端激酶 (cJun Nterminal kinase,JNK)是有絲分裂原激活蛋白激酶超家族成員之一,具有促凋亡和抗凋亡的雙重功能,發(fā)揮哪一功能受到細(xì)胞類型、刺激方式、持續(xù)時間以及其他信號的影響,在離體培養(yǎng)

4、大鼠海馬神經(jīng)元缺氧實驗中,JNK信號主要發(fā)揮促凋亡作用34。本研究以原代培養(yǎng)的大鼠海馬神經(jīng)元為實驗對象,探討DZ預(yù)處理能否抑制JNK信號蛋白表達(dá)而減低缺氧復(fù)氧后大鼠海馬神經(jīng)元的凋亡,旨在進(jìn)一步了解藥物預(yù)處理的抗損傷機制。1 材料與方法1.1 主要藥品、試劑和儀器 二氮嗪(批號:022K1516)、5羥癸酸(5Hydroxydecanoate,5HD,批號:057H5076)購自美國Sigma公司;Annexin FITC試劑為美國BD公司產(chǎn)品;多克隆兔抗大鼠JNK抗體(FL型SC57)、山羊抗兔IgG抗體購自美國Santa cruz公司。密閉缺氧裝置為北京通達(dá)科技公司產(chǎn)品;電泳儀(MiniPr

5、otean3,美國Amersham Biosciences公司);酶標(biāo)儀(Model 550,美國BioRad公司);凝膠成像系統(tǒng)(Gel Doc XR+,美國BioRad公司);流式細(xì)胞儀(FACS Calibur,美國BD公司)。1.2 方法1.2.1 大鼠海馬神經(jīng)元原代培養(yǎng)和鑒定 取新生SD大鼠出生時間<24 h,56 g,二級,上海實驗動物中心提供(許可證號:SCXK滬20070005),經(jīng)消毒、斷頭后分離出海馬,切碎并移入0.125%胰蛋白酶溶液中消化30 min。終止消化,吹打細(xì)胞懸液,以5×105 mL1的細(xì)胞密度接種于直徑35 mm培養(yǎng)皿或96孔板中,每

6、皿2 mL或每孔100 L,置于37 、體積分?jǐn)?shù)為0.1的CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),910 d后行實驗。神經(jīng)元鑒定方法為:培養(yǎng)至第9天,應(yīng)用神經(jīng)元特異性烯醇化酶(Neuron Specific Enolase,NSE)免疫細(xì)胞化學(xué)染色,海馬神經(jīng)元細(xì)胞質(zhì)和突起被染成棕褐色,為陽性細(xì)胞;未被染色的細(xì)胞為陰性細(xì)胞。1.2.2 實驗分組、缺氧方法和DZ預(yù)處理方法 大鼠海馬神經(jīng)元分為對照組(A組)、DZ 0 mol/L組(B組)、DZ 30 mol/L組(C組)、DZ 100 mol/L組(D組)、DZ 100 mol/L+5HD 100 mol/L(E組)。每次實驗每組采用12孔或2皿,實驗重復(fù)3次。除對照

7、組外,其他組于缺氧前2 d開始,每天實施以上對應(yīng)濃度DZ預(yù)處理,每次1 h,隨后培養(yǎng)液全量置換,連續(xù)3 d。將海馬神經(jīng)元置入密閉缺氧裝置中后,充體積分?jǐn)?shù)為0.95的N20.05的CO2氣體4 h,流速為0.2 L/min,以造成缺氧環(huán)境,于復(fù)氧48 h測定相關(guān)指標(biāo)。1.2.3 四唑藍(lán)比色法測定神經(jīng)元活力 96孔板之每孔中加入5 mg/mL四甲基偶氮唑藍(lán)磷酸緩沖液10 L,繼續(xù)培養(yǎng)4 h后棄去上清液,再加入100 L二甲基亞砜均勻振蕩10 min,在酶標(biāo)儀(測量波長600 nm)上讀取數(shù)值為吸光度值,以吸光度值表示海馬神經(jīng)元的活力。1.2.4 Annexin VFITC法檢測神經(jīng)元凋亡率 海馬神

8、經(jīng)元按以下程序處理:0.1 mol/L PBS漂洗后,0.125%胰蛋白酶消化5 min,終止消化后制備單細(xì)胞懸液,收集細(xì)胞并離心(1 000 r/min)5 min,棄去胰蛋白酶后,0.1 mol/L PBS漂洗2次,以含Ca2+緩沖液將神經(jīng)元濃度稀釋為1×106 mL1,加Annexin V(120)避光反應(yīng)10 min,再以PI(120)標(biāo)記后,立即在流式細(xì)胞儀上測定凋亡率。1.2.5 Western blot檢測JNK蛋白的表達(dá) 采集細(xì)胞后,1 200 r/min離心5 min收集細(xì)胞,加入80 L細(xì)胞裂解液,冰上裂解30 min后,4 再離心(12 000 r/ min)5

9、 min。上樣前將樣品煮沸5 min,計算含50 g蛋白的溶液體積即為上樣量。垂直電泳兩玻璃板間隙中灌注12%分離膠及5%濃縮膠,加入Marker 10 L,其余空格按預(yù)定順序加樣。電泳在濃縮膠電壓80 V,分離膠電壓100 V,總時間2.5 h左右;而后在4 、電流200 mA條件下轉(zhuǎn)膜4560 min,將蛋白轉(zhuǎn)移至NC膜,10%脫脂牛奶封閉NC膜2 h,將多克隆兔抗大鼠JNK抗體(1500)與NC膜充分接觸雜交,4 下過夜,后與actin(11 000)雜交反應(yīng)35 h,再與山羊抗兔IgG抗體二抗(12 000)于室溫下孵育2 h,然后顯影、定影、圖象分析。結(jié)果用Gel Doc凝膠成像分析

10、系統(tǒng)掃描目標(biāo)條帶的分子量,成像結(jié)果用Quantity One軟件行半定量分析,以A組為對照,取相對值。1.3 統(tǒng)計學(xué)處理 計量資料以x±s表示,采用SPSS 13.0統(tǒng)計軟件包進(jìn)行數(shù)據(jù)處理。單因素方差分析,Newmankeuls兩兩比較。P<0.05為差別有統(tǒng)計學(xué)意義。2 結(jié) 果2.1 海馬神經(jīng)元的鑒定結(jié)果及活力、凋亡率比較 光鏡下隨機計數(shù)8個非重疊視野細(xì)胞,計算NSE陽性細(xì)胞百分率,海馬神經(jīng)元所占比例為(87.7±5.6)%,見圖1。缺氧復(fù)氧后海馬神經(jīng)元活力下降,凋亡率增大(P<0.05);D組活力高于其他缺氧組,而凋亡率則低于其他缺氧組(P&

11、amp;lt;0.05)。各組海馬神經(jīng)元吸光度值、凋亡率比較見表1。 細(xì)胞質(zhì)和突起被染成棕褐色為海馬神經(jīng)元,其他未被深染色的細(xì)胞為非神經(jīng)元.表1 各組海馬神經(jīng)元的吸光度、凋亡率和JNK蛋白表達(dá)比較2.2 JNK蛋白的定量分析 缺氧復(fù)氧后,JNK蛋白表達(dá)增強。與B組比較,C和D組JNK表達(dá)均明顯減弱(P<0.05),JNK在C組減弱19%,D組減弱35%。B組與E組比較無統(tǒng)計學(xué)差異(P>0.05)。與C組比較,D組的JNK表達(dá)減弱(P<0.05)。各組JNK蛋白具體表達(dá)和比較見圖2和表1。3 討 論腦缺血/缺氧嚴(yán)重危害人類健康,積極探索缺血/缺氧導(dǎo)致腦損

12、傷機制和有效防治措施,具有重要的臨床價值。在腦內(nèi),MitoKATP含量極為豐富,DZ激活MitoKATP后能產(chǎn)生理想的保護效果。本研究中DZ預(yù)處理的劑量、時間、方法和5HD劑量是根據(jù)前期實驗基礎(chǔ)確定的5。應(yīng)用四唑藍(lán)比色法測定活細(xì)胞的吸光密度值代表細(xì)胞的活力,可以反映海馬神經(jīng)元的存活率。缺氧復(fù)氧損傷后,DZ 100 mol/L組活力大于DZ 0 mol/L組、凋亡率低于DZ 0 mol/L組;而DZ+5HD組與DZ 0 mol/L組的活力和凋亡率比較無統(tǒng)計學(xué)差異,以上說明DZ 100 mol/L可通過開放MitoKATP通道誘導(dǎo)海馬神經(jīng)元產(chǎn)生缺氧耐受。已知的主要機制是,開放MitoKATP可降低

13、線粒體膜電位,線粒體適度去極化,抑制細(xì)胞質(zhì)鈣離子向線粒體內(nèi)流,減輕線粒體內(nèi)鈣超載6;限制缺氧/缺血后線粒體的腫脹,使線粒體的體積保持在適當(dāng)范圍內(nèi)以維持線粒體內(nèi)電子傳遞和能量生成7;MitoKATP的活化還可以減少細(xì)胞色素C的釋放,誘導(dǎo)Bcl2表達(dá)增加,抑制Bax易位,抑制凋亡發(fā)生5。實驗中,DZ 30 mol/L組與DZ 0 mol/L組的活力、凋亡率比較均未見統(tǒng)計學(xué)差異,這同時提示DZ發(fā)揮預(yù)處理效應(yīng)與劑量有關(guān)。JNK為54kD的絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶,含雙磷酸化功能區(qū)ThrProTyr,可與cJun N端的活化區(qū)結(jié)合并使其第63、73位絲氨酸殘基磷酸化,因而又被稱為cJUN氨基末端激酶。目前

14、認(rèn)為,JNK可通過以下途徑發(fā)揮促凋亡作用810:增強轉(zhuǎn)錄因子復(fù)合物AP1的活性從而促進(jìn)多種凋亡蛋白表達(dá);磷酸化并抑制線粒體膜上的Bcl2和Bclxl,線粒體膜上PT孔開放,釋放cytc入細(xì)胞質(zhì);刺激下游底物Bim,將信號傳到Bax,也可導(dǎo)致線粒體釋放cytc。本實驗中,與對照組比較,缺氧復(fù)氧后各組JNK蛋白表達(dá)程度明顯增強的同時,凋亡率增大,存活率下降,提示JNK信號通路可能參與了缺氧復(fù)氧損傷所致的細(xì)胞凋亡損傷過程。與DZ 0 mol/L組比較,DZ 100 mol/L組JNK蛋白表達(dá)明顯減弱,凋亡率下降,活力升高;而給予MitoKATP 通道的選擇性抑制劑5HD后,以上變化被消除,提示DZ預(yù)

15、處理可能通過抑制JNK活性表達(dá),減輕凋亡發(fā)生。Jiang等在對新生大鼠海馬和皮質(zhì)缺血/缺氧的研究中,發(fā)現(xiàn)DZ預(yù)處理能抑制細(xì)胞核JNK的底物cJun蛋白的表達(dá)增加11。盡管DZ 30 mol/L和DZ 100 mol/L組的JNK蛋白表達(dá)有統(tǒng)計學(xué)差異,但此2組之間的凋亡率和活力比較無統(tǒng)計學(xué)差異,這可能是缺氧復(fù)氧后神經(jīng)元的凋亡同時受多種信號轉(zhuǎn)導(dǎo)調(diào)控,受其他因素的干擾,DZ 30 mol/L未能有效減低凋亡率。筆者認(rèn)為,JNK信號在誘導(dǎo)海馬神經(jīng)元細(xì)胞凋亡過程中起重要作用,DZ可能抑制JNK的表達(dá)而減低缺氧復(fù)氧后大鼠海馬神經(jīng)元的凋亡。但DZ如何抑制JNK信號轉(zhuǎn)導(dǎo),JNK出現(xiàn)的高峰及與細(xì)胞凋亡的具體關(guān)聯(lián)

16、,尚需進(jìn)一步研究?!緟⒖嘉墨I(xiàn)】 1 Rajapakse N,Shimizu K,Kis B,et al. Activation of mitochondrial ATPsensitive potassium channels prevents neuronal cell death after ischemia in neonatal ratsJ. Neurosci Lett, 2002,327(3):208212.2 Dirnagl U,Simon R P,Hallenbeck J M. Ischemic tolerance and endogenous neuroprotectionJ.

17、Trends Neurosci, 2003,26(5):248254.3 Kuan C Y,Whitmarsh A J,Yang D D,et al. A critical role of neuralspecific JNK3 for ischemic apoptosisJ. Proc Natl Acad Sci USA, 2003,100(25):1518415189.4 Shinozaki Y,Sato Y,Koizumi S,et al. Retinoic acids acting through retinoid receptors protect hippocampal neuro

18、ns from oxygenglucose deprivationmediated cell death by inhibition of cjunNterminal kinase and p38 mitogenactivated protein kinaseJ. Neuroscience, 2007,147(1):153163.5 Liu R G,Wang W J,Song N,et al. Diazoxide preconditioning alleviates apoptosis of hippocampal neurons induced by anoxiareoxygenation

19、in vitro through upregulation of Bcl2/Bax protein ratioJ. Acta Physiologica Sinica, 2006,58(4):345350.6 Domoki F,Bari F,Nagy K,et al. Diazoxide prevents mitochondrial swelling and Ca2+ accumulation in CA1 pyramidal cells after cerebral ischemia in newborn pigsJ. Brain Res, 2004,1019(12):97104.7 蔡揚帆,

20、林霓陽. 神經(jīng)元線粒體ATP敏感性鉀通道與腦保護的研究進(jìn)展J. 國際內(nèi)科學(xué)雜志,2007,34(6):362365.8 Chen R W,Qin Z H,Ren M,et al. Regulation of cJun Nterminal kinase, p38 kinase and AP1 DNA binding in cultured brain neurons: roles in glutamate excitotoxicity and lithium neuroprotectionJ. J Neurochem, 2003,84(3):566575.9 Tournier C,Hess P,Ya

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