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文檔簡介

1、生物技術一班發(fā)酵工程實驗計劃方案一、實驗日程表序號實驗項目時間實驗內容安排1培養(yǎng)基制備與滅菌預計8學時1、 固體培養(yǎng)基配制500mL/組,分裝2瓶;2、 培養(yǎng)皿清洗及包扎10副/組;無菌水90mL/瓶,9 mL/試管共6支;3、 1 mL or2 mL吸管包扎8支/組;4、 液體培養(yǎng)基制備:500ml/組,分裝8瓶,滅菌0.1MPa,20min.2菌種分離預計4學時1、菌種的分離純化:超凈工作臺消毒(UV照射20min)75%乙醇擦拭臺面;分離樣品無菌水溶解(稀釋10-2倍)渦旋震蕩5min;倒平板(10副平皿/組)平板劃線分離30倒置培養(yǎng)目標菌株獲得制片及觀察(顯微攝影)。3種子制備預計4學

2、時1、接種準備工作:超凈工作臺消毒(UV照射20min)75%乙醇擦拭臺面。2、純種培養(yǎng)接種:平板單一菌落種子培養(yǎng)基(2環(huán)/瓶)渦旋震蕩3-5min;3、搖瓶培養(yǎng):搖床設置及調節(jié)(30,200r/m)搖瓶固定啟動培養(yǎng)。4發(fā)酵罐結構認識、操作規(guī)程及分批發(fā)酵操作預計8學時1、 發(fā)酵培養(yǎng)基配制:20Lor35L。2、 發(fā)酵罐操作培訓:發(fā)酵罐初始狀態(tài)檢查及調節(jié)清洗(清水沖洗2-3遍)發(fā)酵罐運行啟動發(fā)酵罐運行參數(shù)設置空罐滅菌(0.15MPa,20min)進料實罐滅菌(0.1MPa維持30min)冷卻火焰封口接種發(fā)酵參數(shù)穩(wěn)定狀態(tài)調節(jié)與維持。3、 發(fā)酵取樣:取樣管滅菌取樣再滅菌;4、 發(fā)酵中間過程分析(0

3、hour): pH測定(pH計or精密試紙);酸度(中和法);酶濃度測定(福林酚法);菌體濃度測定(A600光密度法)5、 中間取樣:每間隔4h, 取樣管滅菌取樣再滅菌.共計4-6次 ;6、 發(fā)酵結束工作:器皿、設備還原,環(huán)境清潔2、 實驗分組第一組:薛盛、張川、周寧、殷清玉宇、周辰棟、楊朝偉、吳迪、 劉洋、劉麗婷 (負責人:吳迪)第二組:張怡、沈飛、徐依依、陸佳樺、吳冰燕、王蕓清鑒、葉晨、 汪素紅、劉杏、劉文躍 (負責人:沈飛)第三組:田玉寒、聞寧、林飛敏、李林棋、丁銘、周欣欣、羅斯、 蔣秋艷、劉宇霞 (負責人:田玉寒)3、 時間分配前三周的周二晚發(fā)酵理論課照上,因此各組的固定實驗時間如下:

4、第一組固定實驗時間:周一下午、周三晚上第二組固定實驗時間:周二中午、周四上午第三組固定實驗時間:周五下午、周五晚上后三周的周二晚無理論課,各組集中在周二晚實驗前三周每周安排兩次實驗,以獲取更多的實驗數(shù)據(jù),后三周每周一次集體實驗幾個重要時間節(jié)點為:第10周正式進入實驗程序; 第13周獲得目標菌株1株; 第14周完成種子的搖瓶培養(yǎng); 第15周分別完成上罐發(fā)酵; 第16周實驗收尾工作。 四、實驗內容實驗一 產(chǎn)蛋白酶微生物菌株的分離【實驗材料】 1、采樣樣品食堂泔腳等殘存蛋白質豐富的環(huán)境周圍的土壤或其它蛋白質腐敗材料。2、培養(yǎng)基(1)增殖培養(yǎng)基:蛋白胨10 g/L,牛肉膏3 g/L,氯化鈉5 g/L,

5、pH 7.07.2,0.1MPa,滅菌20min。(2)分離純化培養(yǎng)基:酪蛋白10 g/L,Na2HPO4 6 g/L,KH2PO4 3 g/L,NaCl 0.5 g/L,NH4Cl 1 g/L,F(xiàn)eSO4 0.025 g/L,酵母膏0.2 g/L,MgSO4 0.24 g/L,CaCl2 0.011 g/L,溴百里香酚蘭0.05 g/L,瓊脂20 g/L,pH 7.07.2,0.1MPa,滅菌20min。(3)菌種保存培養(yǎng)基:蛋白胨10g/L,牛肉膏3 g/L, NaCl 5g/L,瓊脂 20g/L,pH 7.07.2,0.1MPa, 滅菌20min。(4)無菌水:90 mL無菌水/250

6、mL三角瓶; 9 mL無菌水/試管6支。3、實驗器材刮鏟、一次性手套、無菌小塑料袋、試管、三角瓶、培養(yǎng)皿、吸管、接種環(huán)和涂布棒等。4、實驗設備渦旋振蕩器、超凈工作臺、高壓滅菌鍋、振蕩培養(yǎng)箱、恒溫培養(yǎng)箱、(數(shù)碼)顯微鏡?!緦嶒灢襟E】1、采樣分別取食堂泔腳池周邊土壤,腐爛基質或其它可能含有蛋白酶生產(chǎn)菌的生物制劑10g裝入無菌小塑料袋,在超凈工作臺上將樣品混合均勻從中稱取1g作為待增殖的采樣樣品。2、增殖培養(yǎng)1g待增殖的采樣樣品加入50 mL增殖培養(yǎng)基/250 mL三角瓶中,渦旋振蕩器上振蕩5min,可設置3組平行。混勻的液體置于30,180 r/min振蕩培養(yǎng)箱中搖瓶培養(yǎng)36 h。增殖后的培養(yǎng)液置

7、于80水浴中加熱10 min去除營養(yǎng)體細胞,迅速取出冷卻至常溫,待用。平行樣可以在加熱處理后再合并成一個樣作為增殖培養(yǎng)液。3、增殖液梯度稀釋在超凈工作臺中取增殖培養(yǎng)液10 mL加入裝有90 mL無菌水的250 mL三角瓶中,靜置5 min后用渦旋振蕩器上振蕩5 min,制成10-1稀釋菌液。用無菌吸管吸取1 mL 10-1稀釋菌液加入9 mL無菌水試管中,渦旋振蕩器1 min制成10-2稀釋菌液,再依次用無菌吸管吸取1 mL稀釋菌液加入9 mL無菌水試管中梯度稀釋成10-3、10-4、10-5、10-6、10-7倍稀釋菌液。4、平板涂布分別取0.1mL 10-6、10-7稀釋菌液于分離培養(yǎng)基平

8、板上,用無菌涂布棒分別涂布均勻,每一稀釋度重復5個平行。5、培養(yǎng)將涂布好的平板放入30微生物恒溫培養(yǎng)箱中倒置培養(yǎng)36 h后,觀察培養(yǎng)結果,統(tǒng)計總菌數(shù)、菌落種類及各自比例。6、菌株鑒別及純化挑取菌落周圍培養(yǎng)基變藍色的典型菌落,在保存培養(yǎng)基平板上劃線純化至單一菌落。顯微觀察菌體形態(tài)。純化后的純菌落作斜面菌種保藏作為后續(xù)實驗的備用菌種。【實驗結果】1、菌落總數(shù)MM = (1.1)2、 目標菌株比例PP= (1.2)式中:n為平板上菌落數(shù)(個),以出現(xiàn)30-300個菌落的平板計數(shù)為宜,0.1為涂布稀釋液加量(mL),10為量取的增殖培養(yǎng)液量(mL), m為變色菌落數(shù),N為所計數(shù)平板的稀釋倍數(shù)。3、顯微

9、觀察典型目標菌落及細胞形態(tài)。實驗二 蛋白酶生產(chǎn)菌種的篩選【實驗材料】1.待選菌種取“實驗1”分離出的待選菌株35株,或以枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)和地衣芽孢桿菌(Bacillus lichenifornis)等不同產(chǎn)蛋白酶性狀的菌株57株。2.培養(yǎng)基(1)鑒別培養(yǎng)基:酪蛋白10 g/L,Na2HPO4 6 g/L,KH2PO4 3 g/L,NaCl 0.5 g/L,NH4Cl 1 g/L,F(xiàn)eSO4 0.025 g/L,酵母膏0.2 g/L,MgSO4 0.24 g/L,CaCl2 0.011 g/L,溴百里酚藍0.05 g/L,瓊脂20 g/L,pH 7.07.2,0

10、.1MPa,滅菌20min。(2)驗證培養(yǎng)基:可溶性淀粉10 g/L,蛋白胨5 g/L,酵母膏0.25 g/L, KH2PO4 3 g/L,NaCl 0.5 g/L,MgSO4 0.24 g/L,pH 7.07.2,分裝成50mL培養(yǎng)基/250mL三角瓶,0.1MPa,滅菌20min。3.實驗器材游標卡尺、無菌移液管、無菌培養(yǎng)皿、三角瓶、吸管和涂布棒等。4.實驗設備恒溫水浴鍋、渦旋振蕩器、超凈工作臺、高壓蒸汽滅菌鍋、恒溫培養(yǎng)箱、振蕩培養(yǎng)箱、紫外可見分光光度計、顯微鏡等。【實驗步驟】1.倒平板將已經(jīng)滅菌的鑒別培養(yǎng)基自然冷卻至50左右(即未凝固之前??梢詫⒀b有融化狀態(tài)培養(yǎng)基的三角瓶放在50恒溫水浴

11、鍋中保持。注意倒平板時培養(yǎng)溫度過高,培養(yǎng)皿蓋上易產(chǎn)生較多的冷凝水,影響菌落形成的自然形態(tài)),在超凈工作臺上無菌操作倒平板,培養(yǎng)基凝固后待用。2.點種接種無菌操作用接種環(huán)從待選菌株斜面上取一環(huán)菌苔點種在鑒別培養(yǎng)基平板上,每平板上選取分布合適的三個點以點種接種方式接入菌體,在平板培養(yǎng)皿上標記各菌株代號。不同菌株分別接種在不同平板上,各菌株分別做3組平行試驗。3.培養(yǎng)接種后的平板置于3032下恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)36 h。4.變色圈測量分別在培養(yǎng)12h、24 h和36h時用游標卡尺從平板培養(yǎng)皿背面分別測定各菌的變色圈直徑(mm)與菌落直徑(mm),計算其直徑比值。5.驗證性培養(yǎng)選取變色圈直徑與菌落直徑比

12、值最大的菌株與最小的菌株用接種環(huán)分別接入2環(huán)菌體于驗證液體培養(yǎng)基中,3032,180r/min振蕩培養(yǎng)箱中搖瓶培養(yǎng)48 h,將發(fā)酵液過濾或離心,取清夜檢測其中的蛋白酶產(chǎn)量(U)。6.蛋白酶活力測定參照附件“蛋白酶活力測定方法”?!緦嶒灲Y果】1、蛋白酶生產(chǎn)菌種的篩選表1-1 蛋白酶生產(chǎn)菌種的篩選培養(yǎng)時間平均直徑菌株1菌株2菌株3菌株4菌株512h變色圈直徑/mm菌落直徑/mm直徑比值24h變色圈直徑/mm菌落直徑/mm直徑比值36h變色圈直徑/mm菌落直徑/mm直徑比值平均變色速率/(mm/h)注:平均變色速率為單位時間內菌落周圍藍色變色圈直徑增加的程度,用mm/h表示。2、篩選菌株產(chǎn)酶活性表1

13、-2 菌株產(chǎn)蛋白酶結果驗證菌株編號培養(yǎng)液(mL)24h酶濃度(U/mL)36h酶濃度(U/mL)對照菌株總酶活(U)高產(chǎn)菌株總酶活(U)注:總酶活(U)=培養(yǎng)液中酶濃度(U/mL)×培養(yǎng)液總體積(mL)。實驗二十一 發(fā)酵菌種制備【實驗材料】1、菌種實驗選育產(chǎn)蛋白酶菌株,或枯草芽孢桿菌等其它產(chǎn)蛋白酶菌株。2、培養(yǎng)基(1)斜面培養(yǎng)基:牛肉膏蛋白胨瓊脂培養(yǎng)基(配方參照附錄六“常用培養(yǎng)基”)(2)種子培養(yǎng)基:可溶性淀粉5g/L,牛肉膏 5g/L ,蛋白胨 10g/L,NaCl 5g/L,0.1MPa,滅菌20min。3、實驗器材三角瓶、容量瓶、吸管(1mL,5mL,25mL)、烘箱、試管架。

14、5、實驗儀器超凈工作臺、恒溫培養(yǎng)箱、振蕩培養(yǎng)箱、高壓蒸汽滅菌器、顯微鏡、分光光度計等?!緦嶒灢襟E】1、菌種活化將實驗菌種轉接到牛肉膏蛋白胨瓊脂培養(yǎng)基平板上,37倒置培養(yǎng)2224 h活化。2、接種培養(yǎng)將活化菌種無菌操作接入裝入50mL種子培養(yǎng)基/250mL三角瓶中,每瓶接2環(huán)菌苔。接種后的培養(yǎng)液用蝸旋振蕩均勻,32,180r/min搖瓶培養(yǎng)1822 h,作為一級種子。將一級種子按20%的接種量接入250 mL種子培養(yǎng)基/1000mL三角瓶中,32,150r/min搖瓶培養(yǎng)1618 h,作為二級種子。3、種子質量檢查培養(yǎng)后的種子培養(yǎng)液無菌操作取樣5mL,分別作顯微鏡涂片染色檢驗細胞形態(tài),測定培養(yǎng)中

15、的菌體濃度(OD600)和蛋白酶濃度(U/mL)。4、檢測方法菌體濃度和蛋白酶含量檢測參照附錄九“菌體濃度檢測方法”和“蛋白酶含量測定方法”。【實驗結果】1、種子液中菌種細胞形態(tài)圖。2、種子質量指標表1 種子質量指標檢測項目實測值參考指標備注菌體濃度(OD600)凈增加值>1.0產(chǎn)物濃度(U/mL)<10菌體形態(tài)短桿菌,芽孢形成率60-70%雜菌污染陰性結論實驗二十二 發(fā)酵罐結構認識及使用操作規(guī)程【實驗目的】了解發(fā)酵系統(tǒng)的基本組成,認識典型機械攪拌通氣式發(fā)酵罐的基本結構,學習發(fā)酵罐工作的一般原理,學會發(fā)酵罐使用的操作規(guī)程?!緦嶒瀮热荨?、發(fā)酵罐基本結構組成(1)罐體系統(tǒng): 罐體、夾

16、套、攪拌器、擋板、進料口、接種口、放料口、排氣管、進氣管、取樣管、照明燈等。(2)滅菌系統(tǒng):蒸汽發(fā)生器、蒸汽分配管、夾套加熱裝置、放料口滅菌裝置、通氣管取樣管滅菌裝置、空氣過濾系統(tǒng)滅菌裝置。(3)溫度控制系統(tǒng):罐內溫度傳感器(電極)、水箱溫度傳感器(電極)、恒溫水箱、恒溫水循環(huán)管路。(4)無菌空氣制備系統(tǒng):空氣壓縮機、氣液分離器、氣體流量計、氣流調節(jié)器、空氣粗過濾器和空氣精過濾器等。(5)控制系統(tǒng):電源開關、操作顯示屏、控制器觸摸開關、參數(shù)設置轉換調節(jié)屏。2、 發(fā)酵罐操作規(guī)程(1)發(fā)酵罐工藝操作條件設置溫度:1050。壓力:00.3MPa(表壓)。滅菌條件;溫度120125,壓力00.3MPa

17、 (表壓)。通氣量:0.32 V/V/M。功率消耗:0.54kW/m3。發(fā)酵熱量:5,00020,000 kcal/m3h。(2)清洗工作清洗前應取出pH、DO電極。清洗罐內可配合進水、進氣、電機攪拌、加溫一起進行。清洗后安裝要注意罐內密封圈、硅膠墊就位情況。注意罐與罐座間隙均衡。(3)試車將電極、電機、電纜、進出氣軟管、冷凝器進出水接頭安裝就位;安裝完畢后要對罐體內通氣(0.2MPa)作密封性試驗。方法如下:關閉 閥門;旋緊罐體上每一個接口、堵頭、電極緊固帽;打開空壓機,調節(jié)氣閥,使罐壓保持0.2MPa左右;對系統(tǒng)進行23小時試運行,如有問題作相應處理后,方可正式使用。 (4)發(fā)酵罐使用準備

18、如果短期內需再次培養(yǎng)發(fā)酵,應對其進行23次清水清洗待用。如準備長期停用,則應對其進行滅菌,然后放去水箱與罐內存水,放松罐蓋緊固螺絲,取出電極保養(yǎng)儲存好,將罐、各管道余水放凈,關閉所有閥門,電源,蓋上防塵罩。發(fā)酵罐操作開始前,先關閉所有出料口、取樣口和進氣口,打開出氣閥;打開進料口螺蓋加入發(fā)酵培養(yǎng)基,裝注完成后旋上進料口螺蓋,稍留空隙待滅菌升溫至100前噴出蒸汽對螺蓋滅菌處理。(5)滅菌啟動蒸汽發(fā)生器,待氣壓達到0.20.3Mpa以上時:a. 開啟發(fā)酵罐出氣閥,開啟高壓蒸汽閥將高壓蒸汽通過進氣閥引入夾套,打開夾套排水閥,排除蒸汽冷凝水,控制閥門開量,保持微弱出汽;b. 同時通過蒸汽分配管將蒸汽引

19、入空氣過濾系統(tǒng)(注意:蒸汽引入前關閉通向電器控制柜的空氣閥門),使蒸汽通過一級和二級空氣過濾器并順利進入取樣口出口,保持取樣放出口微弱出汽;c. 另一路蒸汽通過蒸汽閥發(fā)酵罐放料口,并保持放料口微弱出汽;d.等到罐內培養(yǎng)基溫度達到80時,開啟與罐直接相連的通氣閥,將高壓蒸汽直接接入罐內加熱培養(yǎng)基,并對與罐相連的管道滅菌。e. 直到罐內培養(yǎng)基開始沸騰后,關閉排氣閥,使罐內升壓至0.1Mpa(或滅菌溫度121),維持溫度0.5-1.0小時。f. 關閉蒸汽進氣閥,開啟冷卻水管路系統(tǒng),通過夾套冷卻發(fā)酵培養(yǎng)基,當罐內壓力接近常壓前向罐內通入無菌空氣,保持罐內空氣壓力0.03MPa上下,至發(fā)酵溫度關閉冷卻水

20、系統(tǒng)。g.啟動空氣壓縮機,開啟進氣閥、使壓縮空氣通過旋風分離器及空氣過濾器,從進氣閥進入發(fā)酵罐,使溶解氧濃度達到發(fā)酵初始水平。(6)接種:火焰接種法在接種口用酒精火圈維持加料口的無菌狀態(tài),然后打開接種口蓋,迅速將接種液倒入罐內,在把蓋擰緊。(7)發(fā)酵狀態(tài)調節(jié)a.罐壓:發(fā)酵過程中須手動控制罐壓,即用出口閥控制罐內壓力。調節(jié)空氣流量的,須同時調節(jié)出口閥,應保持罐內壓力恒定大于0.03Mpa。 b. 溶解氧(DO)的測量和控制: 溶解氧的標定:在接種前,在恒定的發(fā)酵溫度下,將轉速及空氣量開到最大值時的溶解氧DO值作為100%。發(fā)酵過程的溶解氧DO測量和控制:DO的控制可采用調節(jié)空氣流量和調節(jié)轉速來達

21、到。最簡單是轉速和溶氧的關聯(lián)控制。其次則必須同時調節(jié)進氣量(手動)控制。有時需要通入純氧(如在某些基因工程菌的高密度培養(yǎng)中)才能達到要求的DO值。c. pH的測量與控制:在滅菌前應對pH電極進行pH值的校正。在發(fā)酵過程中pH值的控制使用蠕動泵的加酸加堿來達到的,酸瓶或堿瓶須先在滅菌鍋中滅菌。旋松進料口螺旋蓋,在進料口環(huán)槽中加入適量酒精棉,點燃酒精,打開進料口螺旋蓋,將種子三角瓶菌液接入發(fā)酵罐。攪拌均勻后,開始發(fā)酵控制。(8)取樣: 間隔8 h,開啟取樣閥取樣300-500mL發(fā)酵液分別測定殘?zhí)?、菌濃、酸度等?shù)值。發(fā)酵參數(shù)到達放罐指標時,發(fā)酵結束。(9) 放料: 打開放料閥,將發(fā)酵液全部排出;(

22、10) 清洗: 放罐后用水清洗發(fā)酵罐2-3次,洗凈后通蒸汽消毒15min。培養(yǎng)后用干凈抹布要清除電器箱、電纜等接頭和其他罐體部件上的物體。實驗二十三 發(fā)酵培養(yǎng)基配制及發(fā)酵罐原位滅菌【實驗材料】1、材料可溶性淀粉,蛋白胨,酪蛋白,牛肉膏,酵母浸出膏,NH4Cl,消泡劑,pH試紙;NaOH;HCl;2、發(fā)酵培養(yǎng)基可溶性淀粉 10 g/L,蛋白胨8 g/L,NH4Cl 2.5 g/L,KH2PO4 3 g/L,F(xiàn)eSO4 0.025 g/L, MgSO4 0.24 g/L,酵母浸出膏0.5g/L,消泡劑0.1 g/L, pH 7.07.2。3、實驗器材三角瓶、容量瓶、吸管(1mL,5mL,25mL)

23、、烘箱、試管架。4、實驗儀器電子天平;50L機械攪拌式通氣式發(fā)酵罐、空氣壓縮機、貯氣罐、分水器、空氣粗濾器、空氣精濾器、蒸汽發(fā)生器等?!緦嶒灢襟E】1、培養(yǎng)基原料計算計算發(fā)酵罐裝料系數(shù)為0.75時的培養(yǎng)基總量,按發(fā)酵培養(yǎng)基配方組成計算各營養(yǎng)物質的用量。2、原料稱量用電子天平準確稱量各物質,對于微量物料的衡量應先配制10倍或100倍的母液再減量添加。3、培養(yǎng)基原料溶解將培養(yǎng)基的組分分別加入到帶一定體積水的5L大燒杯或桶中,攪拌溶解,添加一種原料溶解一種,直到全部加完。4、培養(yǎng)基裝料用塑料勺通過漏斗將配制好的發(fā)酵培養(yǎng)基從發(fā)酵罐頂部的裝料口加入發(fā)酵罐,水加量比計算體積減少約1L以抵充在發(fā)酵罐管道滅菌時

24、蒸汽直接通往發(fā)酵罐內形成冷凝水對培養(yǎng)的的稀釋作用。5、培養(yǎng)基調pH值用0.1mol/LHCl或0.1mol/L NaOH從加料口滴入發(fā)酵罐,邊滴入邊攪拌,不斷從放料口取樣測定發(fā)酵培養(yǎng)基pH,直到調節(jié)培養(yǎng)基pH值至配方要求的pH值為止。6、原位滅菌打開發(fā)酵罐待用狀態(tài)時的夾套進汽閥門,小開放夾套排汽閥門,開啟發(fā)酵罐攪拌器,邊攪拌邊加熱,至發(fā)酵培養(yǎng)基溫度達到80時同時開啟放料口滅菌蒸汽閥門和放料閥門,將蒸汽引入發(fā)酵罐內,對放料口及其附屬管道滅菌;開啟進氣管閥門對通氣生產(chǎn)關系進行滅菌。直到培養(yǎng)基溫度大于100時通過排氣閥排盡罐內空氣后關閉排氣閥、放料閥和進氣閥,通過夾套繼續(xù)升溫至設定的培養(yǎng)基滅菌溫度,

25、并在此溫度下維持設定的滅菌時間。7、培養(yǎng)基降溫關閉夾套進汽閥,切換發(fā)酵罐冷卻系統(tǒng),將冷卻介質(通常為自來水)從夾套引入對高溫培養(yǎng)基進行冷卻,當罐內壓力接近常壓(表壓為0 MPa)時開啟進氣閥門向罐內引入無菌空氣,并始終維持罐內表壓為0.02-0.03 MPa,直到到達設定的發(fā)酵溫度,發(fā)酵罐實施自動恒溫發(fā)酵控制。8、無菌檢查從取樣口取出少量無菌培養(yǎng)基作無菌檢測用,取樣后用高壓蒸汽對取樣口消毒5min。樣品按“細菌稀釋計數(shù)法”進行雜菌殘留檢測?!緦嶒灲Y果】1、培養(yǎng)基滅菌后無菌效果檢測表1 培養(yǎng)基滅菌后無菌效果檢測報告檢測項目實測值備注雜菌體形態(tài)雜菌數(shù)量(cfu/mL)結 論實驗三十一 發(fā)酵過程殘?zhí)欠治觥緦嶒灢牧稀?、測試樣品蛋白酶發(fā)酵過程中的含糖或淀粉的發(fā)酵基質。2、試劑(1)斐林試劑甲液:稱取35克硫酸銅(CuSO4·5H20),0.05克次甲基藍,用水溶解并稀釋至1000mL,如有不溶物可用濾紙過濾。乙液;稱取117克酒石酸鉀鈉,126.4克氫氧化鈉,9.4克亞鐵氰化鉀,用水稀釋至1000mL。

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