常用實驗動物的實驗基本操作技術(shù)

1、常用實驗動物的實驗根本操作技術(shù)第一節(jié) 常用實驗動物的生物學特征1蛙或蟾蜍的生物學特點是什么？主要用于哪些實驗？ 屬于兩棲變溫動物，皮膚光滑濕潤，有腺體無外鱗。蛙的心臟有兩個心房，一個心室， 心房與心室區(qū)分不明顯， 動靜脈血液混合，有冬眠習性。 生存環(huán)境比哺乳動物簡單，在機能 學實驗中有多種實驗選擇該動物。女口：離體蛙心實驗，常用來研究心臟的生理功能及藥物對心臟活動的影響。 蛙的腓腸肌和坐骨神經(jīng)可用于觀察外周神經(jīng)及其肌肉的功能， 以及藥 物對周圍神經(jīng)、骨骼肌或神經(jīng)肌肉接頭的影響?？p匠肌可用于記錄終板電位。脊休克、脊 髓反射、反射弧分析、腸系膜微循環(huán)等。在臨床檢驗中，可用雄蛙作妊娠反響實驗。2小白

2、鼠的生物學特征是什么？主要用于哪些實驗？ 小白鼠性情溫順，易于捕捉，膽小怕驚，對外來刺激敏感。它胃容量小，不耐饑渴，隨時采食。 在機能學實驗中常選用該動物。故適用于大量的實驗動物，如： 某些藥物的篩選實驗、半數(shù)致死量LD50測定、藥效比擬、毒性實驗、妊娠期 20天左右，常用于避孕藥 實驗及抗癌藥實驗。3 大白鼠的生物學特征是什么？主要用于哪些實驗？ 大白鼠性情溫順，行動緩慢，易于捕捉， 但受驚嚇或粗暴操作時， 會緊張不安甚至攻擊 人。大鼠嗅覺興旺，對外界刺激敏感，抵抗力較強。大鼠無膽囊，腎單位表淺，肝再生能力 強。大鼠的血壓反響比兔穩(wěn)定， 可用它作血壓實驗， 也可用于慢性實驗、 抗炎、 降脂、

3、 利膽、 子宮實驗及心血管系統(tǒng)的實驗。 藥典規(guī)定該動物為催產(chǎn)素效價測定及藥品指控中升壓物質(zhì)檢 查指定動物。4豚鼠生物學特征是什么？主要用于哪些實驗？ 豚鼠性情溫和，膽小，飼養(yǎng)管理方便，可群養(yǎng)。豚鼠耳蝸管興旺，聽覺靈敏，存在可 見的普賴厄反射 聽覺耳動反射 ，乳突部骨質(zhì)薄弱。豚鼠對組織胺、人型結(jié)核桿菌很敏感。 能耐受腹腔手術(shù)，使用于腎上腺機能的研究。其自身不能制造維生素C,是研究實驗性壞血癥的唯一動物。5家兔生物學特征是什么？主要用于哪些實驗？家兔屬于草食性動物，性情溫順但群居性差，聽覺、嗅覺十分靈敏，膽小易驚，具夜行 性和嗜睡性。它主要利用呼吸散熱維持體溫平衡， 耐冷不耐熱，厭濕喜干。 家兔廣

4、泛應(yīng)用于 醫(yī)學研究中。由于兔耳血管豐富，耳靜脈表淺，易暴露，是靜脈給藥及采血的最正確部位。 兔的減壓神經(jīng)在頸部與迷走交感神經(jīng)分開走行而自成一束， 常用于研究減壓神經(jīng)與心血管活 動的關(guān)系。 家兔的體溫調(diào)節(jié)較穩(wěn)定， 反響靈敏，常用于發(fā)熱研究和熱源試驗，是藥品質(zhì)控中 熱源檢查的指定動物。 家兔對組織胺不敏感， 不發(fā)生嘔吐， 因此不適用于組織胺過敏性休克、 催吐和鎮(zhèn)吐藥物的研究。6貓生物學特征是什么？主要用于哪些實驗？： 貓?zhí)焐髦囟窠?jīng)質(zhì)的動物。反響靈敏， 喜愛孤獨而自由地生活， 喜居明亮枯燥處。貓 循環(huán)系統(tǒng)興旺， 血管堅韌，血壓穩(wěn)定，對降壓物質(zhì)反響特別敏感， 是藥品質(zhì)控中降壓物質(zhì)檢 查的指定動物。

5、 還可做去大腦僵直、 姿勢反射和虹膜反響以及呼吸、 心血管反射的調(diào)節(jié)實驗 等。7 狗生物學特征是什么？主要用于哪些實驗？ 狗品種繁多，個體差異大。聽、嗅覺靈敏，反響敏捷，對外界環(huán)境適應(yīng)能力強，易馴養(yǎng)， 經(jīng)過訓(xùn)練后能很好地配合實驗。狗在根底醫(yī)學研究和教學實驗中是最常用的實驗動物之一。常用于心血管系統(tǒng)、脊髓傳導(dǎo)、 大腦皮層功能定位、條件發(fā)射、內(nèi)分泌腺摘除和各種消化系統(tǒng)功能的實驗研究。特別適用于實驗外科學的研究， 是臨床探索新的手術(shù)方法和觀察手術(shù)療效的首選實驗動物。第二節(jié) 醫(yī)學機能學實驗根本操作技術(shù)1 實驗常用動物的選擇和準備1在醫(yī)學實驗中最常用的動物有哪些？選擇動物的原那么是什么？在機能學實驗中最

6、常選用的哺乳類、兩棲類動物有兔、狗、貓、大鼠、小鼠、豚鼠、蛙等。實驗動物的選擇首先根據(jù)實驗的目的和要求、動物的特點生理特點和對某些藥物反響 的敏感性以及一些實際情況如動物來源如何、飼養(yǎng)管理條件、經(jīng)費等 。在實驗動物的 選擇上，必須注意三點，即動物的種類、品系和個體差異，如果選用動物不當，會出現(xiàn)與人 類藥效不符的現(xiàn)象， 因此必須選用最適宜的動物進展實驗。 為了獲得理想的實驗結(jié)果， 就要 選擇安康動物進展實驗，動物的安康狀態(tài)可以從動物的活動情況、外觀來加以判斷，如狗、 貓、兔、大鼠、小鼠等。當動物有病時，常表現(xiàn)為精神不振、行動緩慢、毛發(fā)蓬亂無光澤、因年鼻部皮膚枯燥并流鼻水、 眼有分泌物等。 進展慢

7、性實驗時應(yīng)選擇年輕強健的雄性動物， 老動物的耐受力差，術(shù)后不易恢復(fù)，故不大選用。一般在實驗前 12 小時禁食，可飲水。慢 性實驗應(yīng)提前數(shù)周將動物放到實驗室， 讓動物進展熟悉和適應(yīng)環(huán)境， 為實驗前做好一切準備 工作。實驗者術(shù)后要耐心細致的觀察動物的一切狀況包括動物的活動及進食情況 ，最好 親自護理和喂養(yǎng)。2動物實驗的常用方法有哪些？ 動物實驗方法已成為醫(yī)學科學研究和實驗教學及相關(guān)學科研究中不可缺少的重要手段。 動物的實驗方法是多種多樣的， 在醫(yī)學的各個學科領(lǐng)域內(nèi)都有其不同的應(yīng)用， 但根本的實驗 方法那么是共同的， 如安康動物的識別、選擇、抓取、固定、麻醉、動物分組、編號、 脫毛、給藥、采血、取尿

8、、急救、處死、尸檢等，不管從事何種課題的醫(yī)學研究都涉及到這 套實驗動物根本操作方法。動物實驗按機體水平不同可分為整體實驗和離體實驗。還可進一步具體分為分子、亞細胞、細胞、組織、器官、整體動物和無損傷動物等水平的實驗。按動物時間的長短那么可分為急性實驗和慢性實驗。按學科的實驗方法可分為生理學的動物實驗方法， 病理生理學的動物實驗方法， 藥理學的動物實驗方法， 病理解剖學、組織學 的動物實驗方法等。3如何合理選擇實驗動物和充分利用動物？在醫(yī)學研究中合理地選擇好實驗動物是非常重要的， 不同的實驗有不同的目的要求， 而 各種動物又有自己的生物特點和解剖生理特征。 如果選擇得當， 那么可用少量的人力、

9、動物 和時間，以最小的代價最大限度地獲得可靠的實驗結(jié)果。否那么，不僅造成不必要的浪費， 更嚴重的是會影響實驗結(jié)果的判斷。 因此應(yīng)選擇那些構(gòu)造、 機能、 代謝和人類相似的動物進 展實驗。大型靈長類動物數(shù)量少，價格昂貴，不易獲得，而且遺傳和微生物控制較困難，一 般在醫(yī)學實驗中較少使用，而用一般動物替代。如： 狗具有興旺的血液循環(huán)和神經(jīng)系統(tǒng)， 消 化過程與人相似， 適用于作營養(yǎng)學、 毒理學、 生理學及實驗外科學研究。 兩棲類的蛙和蟾蜍， 大腦很不興旺， 和人類相差甚遠， 當然不能用于高級神經(jīng)活動的研究， 進展簡單的反射弧試 驗，選用蛙很適宜， 因為最簡單的反射中樞位于脊髓， 而蛙的脊髓已開展到適合該

10、實驗要求 的階段，構(gòu)造簡單，容易分析，而高等動物的反射弧復(fù)雜而難于分析。兔的主動脈神經(jīng)減 壓神經(jīng)自成一束， 多用于減壓反射或減壓神經(jīng)放電實驗。豚鼠耳蝸較興旺，常用于引導(dǎo)耳 蝸微音器電位。 大鼠、狗、 貓的心臟比兔心更強更持久，所以常用于血流動力學及冠狀循環(huán) 的研究。為了充分利用好動物， 節(jié)省經(jīng)費， 可在不影響實驗結(jié)果的情況下， 在同一動物身上進展 不同的實驗內(nèi)容。如：用兔取心臟、小腸分別做離體灌流實驗。胸內(nèi)負壓與呼吸運動調(diào)節(jié)， 膈神經(jīng)放電實驗可先后結(jié)合起來。 皮層誘發(fā)電位與大腦皮層運動機能定位及去大腦僵直實驗 可結(jié)合起來。在同一只蛙上可先做期前收縮或代償間歇實驗，再做蛙心起搏點觀察。2 實驗動

11、物的捉持與固定. 正確的捉拿固定動物是為了不損害動物安康，不影響觀察指標，并防止被動物咬傷， 保證實驗順利進展。1如何正確捉拿及固定狗？對于未經(jīng)馴服的犬， 需先用特制鐵鉗夾住頭頸將其按倒， 以繩索捆扎犬嘴。 綁嘴時，繩 帶先從嘴角繞至鼻上方打一結(jié)， 再將繩帶繞到嘴下方打一結(jié)， 然后將繩帶拉到耳后頸部打結(jié) 固定， 方可給藥。 對于已經(jīng)馴養(yǎng)的犬， 不易用鐵鉗夾頭， 實驗者先對其愛撫， 逐漸接近動物， 給狗帶好嘴罩固定， 分別把狗的四肢 右上右下， 左上左下 用帶子捆綁好， 然后開場麻醉。 首先將狗放到解剖臺上， 把頸部拉直固定好頭部， 取繩索用其一端分別綁在前肢的腕關(guān)節(jié)上 部和后肢的踝關(guān)節(jié)上部，繩

12、索的另一端分別固定在實驗臺同側(cè)的固定鉤上。固定兩前肢時， 亦可將兩根繩索穿插從狗的背后穿過，分別綁在實驗臺兩側(cè)的固定鉤上。 2如何正確捉拿及固定家兔？家兔比擬馴服不會咬人， 但腳抓較尖，應(yīng)防止抓傷。首先右手抓住兔的頸背部皮膚，輕 輕提起，左手托起臀部，使兔成坐位姿勢，切忌捉拿雙耳。把兔放入固定器內(nèi)，開場麻醉。 將麻醉好的家兔取仰臥位， 用一根棉繩的一端打個活節(jié)套牽引兔的兩只上門齒， 另一端栓在 手術(shù)臺前端的鐵柱上。四肢固定方法參照狗的四肢固定法。 3如何正確捉拿及固定貓？捉持貓時應(yīng)帶手套， 注意防止被其抓傷， 將貓裝在布袋內(nèi)，然后逐漸收縮布袋，將貓推到 袋角按住頭部和軀體， 隔著布層作腹腔內(nèi)注

13、射麻醉。 貓的頭部和四肢固定方法可參照兔的固 定方法進展。 4如何正確捉拿及固定大白鼠？以防大鼠在驚慌或激怒時咬傷手指， 捉拿時最好帶上防護手套， 右手抓住鼠尾立即提起， 放在易攀抓的粗糟面上，用左手拇指和食指抓住其兩頰及后枕部皮膚，充分固定慎防咬傷， 其余手指握住整個鼠體， 注意握力不要太大， 以免大鼠窒息死亡。 然后將其腹部向上， 作腹 腔麻醉，最后固定。 5如何正確捉拿及固定小白鼠？小鼠性情溫順， 一般不會主動咬人， 但取用時動作也要輕緩。 抓取時先用右手提起鼠尾， 放在鼠籠蓋上或易攀抓的粗糟面上， 將鼠尾向后輕拉， 此時小鼠前肢緊緊抓住粗糟面， 迅速 用左手拇指及食指沿其背向前捏住兩耳

14、和頭頸部皮膚， 將小鼠尾巴夾在無名指、 小指和手掌 之間。6如何正確捉拿及固定蛙？ 實驗者左手食指和中指夾住蛙兩前肢，無名指和小指夾住兩后肢，拇指觸摸枕骨大孔位 置，右手持探針刺入枕骨大孔， 破壞腦脊髓。 在抓取蟾蜍時， 應(yīng)注意勿擠壓其兩側(cè)耳部突起 之毒腺，以免毒液噴出射進眼中。7如何正確捉拿及固定豚鼠？ 豚鼠較為膽小易驚，所以在抓取時，必須穩(wěn)、準和迅速。抓取幼小豚鼠時，用兩手捧起 來，成熟動物那么用右手大把抓起來，用手固定， 方法是先用手掌迅速扣住鼠背， 抓住其肩 胛上方， 以拇指和食指環(huán)握頸部， 另一只手托住臀部。 也可用固定器固定豚鼠或?qū)㈦嗍笏闹?固定在木板上。3實驗動物被毛的去除動物的

15、被毛常能影響實驗操作和實驗結(jié)果的觀察， 因此實驗中常需去除或剪短動物的被 毛，有時需標號或區(qū)別動物也需剪毛或脫毛。常用的去毛方法有剪毛、撥毛和脫毛三種。 1何謂剪毛法？如何進展？剪毛法是急性實驗中最常用的方法。 將動物固定好， 用剪刀緊貼動物皮膚將所需去毛部 位的被毛剪去。必要時可用拇指和食指拉緊皮膚剪毛，不可用手提起被毛，以免剪破皮膚。 剪下的被毛集中在一個容器內(nèi)， 容器內(nèi)加水以防剪下的毛亂飛， 勿遺留剪下的毛在手術(shù)部位 或?qū)嶒灜h(huán)境中，以免剪下的毛影響實驗。2何謂拔毛法？如何進展？ 拔毛法為用拇指和食指將所需部位皮毛拔出， 兔耳緣靜脈注射或取血時以及給大、 小鼠 作尾靜脈注射時常用此法。 也

16、可用膠布或醫(yī)用橡皮膏在去毛部位反復(fù)輕貼輕拉去毛。 此方法 簡便，但毛囊易受損。 3何謂脫毛法？ 如何配置脫毛劑？采用化學脫毛劑將動物被毛脫去。 此種方法常用于大動物無菌手術(shù)， 觀察動物局部血液 循環(huán)或其他各種病理變化。常用的脫毛劑配方： 硫化鈉8g溶于100ml水中，配成8%硫化鈉水溶液； 硫化 鈉3g、肥皂粉1份、淀粉7份，加水混合，調(diào)成糊狀軟膏； 硫化鈉8g、淀粉7g、糖 4g、甘油5g、硼砂1g、水75g,共100g,調(diào)成糊狀； 硫化堿10g染土布用、生石 灰15g,加水至100g,溶解后即可使用；各種脫毛劑用法：將脫毛部位的被毛先用剪刀剪短， 以節(jié)省脫毛劑的用量，用棉球或紗布塊蘸脫毛劑

17、在脫毛部位涂成薄層， 23min 后用溫水洗去該部位脫下的毛，再用干紗布 將水檫干，涂上一層油脂。采用上述 13 種配方，對家兔、大鼠、小鼠等小動物脫毛效果較 好。第 4 種配方對鉤等大動物的脫毛效果很好。4實驗動物性別的鑒別 ？ 1 如何鑒別小、大鼠的性別？根據(jù)外生殖器 陰蒂或陰莖 與肛門之間的距離來判斷這些動物新生仔的性別， 一般間 隔短的是雄性， 外生殖器陰莖與陰蒂大， 但是對此判別要有一定經(jīng)歷， 成熟期雌性有陰道口， 雄性有膨起的陰囊和陰莖。2如何鑒別豚鼠的性別？雌性外生殖器陰蒂突起比擬小， 用拇指按住這個突起， 其余指撥開大陰唇的被 ，可看 到陰道口， 但一定要注意， 豚鼠的陰道口除

18、發(fā)情期以外有閉鎖膜關(guān)閉著， 雄性外生殖器處有 包皮覆蓋的陰莖的小隆起，用拇指輕輕按住包皮小突起的基部，龜頭突出容易判斷。3如何鑒別家兔的性別？新生仔兔的性別判斷比大鼠等困難。 雌雄是根據(jù)肛門和尿道開口部之間的距離以及尿道開口部的形態(tài)來判斷，肛門和尿道開口部之間的距離，雄性的是雌性的1.52 倍。手指壓靠近尿道開口處的下腹部， 雌性肛門和尿道開口部之間的距離不明顯伸長， 尿道開口依然指向 肛門方向， 雄性那么距離明顯伸長， 尿道開口與肛門相反的方向。 尿道開口部的形狀， 雌的 是裂縫， 細長形， 雄的那么是圓筒形。 成年兔根據(jù)雌性陰道口的存在及雄性陰囊部膨脹和陰 莖的存在相區(qū)別。5實驗動物編號標

19、記的方法1為什么要對實驗動物進展編號標記？標記的方法有幾種？動物在實驗前常常需要作適當?shù)姆纸M， 不同的體重或一樣的體重放在同一個籠時， 這就 需要編號標記。標記的方法很多，良好的標記方法應(yīng)滿足標號清晰、耐久、簡便、適用、無 明顯損傷、無毒和易識別等要求。標記的方法有染色標記法、號牌法、打孔剪口法和剃毛、 剪毛法。2實驗動物染色標記法是如何進展的？ 染色標記法在實驗室中最常使用， 也很方便， 常用化學藥品涂染動物背部或四肢一定部 位的皮毛，代表一定的編號，常用的涂染化學藥品有：黃色：3%5%苦味酸溶液；紅色：0.5%中性紅或品紅溶液；咖啡色： 20%硝酸銀溶液；黑色：煤焦油的酒精溶液。標記的方法

20、是用毛筆或棉簽蘸取上述溶液， 在動物的不同部位涂上斑點 色 以示不同 號碼。動物染色編號的原那么是先左后右，先上后下，如：在鼠的左前腿上為 1 號，左側(cè)腹 部位為 2 號，左后退為 3 號，頭頂部為 4 號，腰背部為 5 號，尾基部為 6 號，右前腿為 7 號，右側(cè)腰部為 8 號，右后退為 9號，空白色為 10 號。如動物編號較多可在動物兩個部位 分別涂同色，如：雙前肢為 11 號，雙后肢為 12 號，左前左后肢為 13 號等，反復(fù)交織，增 加涂色數(shù)。此種方法常適用于小鼠、大鼠、家兔、豚鼠等。 3實驗動物號牌法如何進展？ 實驗動物號牌法用金屬制作的號牌，固定于實驗動物的耳上，一般適用于狗、貓、

21、猴、 羊等。 4實驗動物打孔剪口法如何進展？ 實驗動物打孔剪口法在耳朵不同部位打一小孔或剪一小縫表示號碼，這種方法維持時 間長。僅適用于小鼠、大鼠、家兔等。 5實驗動物剃毛、剪毛法如何進展？剪毛前先將動物適當固定， 應(yīng)把剪刀貼緊皮膚剪毛， 不要用手提起背毛， 以免剪破皮膚。 此法僅適用于有色動物或大動物短時間的標記。如：家兔、金黃地鼠等。6. 常用實驗動物的麻醉 1實驗前為什么要對動物實施麻醉？實驗動物的麻醉， 是機能學實驗中的一項重要問題。 特別是一些精細的或可能引起疼痛 的和手術(shù)實驗， 也為了減少動物的掙扎和保持安靜， 防止疼痛或動物騷動等因素對實驗結(jié)果 的干擾， 使實驗便于操作和順利進展

22、， 常對實驗動物采取必須的麻醉。 動物麻醉的關(guān)鍵在于 正確選擇麻醉劑的麻醉方法。 主要根據(jù)實驗?zāi)康摹?動物的種類、 體重和實驗時間長短來進展 選擇。2常用的動物麻醉方法與麻醉用藥有哪些？動物的麻醉方法分全身麻醉和局部麻醉。全身麻醉又分為吸入性麻醉和注射性麻 醉。吸入麻醉常用藥物有乙醚、氯仿和氟烷類等揮發(fā)性麻醉藥。非吸入麻醉法注射麻醉 常用藥物有戊巴比妥鈉、 硫噴妥鈉、 烏拉坦、 水合氯醛等麻醉藥； 常用局部麻醉藥物為鹽 酸普魯卡因注射液和鹽酸可卡因溶液。3如何給予動物吸入性麻醉藥物？小鼠和大鼠： 將動物扣在玻璃罩或燒杯內(nèi)， 然后把含有麻醉藥的棉球或紗布放入其中，動物因吸入麻醉藥蒸氣而被麻醉；兔

23、、貓、犬：將裝有少許棉花的圓錐形麻醉口罩套住動物鼻子， 從口罩上的小孔滴入麻醉藥。 使其蒸氣隨呼吸進入體內(nèi)產(chǎn)生麻醉。 吸入麻醉過程中 應(yīng)隨時觀察動物變化，麻醉后及時將動物從麻醉容器中取出，以防麻醉過深死亡。 4如何給予非吸入麻醉注射麻醉藥物？ 非吸入麻醉注射麻醉藥物戊巴比妥鈉、硫噴妥鈉、烏拉坦、水合氯醛給藥方法常用的 是腹腔注射和靜脈注射兩種。小動物多用腹腔注射，大動物那么常用靜脈注射。靜脈注射的原 那么是擰淺勿深， 先注射麻醉藥總量的 2/3，剩下的 1/3 一面觀察動物的反響 如呼吸頻率變慢、 角膜反射、疼痛消失等 ，要緩慢的推注直到麻醉好。如果動物還沒有完全麻醉， 5min 后可以 再補

24、充一些，以到達足夠的麻醉深度。腹腔注射比擬方便，但是麻醉起效慢，動物興奮現(xiàn)象明 顯，麻醉深淺不宜控制，偶爾有誤注腸腔或膀胱的可能。 5如何進展實驗動物的局部麻醉 貓的局部麻醉一般應(yīng)用 0.5%1.0%鹽酸普魯卡因 注射。 粘膜外表麻醉宜用 2%鹽酸可卡因。 兔在眼球手術(shù)時， 可于結(jié)膜囊滴入 0.02%鹽酸 可卡因溶液， 數(shù)秒鐘可出現(xiàn)麻醉。 狗的局部麻醉用 0.5%1%鹽酸普魯卡因注射。 眼、鼻、 咽喉外表麻醉可用 2%鹽酸可卡因。 7氨基甲酸乙酯烏拉坦麻醉藥物理、化學及生物學特性如何？ 氨基甲酸乙酯烏拉坦本藥易溶于水，用藥劑量為20%25% ，常用于兔、貓、狗、蛙等動物的麻醉。優(yōu)點：價廉，使用

25、簡便，一次給藥可維持 45 小時，且麻醉過程較平穩(wěn)， 動物無明顯掙扎現(xiàn)象。缺點：蘇醒慢，麻醉深度和使用劑量較難掌握。推注快了抑制呼吸。8戊巴比妥鈉麻醉藥的特性如何？戊巴比妥鈉為白色粉末， 用時配成 3%溶液靜脈或腹腔注射。 作用發(fā)生快， 維持時間 35 小時。靜脈注射時前 1/3 劑量可快速注射，以快速渡過興奮期，后 2/3 劑量應(yīng)緩慢注射，密 切觀察動物的反響。優(yōu)點：用量少，維持時間要比烏拉坦短，藥量宜掌握。缺點：給藥時動 物掙扎出現(xiàn)興奮， 動物麻醉后， 常因麻醉藥的作用以及肌肉松弛血管擴張， 致使體溫緩慢下 降。所以應(yīng)設(shè)法保溫。9硫噴妥鈉麻醉藥的特性如何？ 本品為淡黃色粉末，其水溶性不穩(wěn)定

26、，故需臨時配制成2055% 溶液作靜脈注射。一次給藥可維持 0.51 小時，一般用在實驗較短的的情況，緩慢注射，防止抑制呼吸，連續(xù)應(yīng)用 易蓄積，毒性小，更適合于小動物。10氯 -烏合劑含氯醛糖 1%，烏拉坦 7%的特性如何？ 氯-烏合劑常用于中樞性實驗，如大腦皮層誘發(fā)電位等。該合劑對神經(jīng)反射及心血管的影響較小。一般用于貓和家兔。11乙醚的特性如何？呼吸性麻醉藥，可用于各種動物，尤其是時間短的實驗或手術(shù)。吸入后1020min開場生效。本藥優(yōu)點是平安、蘇醒快、麻醉的深度及藥量易掌握。缺點是麻醉初期動物出現(xiàn)較強的興奮現(xiàn)象。另外，乙醚可強烈刺激呼吸道黏膜產(chǎn)生大量的分泌物，引起呼吸道堵塞，所以在麻醉前半

27、小時給動物注射阿托品0.10.3mg/kg，可防止上述現(xiàn)象的發(fā)生。動物吸入乙醚后，常先有一個興奮加強期，動物開場掙扎，同時呼吸變的不規(guī)那么，有時甚至出現(xiàn)呼吸 加深和肌張力增強的現(xiàn)象。 深呼吸有吸入過量乙醚的危險， 此時可讓動物每呼吸數(shù)次乙醚后， 取下口罩，呼吸一、二次新鮮空氣，可防止這種危險。等度過這一期后，麻醉將逐漸加深， 動物呼吸也漸趨平穩(wěn)，肌張力逐漸松弛，瞳孔縮小。如果出現(xiàn)角膜反射消失時，說明麻醉已達足夠深度，可以進展手術(shù)。12常用麻醉藥的用法與用量是多少？給藥途徑有哪些？常用麻醉藥劑量和給藥途徑藥物動 物給藥法齊U量mg/kg維持時間h備注戊巴比妥鈉兔、貓、犬iv、ip253024輕度

28、心動過速，抑制心血管和脊髓反射小鼠、大鼠、豚鼠ip405024硫噴妥鈉貓、犬iv、ip25501/41/2對呼吸有一定的抑制作用，常有喉頭痙攣兔、大鼠iv、ip5080氨基甲酸乙酯烏拉坦兔、貓、犬iv、ip700100035對肝及骨髓有毒性，只適用于急性實驗中蛙ip2000氯醛糖貓、犬iv、ip508056中樞作用較輕兔、大鼠氯-烏合劑含氯醛糖貓、兔iv、ip5ml/kg含氯50mg ,烏56對神經(jīng)反射及心血管的影響1%，烏拉坦7%350mg較小。iv :靜脈注射，ip :腹腔注射13應(yīng)用麻醉劑應(yīng)注意的事項是什么？ 靜脈注射麻醉藥時應(yīng)緩慢，同時觀察肌肉緊張性，角膜反射和對四肢夾捏的反響，當以上

29、活動明顯減弱或消失時，應(yīng)立即停頓注射。靜脈給藥的濃度要適中，不易過高；以免麻 醉過急出現(xiàn)動物死亡，但麻醉過淺；動物掙扎手術(shù)無法進展；動物麻醉后應(yīng)注意保溫。麻醉期間，動物體溫調(diào)節(jié)機能往往受到抑制，出現(xiàn)體溫下降，可影響實驗的準確性。應(yīng)給動物采取保溫措施。保溫的方法：實驗臺內(nèi)裝燈、手術(shù)燈，也可采用遠紅外燈管照射法以及 空調(diào)等保溫。無論哪種方法加溫都應(yīng)根據(jù)動物的肛門體溫而定。動物的正常體溫貓為 386C± 1.0C,兔為 38.4 C ± 1.0C，大鼠為 39.3 C ± 0.5C，豚鼠為 39 C ± 1.0 C,小鼠 37 C ± 1.0 C。冬

30、季作實驗時，麻醉劑在靜脈注射前應(yīng)加熱到動物體溫水平。(13) 如何靜脈注射給予麻醉藥？靜脈注射常用于狗和貓。狗最常選用前肢皮下頭靜脈或后肢小隱靜脈小隱靜脈由外踝前側(cè)走向外上側(cè)，減去注射部位被毛，用酒精涂檫皮膚，使血管暴露。一人捏緊注射肢 體的上端，阻斷血流，使靜脈充盈。另一人持注射器進展靜脈注射，針頭刺入后見有回血， 放松肢體上端，固定好注射針頭，將藥液注入。兔一般采用耳廓外緣靜脈注射家兔耳廓 兩側(cè)血管為靜脈血管，中央為動脈血管，首次注射應(yīng)選耳緣靜脈遠端用酒精棉球涂檫注射處皮膚，使局部血管擴張，左手拇指和中指捏住兔耳尖部，食指墊在注射部位下，右手持注射器選用56號針頭刺入血管，回抽有回血，注射

31、無阻力，即可將藥液注入血管。(14) 如何腹腔注射給予麻醉藥？腹腔注射給予麻醉藥常用于貓和鼠類。貓易怒，其爪、牙均可傷人?？上葘⒇堃胩刂频牟Ａ績?nèi)，用噴霧器從瓶口噴入乙醚作為誘導(dǎo)麻醉。約經(jīng)1015min，貓被麻醉后即可取出稱重，按所需的麻醉藥物作腹腔注射。左手抓好鼠的后背頭頸部皮膚，使其腹部向上，右手持注射器，注射器針頭與皮膚成45°角刺入下腹部腹白線稍外側(cè)處。針尖通過腹肌后感覺到阻力消失，說明針頭已進入腹腔。輕輕回抽注射器，注意有無尿液或血液抽出。確認針頭未刺入肝、腸、膀胱等器官后，方可緩慢地推入麻醉藥。15如何肌肉注射給予麻醉藥？多用于鳥類，選擇胸肌或腓腸肌等肌肉較興旺部位。左

32、手固定動物，右手持注射器，呈90°角迅速刺入肌肉。注射完畢后，可用手輕輕按摩注射部位，促使藥物擴散有利吸收。對猴、狗、貓、兔那么多用兩側(cè)臀部或股部進展肌肉注射。16如何皮下注射給予麻醉藥？將鼠、豚鼠、兔、貓的背部皮膚提起，注射針刺入皮下，緩慢注入麻醉藥。拔針時可用手指輕壓注射部位，以防藥液外漏。也可在大腿內(nèi)側(cè)等皮下脂肪少的部位進展皮下注射，鴿子常選翼下部位注射。17如何淋巴囊注射給予麻醉藥？常用于蛙、蟾蜍的麻醉。一手持蛙，另一手持注射器刺入尾骨兩側(cè)皮下淋巴囊，緩緩注射。也可將針頭刺入口腔黏膜，通過下頜肌層進入胸部淋巴囊注射。18如何判斷動物麻醉深度？不管在什么情況下，過深的麻醉會導(dǎo)致

33、動物死亡，過淺又不能獲得滿意的效果，所以在麻醉時，速度應(yīng)當緩慢注射，同時觀察動物的緊張度、角膜反射和對皮膚夾捏的反響。當這些活動明顯減弱或消失時，應(yīng)立即停頓注射。呼吸深度和頻率的改變同樣也是觀察麻醉深度 的指標。最正確麻醉深度的指標應(yīng)該是：皮膚夾捏反響消失，頭頸及四肢肌肉松弛，呼吸深慢而平穩(wěn)，瞳孔縮小，角膜反射消失等。19如何按體外表積換算麻醉藥的量？觀察和研究一個藥物的作用時，動物以多大劑量給藥是一個重要問題。在實驗中經(jīng)常遇到藥量的換算，給多大劑量才適宜；應(yīng)配成多大濃度的藥液，每次應(yīng)給多少毫升和人與動物或動物與動物之間如何換算劑量等。表：人和動物間按體外表積折算的等效劑量比值表小鼠20g大鼠

34、200g豚鼠400g家兔1.5kg貓2.0kg犬12kg人70kg小鼠20g1.07.012.2527.829.7124.2387.9大鼠200g0.141.01.743.94.217.856.0豚鼠400g0.080.571.02.232.44.231.5家兔1.5kg0.040.250.441.01.084.514.2貓2.0kg0.030.230.410.921.04.113.0犬12kg0.0080.060.100.220.231.08.1人70kg0.00260.0180.0310.070.0780.821.020如何按公斤體重換算麻醉藥的劑量表：動物與人體之間每公斤體重劑量折算系數(shù)

35、表折算系數(shù)A種動物或人W小鼠20g大鼠200g豚鼠400g家兔1.5kg貓2.0kg犬12kg人70kgB小鼠20g1.01.41.62.73.24.89.01種大鼠200g0.71.01.141.882.33.66.25動豚鼠400g0.610.871.01.652.053.05.55物家兔1.5kg0.370.520.61.01.231.762.30或貓2.0kg0.300.420.480.811.01.442.70人犬12kg0.210.280.340.560.681.01.88人70kg0.110.160.180.3040.3710.5311.0A種動物每公斤體重用藥量，欲估算B種動物

36、每公斤體重用藥量時，查表找出折算系數(shù)W，再按下式計算：B種動物的藥量mg/kg= W x A種動物的藥量mg/kg例如，某藥對小鼠的最大耐受量為20mg/kg20g小鼠用0.4mg，需折算為家兔用藥量。查A種動物為小鼠，B種動物為家兔，穿插點為折算系數(shù)W = 0.37，故家兔用藥量為0.37 x 20mg/kg = 7.4mg/kg , 1.5kg 家兔用藥量為 7.4mg/kg x 1.5kg = 11.1mg7. 實驗動物常用肌肉松弛劑常用的肌松弛劑種類有哪些，機制、考前須知、用途。8. 實驗動物的采血1小、大鼠的采血法方法有哪些？各是如何進展的？ 頸靜脈或頸動脈取血：將麻醉的小鼠或大鼠仰

37、臥位固定于鼠板上，作頸動脈或頸靜脈別離手術(shù)，當動脈、靜脈暴露后，血管下各穿一根絲線，提起血管，將注射針沿血管平行方 向朝向心端刺入血管抽取所需血量。小鼠20g體重可取血0.6ml左右，大鼠300g體重可取血8ml左右。 股靜脈或股動脈取血：小鼠和大鼠麻醉固定方法同上，進展一側(cè)腹股溝動、靜脈別離 手術(shù)，血管下放分別穿一根絲線，左手提起血管，右手持注射器將針平行刺入血管內(nèi)取血。 心臟取血：小鼠或大鼠仰臥固定鼠板上，在左胸側(cè)第三、四肋間，用左手食指觸摸到心博動處，右手持注射器垂直刺入心臟，抽取所需血量。 眼眶動、靜脈取血用左手拇指、食指抓緊鼠的耳背部皮膚使其將眼球突出充血后，用紋式鑷迅速摘去眼球，

38、血液從眼眶內(nèi)很快流出。 此法因動物取血后死亡， 故只宜使用一次。 斷頭取血小鼠斷頭時， 左手抓鼠， 右手持剪刀于頸部迅速剪掉鼠頭， 立即將鼠頸向下，血液即可流入已準備好的容器中。大鼠斷頭時，實驗者應(yīng)帶棉手套，左手抓大鼠，右手 用木棍打暈，用剪刀迅速剪掉鼠頭，即可取血。2豚鼠的采血法方法有哪些？各是如何進展的？ 心臟取血仰臥位固定豚鼠， 左手食指觸摸心臟搏動處， 與胸骨左緣第 46 肋間插入注射器刺入心臟，血液隨心臟跳動而進入注射器內(nèi)。采血量可達1520ml 。 背中足靜脈取血一人固定豚鼠， 另一人以酒精消毒一側(cè)后肢膝關(guān)節(jié)腳反面， 找出背中足靜脈后，左手拉住豚鼠趾端，右手持注射器刺入靜脈，拔針后

39、即有血液流出方可取血。 采血后用棉球壓迫止血。假設(shè)需反復(fù)取血時，兩后肢可交替使用。3家兔的采血法方法有哪些？各是如何進展的？ 心臟取血： 操作方法類似豚鼠。 煎去左胸第 24 肋間被毛， 用碘酒消毒， 然后用 10ml 的注射器按上 7 號針頭， 在心臟跳動明顯處穿刺。 當針頭刺入心室后即可有血液涌入注射器 內(nèi)，或邊穿刺邊抽取血液。取到所需血量后， 迅速將針頭撥出，這樣可使心機上的針孔較易 閉合，喂養(yǎng)幾天前方可使用再取血；耳緣靜脈取血：將家兔放在固定箱內(nèi)，用酒精棉球消毒，使其耳廓血液充盈， 用粗針頭或刀片在血管上切一小口， 讓血液自然流出，滴入已放有 肝素劑的容器中，采血完畢后，用干棉球壓住出

40、血口，即可止血。如一時出血不止，可用木 夾夾住出血點1020m in;頸靜脈或頸動脈取血：操作方法與大鼠取血方法一樣。此種方 法可選用屢次反復(fù)取血；股靜脈或股動脈取血先作股靜脈或股動脈別離手術(shù)，從股靜脈向遠心方向刺入， 徐徐抽動針栓即可取血。 股動脈取血， 左手拉直動物后肢， 右手持注射器， 與股動脈博動明顯處將針頭刺入， 假設(shè)有鮮血流入注射器， 即穿刺成功。 抽血完畢后迅速撥 出針頭，用干棉球壓迫止血 23min 。4貓的采血法有哪些？各是如何進展的？ 從前肢皮下頭靜脈或后肢的股靜脈取血。 假設(shè)需大量血樣時， 可從頸靜脈取血， 方法同家 兔取血法。5犬的采血法有哪些？各是如何進展的？可從前肢

41、皮下靜脈、后肢小隱靜脈取血，取血方法根本同該部位注射方法。但應(yīng)注意注 射器抽取速度不宜過快， 以免針頭吸著血管內(nèi)壁而堵塞血流進入注射器。 假設(shè)取血量較大那 么可從頸靜脈取血，方法與家兔取血法一樣。9實驗動物的處死1實驗動物處死的原那么是什么？ 動物的處死原那么是處死時間短， 盡量減少實驗動物死亡過程中的掙扎和人為損傷， 防 止處死方法不當而人為造成臟器及細胞形態(tài)改變。 處死動物的方法依實驗?zāi)康暮蛣游锊煌?定。2實驗動物常用的處死方法有哪些？各是怎樣進展的？常用的方法如下：頸椎脫臼法：常用于小鼠的處死。用鑷子或左手的拇指、食指壓 住小鼠的頭部，右手拉住尾巴，用勁向后一拉，使之頸椎脫臼，瞬間死亡

42、；打擊法：常用 于小鼠或大鼠的處死。 手抓住尾巴并提起， 鼠頭向下用木棒擊打鼠頭， 致鼠死亡； 斷頭法： 在鼠頸部用剪刀快速將鼠頭剪掉， 鼠因斷頭和大出血而死亡； 注射麻醉法： 注射戊巴比妥 鈉麻醉處死。豚鼠可用其麻醉劑量 3 倍以上的量腹腔內(nèi)注射。貓可用此藥麻醉劑量的 23 倍量靜脈或腹腔內(nèi)注射。兔可用該藥1.52ml/kg 50mg/ml 的劑量急速注入耳緣靜脈內(nèi)。狗用本藥100mg/kg靜脈注射；吸入麻醉法：應(yīng)用過量吸入乙醚麻醉的方法處死。小鼠和 大鼠在2030 s進入麻醉狀態(tài)，35min死亡。應(yīng)用此法處死豚鼠時， 其肺和腦可有小出血點， 在病理解剖時宜注意。貓亦可用此法處死；大量放血法

43、： 鼠可采用眼眶動、 靜脈大量放血致 死。家兔、貓、狗等動物可在麻醉狀態(tài)下，暴露其頸動脈，用動脈夾夾住動脈，插好動脈插 管后，放開動脈夾，輕輕壓迫胸部，即可因大量放血致死；二氧化碳吸入法：將待處死動 物籠盒放進大塑料袋內(nèi)， 擠出袋中的空氣后， 將連接在二氧化碳鋼瓶上的軟管的另一端放入 袋內(nèi)，握緊袋口。送入二氧化碳氣體，當袋半鼓起時停頓送氣體，密封袋口，動物吸入二氧 化碳后，不經(jīng)興奮期，即于 30s至30min內(nèi)死亡；空氣栓塞法：用注射器將空氣急速注入 動物靜脈內(nèi)，可迅速將動物致死。小鼠可注入0.30.5ml;家兔和貓注入 1020ml ;犬可注入 70150ml 空氣。3實驗完畢后如何處理動物

44、？實驗完畢后， 除有些實驗根據(jù)需要取出有關(guān)臟器組織作組織學分析或解剖學觀察外，一般應(yīng)將動物及時處死。 以實驗室為單位， 統(tǒng)一放入塑料袋內(nèi)， 由專人負責集中到指定的處理 動物地點進展處理。處理的方式有：集中燃燒 實驗中應(yīng)用劇毒藥品或有害物質(zhì)的動 物應(yīng)做特殊處理，如深埋等。動物處死后，及時將動物籠用消毒液進展消毒，防止有其他病 毒或傳染疾病帶入實驗室。10. 急性哺乳類動物實驗根本操作技術(shù)1實驗時給哺乳動物剪毛應(yīng)注意什么？動物固定后，應(yīng)將手術(shù)部位被毛剪去。對家兔、貓、犬等多毛動物進展實驗時，切開皮剪毛范圍視手術(shù)另一手持剪刀平不使毛發(fā)飛揚污膚前必須剪毛。 剪毛時應(yīng)注意： 剪毛時可以用手術(shù)剪刀或家庭用

45、的粗剪刀， 野大小而定，一般應(yīng)大于切口長度； 為防止剪傷皮膚，可一手將皮膚繃緊， 貼于皮膚逆著毛的生長方向剪毛； 剪下的毛應(yīng)及時放入盛有水的杯中浸濕， 染環(huán)境或吸入人的呼吸道。剪毛后用濕紗布擦干凈局部。2實驗時如何給哺乳動物施行切口和止血？施行皮膚切口前， 要選定切口部位和范圍， 必要時作出標志。 切口的大小根據(jù)實驗要求 而定。 但切口大小應(yīng)便于手術(shù)操作， 不且過小或過大。切開皮膚時，手術(shù)者左手的拇指和食 指繃緊皮膚， 右手持手術(shù)刀， 以適當力度一次切開皮膚和皮下組織， 直至肌層。 用止血鉗夾住皮膚切口邊 緣暴露手術(shù)野，以利繼續(xù)別離、結(jié)扎等操作。在手術(shù)過程中， 應(yīng)保持手術(shù)野清晰， 動作不易粗暴

46、防止血肉模糊有礙手術(shù)操作和實驗觀察。因此，不僅應(yīng)注意防止損傷血管，而且要及時止血。止血的方法視情況而定：組織滲 血，可用溫生理鹽水紗布壓迫、明膠海棉復(fù)蓋或電凝等方法；較大血管出血，應(yīng)用止血鉗夾住出血點或其周圍少許組織后，結(jié)扎止血； 骨組織出血， 要先擦干創(chuàng)面，再及時用骨蠟 填充堵塞止血；肌組織的血管豐富，因此肌組織出血時，要與肌組織一同結(jié)扎。為防止肌組織的出血，別離肌肉時，如果肌纖維走向與切口一致，應(yīng)鈍性別離； 如果肌纖維走向與切口不一致， 那么應(yīng)采取兩端結(jié)扎中間切斷的方法。 干沙布只用于吸血和壓迫止血， 不可用于 揩擦組織，以免組織損傷和剛形成的血凝塊脫落。 3如何別離神經(jīng)、血管？考前須知有

47、哪些？ 在電刺激神經(jīng)干，引導(dǎo)記錄神經(jīng)干放電及各種血管插管時都需要事先將神經(jīng)血管游離， 故神經(jīng)血管別離技術(shù)是機能學實驗的根本操作。 神經(jīng)和血管都是易損傷的組織， 因此， 在別 離過程中要細心、輕柔， 切不可用帶齒的鑷子進展剝離， 也不允許用止血鉗或鑷子夾持，以 免損壞其構(gòu)造與機能。 別離時還要掌握先神經(jīng)后血管， 先細后粗的原那么進展。 在別離較粗 大的血管和神經(jīng)時， 應(yīng)先用蚊式止血鉗將血管或神經(jīng)周圍的結(jié)締組織稍加別離。然后， 用大小適宜的止血鉗插入已被分開的結(jié)締組織破口中， 沿著血管或神經(jīng)的走向， 逐步擴大， 使血 管和神經(jīng)從其周圍的結(jié)締組織中別離出來。 在剝離細小的神經(jīng)或血管時， 要特別注意保

48、持局 部的自然解剖位置， 不要把構(gòu)造關(guān)系搞亂。 同時需要用眼科鑷子或玻璃分針輕輕地進展別離。 在別離兔的迷走、交感和減壓神經(jīng)時，只能用玻璃分針在確認的根底上先別離細小的神經(jīng)， 再別離粗大的神經(jīng)。 有時對血管的分支， 如需要切斷，應(yīng)采用結(jié)扎血管的兩端，在中間剪斷 的方法。剝離完畢后， 在神經(jīng)或血管的下方穿以浸透生理鹽水的絲線 根據(jù)需要穿一根或兩根 ， 以備刺激提起或結(jié)扎之用。然后，蓋上一塊浸以生理鹽水的棉絮或紗布，防止組織枯燥，或 在創(chuàng)口內(nèi)滴加適量溫熱37 C左右石蠟油，使神經(jīng)浸泡其中。 4如何進展氣管插管術(shù)？在哺乳動物急性實驗中， 為保證動物呼吸道通暢， 一般均須做氣管插管術(shù)。 其意義是保 持

49、麻醉后動物呼吸道通暢， 便于去除氣管內(nèi)分泌物及連接氣體流量計等傳感器， 以檢測呼吸 機能。 其操作步驟是先用粗剪刀剪去頸前區(qū)被毛， 于喉頭下方作頸前區(qū)正中皮膚切口 切口 長短因動物大小而異，家兔一般 5cm 左右，犬可稍長 。用止血鉗縱向別離皮下組織，暴露 出左右側(cè)胸骨舌骨肌， 再沿其正中縱向鈍性別離， 暴露出氣管。 別離氣管兩側(cè)及其與食管之 間的結(jié)締組織，游離氣管并在氣管下方穿一較粗的絲線。在喉頭下23cm處的環(huán)狀軟骨上作“丄形切口，橫切口長度約為氣管直徑的1/3。然后向肺臟方向插入插管，用事先穿好的線于切口下方做結(jié)扎，結(jié)扎線的殘端固定于插管分叉處，以防滑脫。氣管切開時，如果氣管內(nèi)有較多分泌

50、物或血液，應(yīng)先去除，再行插管。 插管后，如果動物突然出現(xiàn)呼吸急促，常提示氣道不暢， 或許因線結(jié)扎插管不緊， 氣管 切口有滲血進入氣管， 血液或血塊堵塞氣道； 或許因氣管插管開口被組織堵塞。 應(yīng)酌情及時 去除之。 5為什么要進展血管插管術(shù)？為進展動、 靜脈血壓和血流量觀察， 以及抽取血液或靜脈給藥等操作， 常須進展血管插 管術(shù)。它分動脈插管和靜脈插管，前者常取頸總動脈、股動脈，后者常取股靜脈、踝靜脈。 現(xiàn)以頸總動脈和股靜脈為例，分別介紹動脈和靜脈插管術(shù)的步驟及其考前須知。 6怎樣進展頸總動脈插管術(shù)？頸前部切開 2 公分皮膚， 別離皮下組織， 氣管插管后， 別離頸部血管和神經(jīng)； 用左手拇、 食拇捏

51、住一側(cè)切口的皮膚和肌肉稍向外翻， 其余手指從皮膚外面略向上頂， 便可暴露出與氣 管平行的血管神經(jīng)束， 束內(nèi)有靠前的頸總動脈和緊貼在后側(cè)的迷走神經(jīng)、 交感神經(jīng)和減壓神 經(jīng)。用玻璃分針沿血管神經(jīng)走向輕輕分開包膜束， 就可見到三條平行排列的神經(jīng)： 迷走神經(jīng) 最粗，較明亮；交感神經(jīng)較細，光澤較暗；減壓神經(jīng)最細，多位于前二者之間，且常緊挨交 感神經(jīng)并行。動脈插管前，應(yīng)先選擇， 檢查插管前端的管徑粗細是否適宜， 管口是否滑無刺毛糙。并 觀察有沒有充灌抗凝劑，以及有無氣泡？動脈插管時， 可以選用玻璃頸總動脈插管及細塑料管， 在總頸動脈下面穿兩根細線。 先 用一根備用絲線結(jié)扎頸總動脈的離心端，在結(jié)扎處下方23

52、cm處用動脈夾夾閉其向心端，另一根備用絲線置于上線結(jié)與動脈夾之間。 確定動脈剪切位置 切口應(yīng)盡量靠近離心端的線 結(jié)處，以備萬一插管失敗可再剪切口向向心端移位再插。將小指或刀柄置于動脈下方，用眼科剪作一向心臟方向的 45°斜剪口注意不要剪斷動脈，約剪開動脈管徑的1/2 ，將動脈插管向心臟方向插入血管內(nèi) 如插管不太順利， 可用探針或用眼科鑷子夾持剪口管壁以利 插入，用備用絲線將插管結(jié)扎牢，扎線殘端固定于玻璃插管的側(cè)管上以防插管脫落。插管 完畢時要保持插管與血管之間平行，不扭曲，并用膠布或線在適當部位上固定好位置。7頸總動脈插管應(yīng)注意什么？ 頸總動脈剪口不宜過大或過小，過小時導(dǎo)管不易插入，

53、 過大時易使頸總動脈插斷。 如不小心將頸總動脈插斷，可將剪口處結(jié)扎，再向心臟端別離一段頸總動脈，重新剪口插管。 動脈導(dǎo)管頂部要光滑，不能太尖，以防刺破動脈壁，引起大出血。如刺破動脈壁，應(yīng) 立即用動脈夾夾閉頸總動脈心臟端， 再重新別離一段頸總動脈， 重新插管， 必要時改插對側(cè) 頸總動脈。 導(dǎo)管內(nèi)肝素濃度不宜過低，以防導(dǎo)管內(nèi)凝血。 如已出現(xiàn)凝血， 可通過三通管向頸總動脈注入肝素生理鹽水，沖出血凝塊，必要時拔出導(dǎo)管，去除凝血塊，沖洗后再重新插管。8怎樣進展兔、大白鼠頸外靜脈插管？頸外靜脈位于頸部左、 右兩側(cè)皮下， 頸外靜脈插管可以建立一個通道， 用以給動物注射 藥物， 快速輸液，采取靜脈血樣，也可用

54、以檢測中央靜脈壓， 特別適合于大鼠和豚鼠等表淺 靜脈注射困難的動物。實驗器材與“動脈插管相似。 如前述麻醉、固定動物，并進展氣管插管。術(shù)者用左手拇、食指捏起頸部切口皮膚， 向外側(cè)牽拉但不可捏住肌肉 ，中指和無名指從外面將頸外側(cè)皮膚向腹側(cè)輕推，使其稍微 外翻，右手用玻璃分針將頸部肌群推向內(nèi)側(cè)， 即可在胸鎖乳突肌外緣處清晰見到附著于皮下、 粗而明顯的頸外靜脈紫藍色，較粗 。用玻璃分針或蚊式止血鉗鈍性別離頸外靜脈周圍的 結(jié)締組織，游離頸外靜脈 23cm,在其下方穿兩根絲線備用。 用動脈夾夾閉頸外靜脈游離一段近心端， 待血管充盈后用一根絲線結(jié)扎其遠心端。 術(shù)者左手提起結(jié)扎線,右手用眼科剪在頸外靜脈靠近

55、結(jié)扎處以45°角剪一 V 形小口,然后將充滿生理鹽水的靜脈導(dǎo)管向心臟方向插入頸外靜脈約2cm如檢測中央靜脈壓，那么宜插至上腔靜脈，用另一根絲線將靜脈與導(dǎo)管結(jié)扎并固定，以防導(dǎo)管滑落。然后放開動脈夾。頸外靜脈插管時應(yīng)注意什么？ 頸外靜脈與皮膚粘連較嚴密，別離時應(yīng)仔細、耐心，以防撕裂血管。 導(dǎo)管頂部不宜過尖，以防刺破血管壁。8怎樣進展兔、大白鼠股動脈和股靜脈插管？股動脈、 股靜脈插管也是機能實驗的根本技術(shù)之一。 由于頸總動脈插管時會不可防止地 影響壓力化學感受性反射， 而股動脈插管無此缺陷， 故有人主張用股動脈插管完成動脈血壓 檢測、 放血、采取動脈血樣等操作。 股動脈和股靜脈插管所需器材與頸總動脈相似，但導(dǎo)管 直徑應(yīng)適合于股動脈和股靜脈。將動物麻醉、固定、 剪去腹股溝部位被毛。術(shù)者先用手指感觸股動脈搏動，以明確股部血管的位置，然后沿血管走行方向切開皮膚45cm。用蚊式止血鉗不斷別離，順血管走行方向鈍性別離筋膜和肌肉，顯露股血管和股神經(jīng)。一般股動脈在背外側(cè)，可被股靜脈掩蓋， 粉紅色，壁較厚，有搏動；股靜脈在股動脈腹內(nèi)側(cè)，紫藍色，壁較薄，較粗；股神經(jīng)位于股 動脈背外側(cè)。 用玻璃分針順血管方向輕輕劃開神經(jīng)、 血管鞘和血管之間結(jié)締組織， 游離股動