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文檔簡介
65.020.01B
04
DB12
天津市質(zhì)量技術(shù)監(jiān)督局發(fā)布DB12/T
505—2014前 言本標(biāo)準(zhǔn)按照
GB/T1.1—2009
本標(biāo)準(zhǔn)由天津市質(zhì)量技術(shù)監(jiān)督局提出。本標(biāo)準(zhǔn)起草單位:天津市東麗區(qū)產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)督檢驗所、天津市農(nóng)業(yè)質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)與檢測技術(shù)研究所。本標(biāo)準(zhǔn)主要起草人:黃鳳軍、李建、趙新、陳杰、易萌、朱珠、馬強、楊炳存。本標(biāo)準(zhǔn)
2014
年
04
IDB12/T
505—2014玉米轉(zhuǎn)基因成分篩查方法1
范圍本標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定了玉米中轉(zhuǎn)基因成分定性
篩查的術(shù)語和定義、檢測方法、結(jié)果分析與表述。本標(biāo)準(zhǔn)適用玉米及其制品中
zSSIIb
內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因、CaMV35S
Bt
bar基因、
基因的定性
篩查檢測2
規(guī)范性引用文件下列文件對于本文件的應(yīng)用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,僅注日期的版本適用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改單)適用于本文件。GB/T
6682 分析實驗室用水規(guī)格和試驗方法NY/T
672 轉(zhuǎn)基因植物及其產(chǎn)品檢測 農(nóng)業(yè)部
2031
號公告—19—2013
農(nóng)業(yè)部
1485
號公告—4—2010 轉(zhuǎn)基因植物及其產(chǎn)品成分檢測 DNA
提取和純化3
術(shù)語和定義下列術(shù)語和定義適用于本文件。3.1
基因
gene編碼玉米淀粉合酶異構(gòu)體
Ⅱ-2
3.2CaMV35S
啟動子
35S
promoter
from
mosaic
(CaMV)來自花椰菜花葉病毒的
35S
3.3NOS
終止子
of
(NOS)
來自胭脂堿合成酶基因
NOS
的終止子。3.4
基因
(
)來源與蘇云金芽胞桿菌(
thuringiensis),可表達(dá)一種殺蟲晶體蛋白的基因,常見的基因有cry1Ac基因、cry1Ab基因、融合基因。3.5bar
基因
resistance
hygroscopicus,PAT)。該酶具有對除草劑草丁膦()的耐受性。3.6HPT
基因 HPT
來源于大腸桿菌或鏈球菌(
),編碼潮霉素磷酸轉(zhuǎn)移酶()的基因。1檢測基因引物序列擴增片段長度基因性質(zhì)zSSIIb
:5′-
:5′-
151
bp內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因CaMV35S35S
:35S
:195
bp外源基因NOSNOS
:NOS
:180
bp外源基因BtBt
:5′-
Bt
:5′-
301
bp外源基因barbar
:5′-
bar
:5′-
262
bp外源基因DB12/T
505—20144
檢測方法4.1
試劑和材料4.1.1
GB/T
6682
4.1.2
4.1.3
10
g/L
稱取
1.0
g
溴化乙錠(EB),溶于
水中,避光保存。注:溴化乙錠有致癌作用,配制和使用時應(yīng)戴一次性手套操作并妥善處理廢液。4.1.4
10
氫氧化鈉溶液:在
160
水中加入
80.0
g
氫氧化鈉(NaOH到
200
。4.1.5
500
稱取
18.6
g
EDTA-Na加入
70
溶液(4.1.4)調(diào)
至
8.0
100
。在
103.4
(121
20
。4.1.6
1
三羥甲基氨基甲烷-鹽酸溶液(
稱取
g
三羥甲基氨基甲烷()溶解于
800
至
8.0
1
000
103.4
(121
20。4.1.7
TE
8.0):分別量取
三羥甲基氨基甲烷-4.1.6
2
乙二銨四乙酸二鈉溶液(
1
000
。在
103.4
(121
20
。4.1.8
50×
緩沖液:
242.2
g
300
水加熱攪拌溶解后,加
100
乙二銨四乙酸二鈉溶液(4.1.5
至
8.0
1
。使用時用水稀釋成
1×。4.1.9
稱取
10
12
h
250.0
二甲基苯腈藍(lán),用
10
水溶解;稱取
50.0
g
蔗糖,用
30
水溶解。混合以上三種溶液,加水定容至
100,在
4
℃下保存。4.1.10
分子量標(biāo)準(zhǔn):
50
bp~1
000
bp
的
DNA
片段。4.1.11
混合溶液:
10
的
、、dGTP、
四種脫氧核糖核苷酸溶液等體積混合。4.1.12
Taq
25
氯化鎂溶液。4.1.13 引物:玉米內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因和轉(zhuǎn)基因玉米外源基因檢測時所用的引物序列見表
1。表1
2試劑終濃度體積水——10×PCR
緩沖液1×2.5
μL
hpt
:5′-
hpt
:5′-
472
bp
hpt
:5′-
DB12/T
505—2014外源基因4.1.14
引物溶液:用
緩沖液()或水分別將上述引物稀釋到
10
μ。4.1.15 石蠟油。4.1.16
4.1.17
提取試劑盒。4.2
儀器4.2.1
分析天平:
0.1
g
和
0.1
。4.2.2
升降溫速度>1.5
℃<1.0
℃。4.2.3
電泳槽、電泳儀等電泳裝置。4.2.4
紫外透射儀。4.2.5
4.2.6
4.2.7
其他相關(guān)儀器設(shè)備。4.3
4.3.1
抽樣按
NY/T
672
和農(nóng)業(yè)部
號公告—19—2013
規(guī)定的執(zhí)行。4.3.2
按
NY/T
672
和農(nóng)業(yè)部
號公告—19—2013
規(guī)定的執(zhí)行。4.3.3
試樣預(yù)處理按農(nóng)業(yè)部
4—
規(guī)定的執(zhí)行。4.3.4
按農(nóng)業(yè)部
4—
規(guī)定的執(zhí)行。4.3.5
4.3.5.1
反應(yīng)4.3.5.1.1
反應(yīng)設(shè)置
3
4.3.5.1.2 在
反應(yīng)管中按表
2
25
μL
表2
PCR檢測反應(yīng)體系3基因名稱變性擴增循環(huán)次數(shù)最終延伸zSSIIb94
℃,5
94
℃,30
s58
℃,30
s72
℃,30
s3572
℃,7
CaMV35S94
℃,5
94
℃,30
s60
℃,30
s72
℃,30
s3572
℃,7
NOS94
℃,5
94
℃,30
s60
℃,30
s72
℃,30
s3572
℃,7
Bt95
℃,5
94
℃,1
56
℃,30
s72
℃,30
s3572
℃,7
bar95
℃,5
94
℃,30
s63
℃,30
s72
℃,30
s3572
℃,7
95
℃,5
94
℃,30
s60
℃,30
s72
℃,30
s3572
℃,7
25
mmol/L氯化鎂溶液1.5
mmol/L1.5
μLdNTPs
混合溶液(各
2.5
mmol/L)各
0.2
mmol/L2.0
μL10
μmol/L上游引物0.5
μ0.25~1.25
μL10
μmol/L下游引物0.1~5
μmol/L0.25~1.25
μL
酶0.025
μL——25
DNA模板2
2.0
μL總體積25.0
μL根據(jù)
酶的濃度確定其體積,并相應(yīng)調(diào)整水的體積,使反應(yīng)體系總體積達(dá)到
μL。如果
PCR
緩沖液中含有氯化鎂,則不加氯化鎂溶液,加等體積水。注
1
PCR
和
0.2μ;CaMV35S
啟動子
PCR
檢測反應(yīng)體系中,上下游引物分別是
和
35S-R,引物終濃度分別為0.4μ;NOS終止子PCR和0.4μ;Bt
基因
PCR
和
Bt-R
0.5μ;bar
基因
PCR
檢測反應(yīng)體系中,上、下游引物分別是
和
,引物終濃度分別為
0.2μmol/L;
基因
PCR
檢測反應(yīng)體系中,上下游引物分別是
和
,引物終濃度分別為0.2μmol/L。DB12/T
505—20144.3.5.1.3 將
管放在離心機上,
000
g
離心
10
s,然后取出
管,放入
DB12/T
505—2014中。4.3.5.1.4 進(jìn)行
反應(yīng)。反應(yīng)程序按表
3
表3
PCR反應(yīng)程序4.3.5.1.5 反應(yīng)結(jié)束后取出
管,對
4DB12/T
505—20144.3.5.2
反應(yīng)在試樣
以非轉(zhuǎn)基因玉米基因組
DNA
CaMV35S、、Bt、bar、
基因的轉(zhuǎn)基因玉米質(zhì)量分?jǐn)?shù)為
DNA
作為陽性對照;以水作為空白對照。各對照
反應(yīng)體系中,除模板外,其余組分及
反應(yīng)條件與
4.3.6
按
20
1×
瓊脂糖溶液中加入
5
μL
EB
溶液,混勻,稍適冷卻后,將其倒入電泳板上,插上梳板,室溫下凝
1×
12
μL
產(chǎn)物與
3
μL
加樣緩沖液
DNA
2
V/cm條件下電泳檢測。4.3.7
凝膠成像分析電泳結(jié)束后,取出瓊脂糖凝膠,置于凝膠成像系統(tǒng)或紫外透射儀上成像。根據(jù)
DNA
分子量標(biāo)準(zhǔn)
擴增片段是否為目的
DNA
片段,按照
和
4.3.9
的規(guī)定執(zhí)行。4.3.8
按
產(chǎn)物回收試劑盒說明書,回收
擴增的
片段。4.3.9
將回收的
產(chǎn)物克隆測序,與玉米內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因
zSSIIb、CaMV35S、NOS、Bt、bar、
基因序列(參見附錄
A)進(jìn)行比對,確定
片段是否為目的
DNA
片段。5
結(jié)果分析與表述5.1
陽性對照的
反應(yīng)體系正常。否則表明
反應(yīng)體系不正常,需要查找原因重新檢測。5.2
樣品檢測結(jié)果分析和表述5.2.1 在試樣的
反應(yīng)中,內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因得到擴增,且擴增片段大小與預(yù)期片段大小一致;而CaMV35S
NOS
Bt
基因、
基因均未得到擴增,或擴增片段大小與預(yù)期片段大小不一致,表明試樣中未檢測出轉(zhuǎn)基因成分。結(jié)果表述為“試樣中未檢測出
啟動子、NOS
Bt
bar
5.2.2
反應(yīng)中,內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因得到擴增,且擴增片段大小與預(yù)期片段大小一致;啟動子、
Bt基因、
基因和
段大小一致,表明試樣中檢測出轉(zhuǎn)基因成分。結(jié)果表述為“試樣中檢測出
5DB12/T
505—2014附錄A(資料性附錄)A.1
基因擴增產(chǎn)物核苷酸序列1
CTCCCAATCC
TTTGACATCT
GCTCCGAAGC
AAAGTCAGAG
CGCTGCAATG
CAAAACGGAA61
CGAGTGGGGG
CAGCAGCGCG
CGGACCCAAA
GCTGATCATC121
CATCAGCTCC
TGTCACCAAG
AGAGAAATCG
A注A.2
CaMV35S啟動子擴增產(chǎn)物核苷酸序列1
GCTCCTACAA
ATGCCATCAT
TGCGATAAAG
GAAAGGCTAT
CATTCAAGAT
GCCTCTGCCG61
ACAGTGGTCC
CAAAGATGGA
CGTGGAAAAA
GAAGACGTTC121
CAACCACGTC
TTCAAAGCAA
GTGGATTGAT
CACTGACGTA
AGGGATGACG181
CACAATCCCA
注A.3
終止子擴增產(chǎn)物核苷酸序列1
GAATCCTGTT
GCCGGTCTTG
CGATGATTAT
CATATAATTT
CTGTTGAATT
ACGTTAAGCA61 TGTAATAATT
AACATGTAAT
TGGGTTTTTA
TGATTAGAGT121 CCCGCAATTA
TACATTTAAT
ACGCGATAGA
TAGCGCGCAA
ACTAGGATAA注:劃線部分為引物序列注:劃線部分為引物序列A.4
基因擴增產(chǎn)物核苷酸序列1
GAAGGTTTGA
GCAATCTCTA
CCAAATCTAT
GCAGAGAGCT
TCAGAGAGTG
GGAAGCCGAT61
CCTACTAACC
CAGCTCTCCG
TCAACGACAT
GAACAGCGCC121
TTGACCACAG
CTATCCCATT
GTTCGCAGTC
AAGTTCCTCT
CTTGTCCGTG181
TACGTTCAAG
CAGCTAATCT
TCACCTCAGC
ACGTTAGCGT
GTTTGGGCAA241
AGGTGGGGAT
TCGATGCTGC
AACCATCAAT
ACGACCTTAC
TAGGCTGATC301
G注A.5
bar基因擴增產(chǎn)物核苷酸序列1
GAAGGCACGC
AACGCCTACG
ACTGGACGGC
CGAGTCGACC
GTGTACGTCT
CCCCCCGCCA61 CCAGCGGACG
GGACTGGGCT
CTGAAGTCCC
TGGAGGCACA121 GGGCTTCAAG
AGCGTGGTCG
CTGTCATCGG
GACCCGAGCG
TGCGCATGCA181 CGAGGCGCTC
GGATATGCCC
CCCGCGGCAT
GCCGGCTTCA
AGCACGGGAA241
CTGGCATGAC
GTGGGTTTCT
GG6DB12/T
505—2014注A.6
HPT基因擴增產(chǎn)物核苷酸序列1
GAAGTGCTTG
ACATTGGGGA
GTTTAGCGAG
AGCCTGACCT
ATTGCATCTC
CCGCCGTGCA61
CAGGGTGTCA
CGTTGCAAGA
CCGCTGTTCT
ACAACCGGTC121
GCGGAGGCTA
TGGATGCGAT
CGCTGCGGCC
AGACGAGCGG
GTTCGGCCCA181
TT
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