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文檔簡介
1、 有關于蘋果中多酚氧化酶的實驗 原理:多酚氧化酶是引起果蔬酶促褐變的主要酶類。在蘋果中,酶促褐變主要是因多酚氧化酶氧化內源的酚類物質生成鄰醌,鄰醌再相互聚合或鄰醌與蛋白質,氨基酸等作用生成高分子絡合物而導致褐色素的生成,色素分子量愈高,顏色愈暗,嚴重影響制品的營養(yǎng)、風味及外觀品質。PPO的來源不同,它們的理化性質也存在較大的差異,因而對同一物理或化學處理的敏感性不同。在生產實踐中,根據(jù)原料的不同種類,來源和加工特點,合理選擇PPO活性的抑制方法,對提高產品質量有重要作用。 材料:無傷痕,無病害,品質良好的成熟蘋果,品種為酸王,于4貯藏備用。 試劑:丙酮,磷酸鹽緩沖溶液,鄰苯二酚溶液,PVPP,
2、Triton-100.Triton X-100(聚乙二醇辛基苯基醚) 免疫細胞化學中,Triton X-100常用濃度為1%和0.3%,但通常是先配制成30%的Triton X-100儲備液,臨用時稀釋至所需濃度。30% Triton X-100的配制: 試劑:Triton X-100 :, 0.05mol/L PBS(pH配制方法:取Triton X-100及PBS混合,置3740水浴中23h,使其充分溶解混勻。用前取該儲備液稀釋至所需濃度。 所需實驗測出的數(shù)據(jù)及相關內容:ph對PPO的影響及其穩(wěn)定性,最適反應溫度及其它的熱穩(wěn)定性,對底物專一性的高低,不同抑制劑對反應的抑制程度,PPO的酶促
3、動力學參數(shù)。 實驗步驟設計:(1) 蘋果洗凈后在4保溫,再去皮后取果肉200g,立即加入冷凍丙酮500ml,用高速組織搗碎機勻漿2min;用布氏漏斗抽濾,濾餅用200ml冷凍丙酮再次提取抽濾,白色粉末在蒸發(fā)皿中,在室溫下干燥,即得PPO丙酮粉。(2) 稱取丙酮粉的預冷磷酸鹽緩沖液溶液,用磁力攪拌器攪拌20min,5000r/min離心10min,上清液過濾,即得蘋果PPO粗酶液。選取方法:稱取100g蘋果果肉加入含1%PVP的mol/L,pH磷酸鹽緩沖液(一5C,250ml),然后用勻漿機打碎,再l0000r/min轉速下?lián)v碎3min,將糊狀的蘋果混合物用FL一20型冷凍離心機,在0C,600
4、00r/min條件下離心15min,將清液和沉淀分離,沉淀中再加入含1%PVP的0.2mol/L,pH7.0磷酸鹽緩沖液(一5C,250ml),然后再與第一次搗碎相同的條件下?lián)v碎3min,再冷凍離心(條件同第一次);所得的沉淀排除,而所得的清液與第一次得到的清液混合(約為500ml)。即粗酶液。在混合清液中加入已在一18C下冷卻的丙酮(一15C,1000ml);丙酮要慢慢地加入,一邊加入,一邊慢慢地攪拌,加入完畢保持15min,然后冷凍離心(條件同上);所得的清液進行丙酮回收,而所得的沉淀1000ml,一5C的,搗碎5,然后用磁力攪拌機3C下攪拌lh,最后進行冷凍離心(條件同上),所得的沉淀排
5、除,而所得的清液即為多酚氧化酶液,稱PPO,其量約為1000ml.(成功提?。?, 1cm比色皿中,加入鄰苯二酚溶液1ml,PPO粗酶液0.5ml,混勻后在400mm處比色,酶液加入后開始計時,每30s記錄一次OD隨時間的變化值,以最初直線段的斜率(D/t)計算酶活力,一個酶活力單位定義為:在測定條件下,每分鐘引起吸光度改變0.01所需的酶量。2, ph對PPO活性及穩(wěn)定性的影響 配制醋酸鈉緩沖液(ph 3.5/5.6),磷酸鹽(KH2PO4NAOH)緩沖溶液(ph 5.8/8.0)在1cm比色皿中,加入食鹽所設定的緩沖溶液1.5ml,鄰苯二酚溶液1ml,PPO粗酶液0.5ml,混勻,在室溫下
6、測定PPO的活性。采用常規(guī)方法,在不同溫度(范圍1060,間隔為2,ph為6.2)和不同ph(9.0,間隔為0.2,溫度28)條件下測定PPO活性(最大活性管為100相對活性)。0)于30反應,測定PPO的殘留活力。3, 溫度對PPO活性的影響及其熱穩(wěn)定性的影響 在1cm比色皿中,加入磷酸鹽緩沖液(ph6.6)1.5ml,鄰苯二酚溶液1ml,在某一溫度(20/50)保溫5min,加入相同溫度下保溫5min粗酶液0.5ml,迅速測定PPO的活性。熱穩(wěn)定性 PPO粗酶液在100 水浴處理一定時間后立即置于水浴中,然后再反應體系Ph6.0室溫下測定PPO的活性。4, 抑制劑對PPO活性的影響 用0.
7、2mol/L磷酸鹽緩沖溶液(ph6.0),配制不同濃度的黃酮化合物和抗壞血酸抑制劑溶液,在反應體系ph6.0,室溫下測定PPO的活性。第一次實驗失敗原因:1, 鄰苯二酚已經被氧化,所以測出的實驗數(shù)據(jù)不正確;2, 對紫外可見分光光度儀的應用不熟練;3, 在實驗過程中Ph的調節(jié)不是非常正確,應該有較大的誤差;4, 在溶液的配制中,存在著某些不確定因素,因而對實驗造成的誤差;5, 在制取出PPO后,有較長時間沒有進行處理,所以存在較大誤差;6, 在研磨時溫度沒有控制好,造成酶的失活可能性較大;7, 澳洲青蘋,富士,紅星,金帥,8, 如何測酶活力?在紫外可見分光光度儀上怎樣辨別?吸光度和酶活力有什么關系?該如何去對應?在最大吸收峰處(首先如何測定較為準確的最大吸收峰)怎樣測定酶活力?相對酶活力?9, 對PVPP的配制,要找出確定的值,因不考慮其對實驗的影響因素,所以不做詳細的實驗,只加進去適量就可10, 峰值高度和酶活力呈正相關。11, 以吸光度為豎坐標,不用一酶活力為豎坐標,進行比較,因其與酶活力呈正相關。12, PPO活性測定時,底物鄰苯二酚與PPO酶的用量之間的比例?13, 在進行單因素實驗時,試驗因素的機動性如何安排?間隔為多少?溫度,Ph,以多大為間隔,需要多少組數(shù)據(jù)可以完成實驗安排?14, 酶的比
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