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文檔簡(jiǎn)介

43飼料中粗蛋白的測(cè)定43飼料中粗蛋白的測(cè)定

一、蛋白質(zhì)的測(cè)定方法2.間接法

通過測(cè)定樣品中總含氮量推算蛋白質(zhì)含量(根據(jù):每種蛋白質(zhì)的含氮量是恒定的,N×6.25)。凱氏定氮法(Kjeldahl)8~9小時(shí)杜馬斯燃燒定氮法(DumasCombustionMethod)—900℃~1200℃高溫燃燒,燃燒過程中產(chǎn)生混合氣體,其中的干擾成分被一系列適當(dāng)?shù)奈談┧眨旌蠚怏w中的氮氧化物被全部還原成分子氮,隨后氮的含量被熱導(dǎo)檢測(cè)器檢測(cè)。3~5分鐘強(qiáng)堿直接蒸餾法

—樣品在強(qiáng)堿溶液中消煮,使蛋白質(zhì)中的不穩(wěn)定氮素以氨的形式釋放出來,在一定條件下,所釋放的氨和樣品中的含氮量成正比且有很好的相關(guān)性,建立不穩(wěn)定氮量與全氮量之間的回歸方程。~20分鐘

納氏試劑比色法一、蛋白質(zhì)的測(cè)定方法2.間接法

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量19世紀(jì)(1883)建立的經(jīng)典方法,結(jié)果可靠(最常用的標(biāo)準(zhǔn)方法),凱氏定氮法由于具有測(cè)定總有機(jī)氮量準(zhǔn)確度高,可測(cè)定各種不同形態(tài)樣品等兩大優(yōu)點(diǎn),因而被公認(rèn)為是測(cè)定食品、飼料、種子、生物制品、藥品中蛋白質(zhì)含量的標(biāo)準(zhǔn)分析方法。但操作費(fèi)時(shí)(8~9h)——改良方法:加催化劑加快分析速度、儀器改進(jìn)(自動(dòng)、半自動(dòng)凱氏定氮儀)。

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量19世紀(jì)(1883)建立的經(jīng)

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量1.原理

各種飼料的有機(jī)物質(zhì)在還原性催化劑(如CuSO4,K2SO4或Na2SO4或Se粉)的幫助下,用濃硫酸進(jìn)行消化作用,使蛋白質(zhì)和其它有機(jī)態(tài)氮(如氨基酸、酰胺、核酸,在一定處理下也包括硝酸態(tài)氨)都轉(zhuǎn)變成NH4+并與H2SO4化合成(NH4)2SO4,而非含氮物質(zhì),則以CO2↑,H2O↑,SO2↑狀態(tài)逸出。然后加堿蒸餾,使氨蒸出,用硼酸吸收后再以標(biāo)準(zhǔn)鹽酸或硫酸溶液滴定。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)酸消耗量可計(jì)算出蛋白質(zhì)的含量。二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量1.原理

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量1.原理

:使有機(jī)物脫水后被炭化為碳、氫、氮;

:將有機(jī)物炭化后的碳化為二氧化碳,硫酸則被還原成二氧化硫;

2H2SO4

+C=2SO2+2H2O+CO2

二氧化硫使氮還原為氨,本身則被氧化為三氧化硫,氨隨之與硫酸作用生成硫酸銨留在酸性溶液中。

H2SO4+2NH3

=(NH4)2SO42NH2(CH)2COOH+13H2SO4=(NH4)2SO4

+6CO2+12SO2

+16H2O①樣品消化濃硫酸具有脫水性濃硫酸具有氧化性二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量1.原理2NH2(CH)2最新43飼料中粗蛋白的測(cè)定課件最新43飼料中粗蛋白的測(cè)定課件

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量1.原理

消化液在濃堿的作用下進(jìn)行蒸餾,釋放出的氨態(tài)氮,用硼酸溶液吸收之并與之結(jié)合成為四硼酸銨。

②蒸餾2NaOH+(NH4)2SO4=

2NH3↓+Na2SO4+2H2O2NH3+4H3BO3=(NH4)2B4O7+5H2O二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量1.原理②蒸餾2NaOH

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量1.原理

以甲基紅-溴甲酚綠作指示劑,用HCl標(biāo)準(zhǔn)溶液(0.1mol/L)滴定,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)酸的消耗量,即可計(jì)算有機(jī)氮的含量。而后,根據(jù)不同的飼料再乘以一定的系數(shù)(通常用6.25系數(shù)計(jì)算),即為粗蛋白質(zhì)的含量。③滴定

(NH4)2B4O7+2HCl+5H2O=2NH4Cl+4H3BO3二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量1.原理③滴定(NH4

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量凱氏定氮瓶(或消化管)及蒸餾裝置硫酸銅硫酸鉀硫酸2%硼酸溶液

40%氫氧化鈉溶液0.2%甲基紅0.2%溴甲酚綠0.2%甲基紅及0.2%溴甲酚綠的1+5混合指示劑0.1mol/L的標(biāo)準(zhǔn)鹽酸溶液(或1/2硫酸溶液)2.主要儀器及試劑二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量凱氏定氮瓶(或消化管)及蒸餾

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第一步樣品消化

稱取適量樣品0.5~1g(含氮量5~80mg),無損失(用濾紙包好)地放入干燥凱氏燒瓶或消化管中,加入0.2g硫酸銅(CuSO4·5H2O),3g無水硫酸鉀(或無水硫酸鈉)及10mL硫酸,輕輕搖勻后進(jìn)行消化。(樣品+CuSO4·5H2O+K2SO4+濃硫酸)透明藍(lán)綠色空白試驗(yàn):取與處理樣品相同量的硫酸銅,硫酸鉀,硫酸按同一方法作試劑空白試驗(yàn)。二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟空白試驗(yàn):取與

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第一步樣品消化

硫酸銅/無水硫酸鉀(或無水硫酸鈉)的作用?(大家想想?。?/p>

(1)K2SO4或Na2SO4的作用:提高溶液的沸點(diǎn)而加快有機(jī)物的分解;K2SO4+H2SO4=2KHSO4

2KHSO4=K2SO4+H2O↑+SO3

但硫酸鉀加入量不能太大,否則消化體系溫度過高,又會(huì)引起已生成的銨鹽發(fā)生熱分解而造成損失。二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第一步樣品消化

硫酸銅/無水硫酸鉀(或無水硫酸鈉)的作用?(大家想想!)

(2)CuSO4的作用

①催化劑,加速氧化分解;

2CuSO4=CuSO4+SO2↑+O2C+2CuSO4=Cu2SO4+SO2↑+O2↑Cu2SO4+2H2SO4=2CuSO4+2H2O+SO2↑

此反應(yīng)不斷進(jìn)行,待有機(jī)物被消化完后,不再有硫酸亞銅(褐色)生成,溶液呈現(xiàn)清澈的藍(lán)綠色。

②可以指示消化終點(diǎn)的到達(dá);

③下一步蒸餾時(shí)作為堿性反應(yīng)(加入堿量)的指示劑。二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第一步樣品消化注意事項(xiàng):總氮測(cè)定時(shí),消化至關(guān)重要。①消化在通風(fēng)櫥中進(jìn)行(若無通風(fēng)櫥......)。②在消化開始時(shí),應(yīng)控制火力(應(yīng)從低溫開始分階段升溫至360~410℃

),保持緩慢沸騰,避免試樣濺于瓶壁,難于消化使氨損失。③實(shí)驗(yàn)中要保證硫酸足量,否則過多的硫酸鉀形成硫酸氫鉀,而削弱了硫酸的消化作用。二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第二步氨的蒸餾

樣品分解液定容

試樣消煮液令卻,小心加20ml水,移人100ml容量瓶中,冷卻后,并用少量水洗定氮瓶,洗液并入容置瓶中,再加水至刻度,作為試樣分解液備用。二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第二步氨的蒸餾

蒸餾

①蒸汽發(fā)生器的準(zhǔn)備:裝好定氮裝量,于水蒸氣發(fā)生瓶?jī)?nèi)裝蒸餾水至約2/3處,加甲基紅指示液數(shù)滴及硫酸數(shù)滴,以保持水呈酸性(水為橙紅色,否則補(bǔ)加硫酸,大家想想為什么?)。加入數(shù)粒玻璃珠以防暴沸,用調(diào)壓器控制,加熱煮沸水蒸氣發(fā)生瓶?jī)?nèi)的水。防止水中氨態(tài)氮的逸失而影響測(cè)定值。二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟防止水中氨態(tài)氮

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第二步氨的蒸餾

蒸餾②硼酸溶液的準(zhǔn)備:向接收瓶?jī)?nèi)加入20mL2%硼酸及2滴混合指示劑并使冷凝管下端插入液面下。

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第二步氨的蒸餾

蒸餾③開始蒸餾:吸取10.0mL樣品消化稀釋液注入凱氏定氮儀的反應(yīng)室中,用10mL蒸餾水沖洗進(jìn)樣入口,再加10mL40%氫氧化鈉溶液入反應(yīng)室(動(dòng)作要快,以防氨逸出),塞好入口玻璃塞,在入口處加水密封,防止漏氣。打開水蒸汽發(fā)生器與反應(yīng)室之間的夾子,蒸汽通入反應(yīng)室使氨氣被蒸發(fā)出來,并通過冷凝管而進(jìn)入接收瓶?jī)?nèi),以第一滴餾液滴下開始計(jì)時(shí),蒸餾5min,使冷凝管離開吸收液面,在蒸餾1min,用水沖洗冷凝管末端,洗液流入接收瓶中,取下接收瓶。最后關(guān)閉電源,絕不能先關(guān)閉電源,否則吸收液將發(fā)生倒吸!二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第二步氨的蒸餾注意事項(xiàng):凱氏定氮蒸餾過程中,要求整套裝置呈密閉狀態(tài),蒸餾前應(yīng)檢查定氮儀各導(dǎo)管間的連接處是否密閉,以免產(chǎn)生泄露;測(cè)定樣品前應(yīng)清洗蒸餾裝置,即用蒸餾水空蒸一次或數(shù)次;蒸餾后立即清洗蒸餾器。蒸餾完畢后,移取熱源,夾緊蒸汽發(fā)生器和收集器間的橡皮管,此時(shí)由于收集器溫度突然下降,即可將反應(yīng)室殘液吸至收集器。蒸餾時(shí),火力穩(wěn)定,蒸汽發(fā)生要均勻充足,蒸餾中途不得停火斷汽,否則發(fā)生倒吸。加堿要足量(反應(yīng)室液體呈深藍(lán)色或褐色)并且堿液不能污染冷凝管及接收瓶。二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第三步滴定用微量酸式滴定管,以0.1或0.02mol/L鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行滴定,溶液由藍(lán)綠色變?yōu)榛壹t色為終點(diǎn)??瞻自囼?yàn):同時(shí)取10.0mL空白消化稀釋液同上操作,以校正藥品不純所發(fā)生的誤差。

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量4.結(jié)果計(jì)算CP——樣品中蛋白質(zhì)的含量(%);V1——樣品消耗鹽酸標(biāo)準(zhǔn)液的體積(mL);V2——空白實(shí)驗(yàn)消耗鹽酸標(biāo)準(zhǔn)液的體積(mL);C——鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液通過標(biāo)定后的摩爾濃度(mol/L);0.014——每毫升鹽酸標(biāo)準(zhǔn)液(1mol/L)相當(dāng)于氮的克數(shù);m——樣品質(zhì)量(g);6.25——氮換算為蛋白質(zhì)的系數(shù)(換算系數(shù))。(大家想想6.25是如何計(jì)算出來的?)二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量4.結(jié)果計(jì)算

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量5.方法的評(píng)價(jià)凱氏法的優(yōu)點(diǎn)是適用范圍廣,可用于動(dòng)植物的各種組織,器官、各種飼料等成組復(fù)雜樣品的測(cè)定,只要細(xì)心操作都能得到較準(zhǔn)確的結(jié)果,至今仍被作為標(biāo)準(zhǔn)檢驗(yàn)方法。但此法靈敏度低,適用于0.2-1.0mg氮,操作比較復(fù)雜,所需時(shí)間長(zhǎng)。

用凱氏定氮法通過測(cè)總氮量來確定蛋白質(zhì)含量,包含了核酸、生物堿、含氮類脂、卟啉、以及含氮色素等非蛋白質(zhì)含氮化合物,所以這樣的測(cè)定結(jié)果稱為粗蛋白。

事件二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量5.方法的評(píng)價(jià)事件

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量5.方法的評(píng)價(jià)不同的蛋白質(zhì)其氨基酸組成及比例方式不同,故各種不同的蛋白質(zhì)其含氮量也不同(約在14.7~19.5%,平均為16%),因而不同蛋白質(zhì)系數(shù)也不一樣。

Tyr(酪氨酸):分子量181.9,含氮量7.69;Ala(丙氨酸):分子量89.1,含氮量15.7;Lys(賴氨酸):分子量146.9,含氮量9.06。二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量5.方法的評(píng)價(jià)Tyr(酪氨

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(一)雙縮脲法(Biuret法)1.原理

雙縮脲是兩個(gè)分子脲經(jīng)180℃左右加熱,放出一個(gè)分子氨后得到的產(chǎn)物。NH2-CO-NH2+NH2-CO-NH2

NH2-CO-NH-CO-NH2

+NH3

在強(qiáng)堿性溶液中,雙縮脲與CuSO4形成紫色絡(luò)合物,稱為雙縮脲反應(yīng)。凡具有兩個(gè)酰胺基或兩個(gè)直接連接的肽鍵,這類化合物都有雙縮脲反應(yīng)。蛋白質(zhì)及多肽含有兩個(gè)以上的肽鍵(—CO—NH—),與雙縮脲的結(jié)構(gòu)類似,也能與Cu2+形成紫紅色絡(luò)合物,其最大光吸收在540nm處。其顏色深淺與蛋白質(zhì)濃度成正比,而與蛋白質(zhì)的分子量及氨基酸的組成無關(guān)。故可用來測(cè)定蛋白質(zhì)含量。三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(一)雙縮脲法

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(一)雙縮脲法(Biuret法)1.原理

在一定條件下,未知樣品的溶液與標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)溶液同時(shí)反應(yīng),并于540—560nm下比色,可以通過標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)的標(biāo)準(zhǔn)曲線求出未知的蛋白質(zhì)濃度,標(biāo)準(zhǔn)蛋白溶液可以用結(jié)晶的牛(或人)血清白蛋白、卵清蛋白或酪蛋白粉末配制。三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(一)雙縮脲法(B

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(一)雙縮脲法(Biuret法)2.方法評(píng)價(jià)該法的優(yōu)點(diǎn)是樣品不需消化處理,結(jié)果為飼料中蛋白質(zhì)的真實(shí)含量,操作簡(jiǎn)單,具有快速、準(zhǔn)確等優(yōu)點(diǎn)。但二肽含量不能測(cè)定(想想為什么?)。該法靈敏度低,測(cè)定蛋白質(zhì)的濃度范圍適于1~10mg/mL。雙縮脲法常用于蛋白質(zhì)的快速測(cè)定,但并不需要十分精確的蛋白質(zhì)測(cè)定。干擾這一測(cè)定的物質(zhì)主要有:硫酸銨、tris緩沖液和某些氨基酸等。除-CO-NH-有此反應(yīng)外,-CONH2-,-CH2-,NH2-,-CS-CS-NH2,等基團(tuán)亦有此反應(yīng)。

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(一)雙縮脲法(B

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(二)Folin-酚試劑法(Lowry法)1.原理

此法的顯色原理與雙縮脲方法相同,只是加入了第二種試劑,即Folin—酚試劑,以增加顯色量,從而提高了檢測(cè)蛋白質(zhì)的靈敏度。

這兩種顯色反應(yīng)產(chǎn)生深蘭色,原因是:在堿性條件下,蛋白質(zhì)中的肽鍵與銅結(jié)合生成復(fù)合物。Folin—酚試劑中的磷鉬酸鹽—磷鎢酸鹽被蛋白質(zhì)中的酪氨酸或色氨酸殘基還原,產(chǎn)生深蘭色(鉬蘭和鎢蘭的混合物)。在一定的條件下,蘭色深度與蛋白的量成正比。三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(二)Folin-

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(二)Folin-酚試劑法(Lowry法)2.方法評(píng)價(jià)本法的優(yōu)點(diǎn)是操作簡(jiǎn)便、靈敏度高,定量范圍為5~100μg蛋白質(zhì),較雙縮脲法靈敏100倍。此法也適用于酪氨酸和色氨酸的定量測(cè)定。其不足之處是此反應(yīng)受多種因素干擾。Folin試劑顯色反應(yīng)由酪氨酸、色氨酸和半胱氨酸引起,因此樣品中若含有酚類、檸檬酸和巰基化合物均有干擾作用。不同蛋白質(zhì)因酪氨酸、色氨酸含量不同而使顯色強(qiáng)度稍有不同,顯色的深淺往往隨不同的蛋白質(zhì)而變化。因而本測(cè)定法通常只適用于測(cè)定蛋白質(zhì)的相對(duì)濃度(相對(duì)于標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì))。Folin—酚試劑的配制較為困難(現(xiàn)在已可以訂購)。三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(二)Folin-

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(三)紫外吸收法1.原理

蛋白質(zhì)分子中,酪氨酸、苯丙氨酸和色氨酸殘基的苯環(huán)含有共軛雙鍵,使蛋白質(zhì)具有吸收紫外光的性質(zhì)。吸收高峰在280nm處,其吸光度(即光密度值)與蛋白質(zhì)含量成正比。

此外,蛋白質(zhì)溶液在238nm的光吸收值與肽鍵含量成正比。利用一定波長(zhǎng)下,蛋白質(zhì)溶液的光吸收值與蛋白質(zhì)濃度的正比關(guān)系,可以進(jìn)行蛋白質(zhì)含量的測(cè)定。三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(三)紫外吸收法

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(三)紫外吸收法2.方法評(píng)價(jià)紫外吸收法簡(jiǎn)便、靈敏、快速,不消耗樣品,測(cè)定后仍能回收使用。低濃度的鹽,例如生化制備中常用的(NH4)2SO4等和大多數(shù)緩沖液不干擾測(cè)定。特別適用于柱層析洗脫液的快速連續(xù)檢測(cè),因?yàn)榇藭r(shí)只需測(cè)定蛋白質(zhì)濃度的變化,而不需知道其絕對(duì)值。此法的特點(diǎn)是測(cè)定蛋白質(zhì)含量的準(zhǔn)確度較差,干擾物質(zhì)多,在用標(biāo)準(zhǔn)曲線法測(cè)定蛋白質(zhì)含量時(shí),對(duì)那些與標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)中酪氨酸和色氨酸含量差異大的蛋白質(zhì),有一定的誤差。故該法適于用測(cè)定與標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)氨基酸組成相似的蛋白質(zhì)。三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(三)紫外吸收法

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(三)紫外吸收法2.方法評(píng)價(jià)若樣品中含有嘌呤、嘧啶及核酸等吸收紫外光的物質(zhì),會(huì)出現(xiàn)較大的干擾。核酸的干擾可以通過查校正表,再進(jìn)行計(jì)算的方法,加以適當(dāng)?shù)男U?。但是因?yàn)椴煌牡鞍踪|(zhì)和核酸的紫外吸收是不相同的,雖然經(jīng)過校正,測(cè)定的結(jié)果還是存在一定的誤差。此外,進(jìn)行紫外吸收法測(cè)定時(shí),由于蛋白質(zhì)吸收高峰常因pH的改變而有變化,因此要注意溶液的pH值,測(cè)定樣品時(shí)的ph要與測(cè)定標(biāo)準(zhǔn)曲線的pH相一致。因Lowry反應(yīng)的顯色隨時(shí)間不斷加深,因此各項(xiàng)操作必須精確控制時(shí)間。三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(三)紫外吸收法

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(四)考馬斯亮藍(lán)染色法1.原理

考馬斯亮藍(lán)G-250(CoomassiebrilliantblueG-250)測(cè)定蛋白質(zhì)含量屬于染料結(jié)合法的一種??捡R斯亮藍(lán)G-250在游離狀態(tài)下呈紅色,最大光吸收在488nm;當(dāng)它與蛋白質(zhì)結(jié)合后變?yōu)榍嗌?,蛋白質(zhì)-色素結(jié)合物在595nm波長(zhǎng)下有最大光吸收。其光吸收值與蛋白質(zhì)含量成正比,因此可用于蛋白質(zhì)的定量測(cè)定。蛋白質(zhì)與考馬斯亮藍(lán)G-250結(jié)合在2min左右的時(shí)間內(nèi)達(dá)到平衡,完成反應(yīng)十分迅速;其結(jié)合物在室溫下1h內(nèi)保持穩(wěn)定。三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(四)考馬斯亮藍(lán)染

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)經(jīng)研究認(rèn)為,染料主要是與蛋白質(zhì)中的堿性氨基酸(特別是精氨酸)和芳香族氨基酸殘基相結(jié)合。該法是1976年Bradford建立,因而又叫Bradford法。PROTEIN+Amax=595nmBLUEAcidCoomassieG-250Protein-DyeComplexOCH2CH3NHCCH3CH3NCH2SO3-CH3CH2NCH2CH2CH3SO3Na+(四)考馬斯亮藍(lán)染色法1.原理三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)經(jīng)研究認(rèn)為,染料主

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)試劑配制簡(jiǎn)單,干擾物質(zhì)少,反應(yīng)非常靈敏,靈敏度比Lowry法還高4倍,可測(cè)定微克級(jí)蛋白質(zhì)含量,測(cè)定濃度范圍為0~1000μg/mL,是一種常用的微量蛋白質(zhì)快速測(cè)定方法。操作簡(jiǎn)便快捷,完成一個(gè)樣品的測(cè)定,只需要5分鐘左右。由于染料與蛋白質(zhì)結(jié)合的過程,大約只要2分鐘即可完成,其顏色可以在1小時(shí)內(nèi)保持穩(wěn)定,且在5分鐘至20分鐘之間,顏色的穩(wěn)定性最好。因而完全不用像Lowry法那樣費(fèi)時(shí)和嚴(yán)格地控制時(shí)間。(四)考馬斯亮藍(lán)染色法2.方法評(píng)價(jià)三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)試劑配制簡(jiǎn)單,干擾

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(四)考馬斯亮藍(lán)染色法2.方法評(píng)價(jià)有些陽離子,如K+、Na+、Mg2+、(NH4)2SO4、乙醇等物質(zhì)不干擾測(cè)定,但大量的去污劑如TritonX-100、SDS等嚴(yán)重干擾測(cè)定。由于各種蛋白質(zhì)中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同,因此bradford法用于不同蛋白質(zhì)測(cè)定時(shí)有較大的偏差,在制作標(biāo)準(zhǔn)曲線時(shí)通常選用γ—球蛋白為標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì),以減少這方面的偏差。三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(四)考馬斯亮藍(lán)染相關(guān)事件三鹿毒奶粉事件(2008)美國(guó)寵物飼料事件:“寵物毒糧”

(2007)罪魁禍?zhǔn)祝喝矍璋罚–3N6H6

),“蛋白精”純白色單斜棱晶體,無味,微溶于水和熱乙醇。含氮量66.6%。返回

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一、蛋白質(zhì)的測(cè)定方法2.間接法

通過測(cè)定樣品中總含氮量推算蛋白質(zhì)含量(根據(jù):每種蛋白質(zhì)的含氮量是恒定的,N×6.25)。凱氏定氮法(Kjeldahl)8~9小時(shí)杜馬斯燃燒定氮法(DumasCombustionMethod)—900℃~1200℃高溫燃燒,燃燒過程中產(chǎn)生混合氣體,其中的干擾成分被一系列適當(dāng)?shù)奈談┧眨旌蠚怏w中的氮氧化物被全部還原成分子氮,隨后氮的含量被熱導(dǎo)檢測(cè)器檢測(cè)。3~5分鐘強(qiáng)堿直接蒸餾法

—樣品在強(qiáng)堿溶液中消煮,使蛋白質(zhì)中的不穩(wěn)定氮素以氨的形式釋放出來,在一定條件下,所釋放的氨和樣品中的含氮量成正比且有很好的相關(guān)性,建立不穩(wěn)定氮量與全氮量之間的回歸方程?!?0分鐘

納氏試劑比色法一、蛋白質(zhì)的測(cè)定方法2.間接法

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量19世紀(jì)(1883)建立的經(jīng)典方法,結(jié)果可靠(最常用的標(biāo)準(zhǔn)方法),凱氏定氮法由于具有測(cè)定總有機(jī)氮量準(zhǔn)確度高,可測(cè)定各種不同形態(tài)樣品等兩大優(yōu)點(diǎn),因而被公認(rèn)為是測(cè)定食品、飼料、種子、生物制品、藥品中蛋白質(zhì)含量的標(biāo)準(zhǔn)分析方法。但操作費(fèi)時(shí)(8~9h)——改良方法:加催化劑加快分析速度、儀器改進(jìn)(自動(dòng)、半自動(dòng)凱氏定氮儀)。

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量19世紀(jì)(1883)建立的經(jīng)

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量1.原理

各種飼料的有機(jī)物質(zhì)在還原性催化劑(如CuSO4,K2SO4或Na2SO4或Se粉)的幫助下,用濃硫酸進(jìn)行消化作用,使蛋白質(zhì)和其它有機(jī)態(tài)氮(如氨基酸、酰胺、核酸,在一定處理下也包括硝酸態(tài)氨)都轉(zhuǎn)變成NH4+并與H2SO4化合成(NH4)2SO4,而非含氮物質(zhì),則以CO2↑,H2O↑,SO2↑狀態(tài)逸出。然后加堿蒸餾,使氨蒸出,用硼酸吸收后再以標(biāo)準(zhǔn)鹽酸或硫酸溶液滴定。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)酸消耗量可計(jì)算出蛋白質(zhì)的含量。二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量1.原理

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量1.原理

:使有機(jī)物脫水后被炭化為碳、氫、氮;

:將有機(jī)物炭化后的碳化為二氧化碳,硫酸則被還原成二氧化硫;

2H2SO4

+C=2SO2+2H2O+CO2

二氧化硫使氮還原為氨,本身則被氧化為三氧化硫,氨隨之與硫酸作用生成硫酸銨留在酸性溶液中。

H2SO4+2NH3

=(NH4)2SO42NH2(CH)2COOH+13H2SO4=(NH4)2SO4

+6CO2+12SO2

+16H2O①樣品消化濃硫酸具有脫水性濃硫酸具有氧化性二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量1.原理2NH2(CH)2最新43飼料中粗蛋白的測(cè)定課件最新43飼料中粗蛋白的測(cè)定課件

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量1.原理

消化液在濃堿的作用下進(jìn)行蒸餾,釋放出的氨態(tài)氮,用硼酸溶液吸收之并與之結(jié)合成為四硼酸銨。

②蒸餾2NaOH+(NH4)2SO4=

2NH3↓+Na2SO4+2H2O2NH3+4H3BO3=(NH4)2B4O7+5H2O二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量1.原理②蒸餾2NaOH

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量1.原理

以甲基紅-溴甲酚綠作指示劑,用HCl標(biāo)準(zhǔn)溶液(0.1mol/L)滴定,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)酸的消耗量,即可計(jì)算有機(jī)氮的含量。而后,根據(jù)不同的飼料再乘以一定的系數(shù)(通常用6.25系數(shù)計(jì)算),即為粗蛋白質(zhì)的含量。③滴定

(NH4)2B4O7+2HCl+5H2O=2NH4Cl+4H3BO3二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量1.原理③滴定(NH4

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量凱氏定氮瓶(或消化管)及蒸餾裝置硫酸銅硫酸鉀硫酸2%硼酸溶液

40%氫氧化鈉溶液0.2%甲基紅0.2%溴甲酚綠0.2%甲基紅及0.2%溴甲酚綠的1+5混合指示劑0.1mol/L的標(biāo)準(zhǔn)鹽酸溶液(或1/2硫酸溶液)2.主要儀器及試劑二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量凱氏定氮瓶(或消化管)及蒸餾

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第一步樣品消化

稱取適量樣品0.5~1g(含氮量5~80mg),無損失(用濾紙包好)地放入干燥凱氏燒瓶或消化管中,加入0.2g硫酸銅(CuSO4·5H2O),3g無水硫酸鉀(或無水硫酸鈉)及10mL硫酸,輕輕搖勻后進(jìn)行消化。(樣品+CuSO4·5H2O+K2SO4+濃硫酸)透明藍(lán)綠色空白試驗(yàn):取與處理樣品相同量的硫酸銅,硫酸鉀,硫酸按同一方法作試劑空白試驗(yàn)。二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟空白試驗(yàn):取與

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第一步樣品消化

硫酸銅/無水硫酸鉀(或無水硫酸鈉)的作用?(大家想想?。?/p>

(1)K2SO4或Na2SO4的作用:提高溶液的沸點(diǎn)而加快有機(jī)物的分解;K2SO4+H2SO4=2KHSO4

2KHSO4=K2SO4+H2O↑+SO3

但硫酸鉀加入量不能太大,否則消化體系溫度過高,又會(huì)引起已生成的銨鹽發(fā)生熱分解而造成損失。二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第一步樣品消化

硫酸銅/無水硫酸鉀(或無水硫酸鈉)的作用?(大家想想!)

(2)CuSO4的作用

①催化劑,加速氧化分解;

2CuSO4=CuSO4+SO2↑+O2C+2CuSO4=Cu2SO4+SO2↑+O2↑Cu2SO4+2H2SO4=2CuSO4+2H2O+SO2↑

此反應(yīng)不斷進(jìn)行,待有機(jī)物被消化完后,不再有硫酸亞銅(褐色)生成,溶液呈現(xiàn)清澈的藍(lán)綠色。

②可以指示消化終點(diǎn)的到達(dá);

③下一步蒸餾時(shí)作為堿性反應(yīng)(加入堿量)的指示劑。二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第一步樣品消化注意事項(xiàng):總氮測(cè)定時(shí),消化至關(guān)重要。①消化在通風(fēng)櫥中進(jìn)行(若無通風(fēng)櫥......)。②在消化開始時(shí),應(yīng)控制火力(應(yīng)從低溫開始分階段升溫至360~410℃

),保持緩慢沸騰,避免試樣濺于瓶壁,難于消化使氨損失。③實(shí)驗(yàn)中要保證硫酸足量,否則過多的硫酸鉀形成硫酸氫鉀,而削弱了硫酸的消化作用。二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第二步氨的蒸餾

樣品分解液定容

試樣消煮液令卻,小心加20ml水,移人100ml容量瓶中,冷卻后,并用少量水洗定氮瓶,洗液并入容置瓶中,再加水至刻度,作為試樣分解液備用。二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第二步氨的蒸餾

蒸餾

①蒸汽發(fā)生器的準(zhǔn)備:裝好定氮裝量,于水蒸氣發(fā)生瓶?jī)?nèi)裝蒸餾水至約2/3處,加甲基紅指示液數(shù)滴及硫酸數(shù)滴,以保持水呈酸性(水為橙紅色,否則補(bǔ)加硫酸,大家想想為什么?)。加入數(shù)粒玻璃珠以防暴沸,用調(diào)壓器控制,加熱煮沸水蒸氣發(fā)生瓶?jī)?nèi)的水。防止水中氨態(tài)氮的逸失而影響測(cè)定值。二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟防止水中氨態(tài)氮

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第二步氨的蒸餾

蒸餾②硼酸溶液的準(zhǔn)備:向接收瓶?jī)?nèi)加入20mL2%硼酸及2滴混合指示劑并使冷凝管下端插入液面下。

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第二步氨的蒸餾

蒸餾③開始蒸餾:吸取10.0mL樣品消化稀釋液注入凱氏定氮儀的反應(yīng)室中,用10mL蒸餾水沖洗進(jìn)樣入口,再加10mL40%氫氧化鈉溶液入反應(yīng)室(動(dòng)作要快,以防氨逸出),塞好入口玻璃塞,在入口處加水密封,防止漏氣。打開水蒸汽發(fā)生器與反應(yīng)室之間的夾子,蒸汽通入反應(yīng)室使氨氣被蒸發(fā)出來,并通過冷凝管而進(jìn)入接收瓶?jī)?nèi),以第一滴餾液滴下開始計(jì)時(shí),蒸餾5min,使冷凝管離開吸收液面,在蒸餾1min,用水沖洗冷凝管末端,洗液流入接收瓶中,取下接收瓶。最后關(guān)閉電源,絕不能先關(guān)閉電源,否則吸收液將發(fā)生倒吸!二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第二步氨的蒸餾注意事項(xiàng):凱氏定氮蒸餾過程中,要求整套裝置呈密閉狀態(tài),蒸餾前應(yīng)檢查定氮儀各導(dǎo)管間的連接處是否密閉,以免產(chǎn)生泄露;測(cè)定樣品前應(yīng)清洗蒸餾裝置,即用蒸餾水空蒸一次或數(shù)次;蒸餾后立即清洗蒸餾器。蒸餾完畢后,移取熱源,夾緊蒸汽發(fā)生器和收集器間的橡皮管,此時(shí)由于收集器溫度突然下降,即可將反應(yīng)室殘液吸至收集器。蒸餾時(shí),火力穩(wěn)定,蒸汽發(fā)生要均勻充足,蒸餾中途不得?;饠嗥?,否則發(fā)生倒吸。加堿要足量(反應(yīng)室液體呈深藍(lán)色或褐色)并且堿液不能污染冷凝管及接收瓶。二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

第三步滴定用微量酸式滴定管,以0.1或0.02mol/L鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行滴定,溶液由藍(lán)綠色變?yōu)榛壹t色為終點(diǎn)??瞻自囼?yàn):同時(shí)取10.0mL空白消化稀釋液同上操作,以校正藥品不純所發(fā)生的誤差。

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量3.測(cè)定步驟

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量4.結(jié)果計(jì)算CP——樣品中蛋白質(zhì)的含量(%);V1——樣品消耗鹽酸標(biāo)準(zhǔn)液的體積(mL);V2——空白實(shí)驗(yàn)消耗鹽酸標(biāo)準(zhǔn)液的體積(mL);C——鹽酸標(biāo)準(zhǔn)溶液通過標(biāo)定后的摩爾濃度(mol/L);0.014——每毫升鹽酸標(biāo)準(zhǔn)液(1mol/L)相當(dāng)于氮的克數(shù);m——樣品質(zhì)量(g);6.25——氮換算為蛋白質(zhì)的系數(shù)(換算系數(shù))。(大家想想6.25是如何計(jì)算出來的?)二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量4.結(jié)果計(jì)算

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量5.方法的評(píng)價(jià)凱氏法的優(yōu)點(diǎn)是適用范圍廣,可用于動(dòng)植物的各種組織,器官、各種飼料等成組復(fù)雜樣品的測(cè)定,只要細(xì)心操作都能得到較準(zhǔn)確的結(jié)果,至今仍被作為標(biāo)準(zhǔn)檢驗(yàn)方法。但此法靈敏度低,適用于0.2-1.0mg氮,操作比較復(fù)雜,所需時(shí)間長(zhǎng)。

用凱氏定氮法通過測(cè)總氮量來確定蛋白質(zhì)含量,包含了核酸、生物堿、含氮類脂、卟啉、以及含氮色素等非蛋白質(zhì)含氮化合物,所以這樣的測(cè)定結(jié)果稱為粗蛋白。

事件二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量5.方法的評(píng)價(jià)事件

二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量5.方法的評(píng)價(jià)不同的蛋白質(zhì)其氨基酸組成及比例方式不同,故各種不同的蛋白質(zhì)其含氮量也不同(約在14.7~19.5%,平均為16%),因而不同蛋白質(zhì)系數(shù)也不一樣。

Tyr(酪氨酸):分子量181.9,含氮量7.69;Ala(丙氨酸):分子量89.1,含氮量15.7;Lys(賴氨酸):分子量146.9,含氮量9.06。二、凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白含量5.方法的評(píng)價(jià)Tyr(酪氨

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(一)雙縮脲法(Biuret法)1.原理

雙縮脲是兩個(gè)分子脲經(jīng)180℃左右加熱,放出一個(gè)分子氨后得到的產(chǎn)物。NH2-CO-NH2+NH2-CO-NH2

NH2-CO-NH-CO-NH2

+NH3

在強(qiáng)堿性溶液中,雙縮脲與CuSO4形成紫色絡(luò)合物,稱為雙縮脲反應(yīng)。凡具有兩個(gè)酰胺基或兩個(gè)直接連接的肽鍵,這類化合物都有雙縮脲反應(yīng)。蛋白質(zhì)及多肽含有兩個(gè)以上的肽鍵(—CO—NH—),與雙縮脲的結(jié)構(gòu)類似,也能與Cu2+形成紫紅色絡(luò)合物,其最大光吸收在540nm處。其顏色深淺與蛋白質(zhì)濃度成正比,而與蛋白質(zhì)的分子量及氨基酸的組成無關(guān)。故可用來測(cè)定蛋白質(zhì)含量。三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(一)雙縮脲法

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(一)雙縮脲法(Biuret法)1.原理

在一定條件下,未知樣品的溶液與標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)溶液同時(shí)反應(yīng),并于540—560nm下比色,可以通過標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)的標(biāo)準(zhǔn)曲線求出未知的蛋白質(zhì)濃度,標(biāo)準(zhǔn)蛋白溶液可以用結(jié)晶的牛(或人)血清白蛋白、卵清蛋白或酪蛋白粉末配制。三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(一)雙縮脲法(B

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(一)雙縮脲法(Biuret法)2.方法評(píng)價(jià)該法的優(yōu)點(diǎn)是樣品不需消化處理,結(jié)果為飼料中蛋白質(zhì)的真實(shí)含量,操作簡(jiǎn)單,具有快速、準(zhǔn)確等優(yōu)點(diǎn)。但二肽含量不能測(cè)定(想想為什么?)。該法靈敏度低,測(cè)定蛋白質(zhì)的濃度范圍適于1~10mg/mL。雙縮脲法常用于蛋白質(zhì)的快速測(cè)定,但并不需要十分精確的蛋白質(zhì)測(cè)定。干擾這一測(cè)定的物質(zhì)主要有:硫酸銨、tris緩沖液和某些氨基酸等。除-CO-NH-有此反應(yīng)外,-CONH2-,-CH2-,NH2-,-CS-CS-NH2,等基團(tuán)亦有此反應(yīng)。

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(一)雙縮脲法(B

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(二)Folin-酚試劑法(Lowry法)1.原理

此法的顯色原理與雙縮脲方法相同,只是加入了第二種試劑,即Folin—酚試劑,以增加顯色量,從而提高了檢測(cè)蛋白質(zhì)的靈敏度。

這兩種顯色反應(yīng)產(chǎn)生深蘭色,原因是:在堿性條件下,蛋白質(zhì)中的肽鍵與銅結(jié)合生成復(fù)合物。Folin—酚試劑中的磷鉬酸鹽—磷鎢酸鹽被蛋白質(zhì)中的酪氨酸或色氨酸殘基還原,產(chǎn)生深蘭色(鉬蘭和鎢蘭的混合物)。在一定的條件下,蘭色深度與蛋白的量成正比。三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(二)Folin-

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(二)Folin-酚試劑法(Lowry法)2.方法評(píng)價(jià)本法的優(yōu)點(diǎn)是操作簡(jiǎn)便、靈敏度高,定量范圍為5~100μg蛋白質(zhì),較雙縮脲法靈敏100倍。此法也適用于酪氨酸和色氨酸的定量測(cè)定。其不足之處是此反應(yīng)受多種因素干擾。Folin試劑顯色反應(yīng)由酪氨酸、色氨酸和半胱氨酸引起,因此樣品中若含有酚類、檸檬酸和巰基化合物均有干擾作用。不同蛋白質(zhì)因酪氨酸、色氨酸含量不同而使顯色強(qiáng)度稍有不同,顯色的深淺往往隨不同的蛋白質(zhì)而變化。因而本測(cè)定法通常只適用于測(cè)定蛋白質(zhì)的相對(duì)濃度(相對(duì)于標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì))。Folin—酚試劑的配制較為困難(現(xiàn)在已可以訂購)。三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(二)Folin-

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(三)紫外吸收法1.原理

蛋白質(zhì)分子中,酪氨酸、苯丙氨酸和色氨酸殘基的苯環(huán)含有共軛雙鍵,使蛋白質(zhì)具有吸收紫外光的性質(zhì)。吸收高峰在280nm處,其吸光度(即光密度值)與蛋白質(zhì)含量成正比。

此外,蛋白質(zhì)溶液在238nm的光吸收值與肽鍵含量成正比。利用一定波長(zhǎng)下,蛋白質(zhì)溶液的光吸收值與蛋白質(zhì)濃度的正比關(guān)系,可以進(jìn)行蛋白質(zhì)含量的測(cè)定。三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(三)紫外吸收法

三、蛋白質(zhì)含量測(cè)定的其它方法(直接法)(三)紫外吸收法2.方法評(píng)價(jià)紫外吸收法簡(jiǎn)便、靈敏、快速,不消耗樣品,測(cè)定后仍能回收使用。低濃度的鹽,例如生化制備中常用的(NH4)2SO4等和大多數(shù)緩沖液不干擾測(cè)定。特別適用于柱層析洗脫液的快速連續(xù)檢測(cè),因?yàn)榇藭r(shí)只需測(cè)定蛋白質(zhì)濃度的變化,而不

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