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文檔簡(jiǎn)介
第六部分放射性核素在生物和醫(yī)學(xué)中的應(yīng)用第一頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五第一節(jié)放射自顯影技術(shù)放射自顯影技術(shù)-是利用放射性核素衰變時(shí)發(fā)射的射線對(duì)乳膠的感光作用,在乳膠底片上現(xiàn)出影像,以顯示標(biāo)本或樣品中的放射性物質(zhì)的分布、定位和定量的方法。
分子克?。梗叮祱D第二頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五放射自顯影技術(shù)的優(yōu)缺點(diǎn):1、
能準(zhǔn)確示蹤定位。顯示形態(tài)與功能的定位關(guān)系。2、
能在整體平面上同時(shí)比較,注入體內(nèi)后的標(biāo)記物質(zhì)在各個(gè)臟器內(nèi)的分布與代謝狀態(tài),分析在各臟器中的攝取量,在不同時(shí)期的吸收、分布、轉(zhuǎn)運(yùn)與排泄途徑等動(dòng)態(tài)關(guān)系。3、
是細(xì)胞內(nèi)物質(zhì)代謝研究的有力工具。4、缺點(diǎn)是對(duì)某一位置上的放射性一般只能相對(duì)定量。
第三頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五用于放射自顯影的感光材料
(是由鹵化銀和明膠所組成的乳膠)感光材料特點(diǎn)鹵素離子與銀離子按一定規(guī)律、一定距離排列,形成一立方形的晶體點(diǎn)陣。
具有理想晶體結(jié)構(gòu)的鹵化銀晶體對(duì)光線和核射線的作用不靈敏。采用不同配方和制作工藝,使鹵化銀晶體出現(xiàn)晶體缺陷(不是完全規(guī)則的六面體立方結(jié)晶,而呈如三角形、圓形等)。導(dǎo)致晶體內(nèi)部的電荷不平衡。電荷不平衡之處對(duì)相反的電荷形成陷阱(亦稱敏化中心)。陷阱對(duì)提高乳膠的靈敏度,起著重要的作用。
主要采用的感光材料有:原子核乳膠:原子核乳膠是自顯影中較理想的感光材料。它的銀鹽顆粒直徑在0.2—0.5μm,密度大(1013銀顆粒/平方厘米),分辨率高。主要用于微觀放射自顯影。X光片:X光片兩面都涂有保護(hù)層,防止乳膠層被劃傷,其乳膠銀顆粒較大,平均直徑為2.5—3μm,密度較?。?×109銀顆粒/立方厘米)。氚片:氚片銀粒的平均直徑是1μm,單面沒(méi)有保護(hù)層,因?yàn)楸Wo(hù)層將吸收90%以上的發(fā)射的β粒子。其余性能與X光片類似。第四頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五選擇乳膠一般從敏感度和分辨率兩方面來(lái)考慮。
質(zhì)量好的乳膠,顆粒細(xì)、密度大、敏感度低,則分辨力高。
反之銀鹽的顆粒愈大,敏感度愈大,分辨力也愈差。
第五頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五劑量與曝光
:
放射性劑量給予的大小、曝光時(shí)間的長(zhǎng)短與放射自顯影乳膠底片影像效果好壞有很大關(guān)系。
在一個(gè)實(shí)驗(yàn)中如何選取兩者的大小,人們?cè)趯?shí)際實(shí)驗(yàn)中有很多經(jīng)驗(yàn)。如:分不同的時(shí)間取片等。
也有人推薦下面公式:
設(shè):L為單位面積上衰變的放射性強(qiáng)度
A0為單位時(shí)間上開(kāi)始曝光時(shí)的放射性強(qiáng)度(μCi/cm2)
At為單位時(shí)間上終了曝光時(shí)的放射性強(qiáng)度(μCi/cm2)
t為曝光時(shí)間,T為半衰期
則因?yàn)樗缘诹?yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五乳膠感光原理
(1)(2)(3)(4)(1)核射線與乳膠作用時(shí),電離產(chǎn)生的電子;
(2)電子向敏化中心移動(dòng),形成一陰電層;
(3)銀離子向陰電層聚集,與此同時(shí)銀離子被還原成銀原子;
(4)銀原子在敏化中心周圍集中而形成潛影。
這些潛影將在顯影過(guò)程中起著重要地催化作用。因而也稱為“顯影中心”。
第七頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五注意:
已經(jīng)建立起來(lái)的潛影,在水、氧作用下會(huì)消退(這個(gè)現(xiàn)象的實(shí)質(zhì)是溴化銀晶體中所產(chǎn)生的極少量的銀原子又退變成離子返回晶格),而失去原來(lái)的催化作用。
所以在“曝光”期間應(yīng)注意干燥、低溫和隔氧。
第八頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五顯影、停影和定影
顯影和顯影液(顯影劑、促進(jìn)劑、保護(hù)劑和抑制劑組成〕停影和停影液
定影和定影液(定影液一般包括:定影劑、保護(hù)劑、停顯劑和堅(jiān)膜劑)水洗和干燥
第九頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五Х光膠片顯影液配方水(50℃)(ml)800米圖爾(g)2.2無(wú)水亞硫酸鈉(g)72海得爾(g)8.8無(wú)水碳酸鈉(g)48溴化鉀(g)4加水至總量(ml)1000常用停影液配方是:28%醋酸48ml,加水至1000ml。
酸性堅(jiān)膜定影液的配方溶液一
①海波(硫代硫酸鈉)240g②蒸餾水(50℃)500ml
溶液二①蒸餾水(50℃)150ml②無(wú)水亞硫酸鈉15g③28%醋酸(冰醋酸3份,加水8份)48ml④鉀明礬15g
加水總量至:1000ml按上面試劑的順序分別配置溶液一、二,然后把溶液二加到溶液一中,并劇烈攪拌。
第十頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五自顯影的閱讀與相對(duì)定量
(1)光密度法(根據(jù)自顯影中影像的黑化程度來(lái)確定組織中放射性核素相對(duì)量的方法)同時(shí)制備一套已知放射性強(qiáng)度標(biāo)準(zhǔn)樣品和待測(cè)樣品在完全相同的情況下進(jìn)行放射自顯影。用光密度計(jì)測(cè)量出標(biāo)準(zhǔn)和待測(cè)樣品的黑化強(qiáng)度,再比較定出相對(duì)含量。(2)顆粒數(shù)量計(jì)算法(也稱:微尺目數(shù)法)它是利用目鏡微尺在顯微鏡視野下圈定一定范圍(如50平方微米),進(jìn)行射線顆粒數(shù)量計(jì)數(shù)。推算出單位面積或細(xì)胞、細(xì)胞核的相對(duì)標(biāo)記強(qiáng)度。(3)徑跡數(shù)量計(jì)算法這是計(jì)算由射線粒子在膠片上所形成的徑跡的數(shù)量來(lái)測(cè)定組織和細(xì)胞中放射性核素相對(duì)含量的方法。計(jì)數(shù)方法與上述的顆粒計(jì)數(shù)法相同。求出單位面積內(nèi)的徑跡數(shù)。
第十一頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五第二節(jié)放射免疫測(cè)定法
這是一種超微量分析技術(shù),具有靈敏度高和特異性強(qiáng)的突出優(yōu)點(diǎn)。這類方法名稱繁多,常見(jiàn)的名稱有:放射免疫測(cè)定法、免疫放射測(cè)定法、競(jìng)爭(zhēng)性蛋白質(zhì)結(jié)合測(cè)定法、放射受體測(cè)定法、放射酶測(cè)定法、體外放射分析法等。此方法的建立和發(fā)展,給醫(yī)學(xué)生物學(xué)的一個(gè)重要分支—內(nèi)分泌學(xué)帶來(lái)了革命。本方法的創(chuàng)始人榮獲了1977年諾貝爾生理學(xué)和醫(yī)學(xué)獎(jiǎng)。
第十二頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五基本原理
利用放射性標(biāo)記抗原(Ag*)、待測(cè)抗原(Ag)與特異性的抗體(Ab)競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合。
在一個(gè)放免實(shí)驗(yàn)里(Ag*)和(Ab)的量需保持恒定,Ag與Ag*之和大于Ab上有效結(jié)合位點(diǎn)數(shù)目。此時(shí),Ag與Ag*-Ag間存在著函數(shù)關(guān)系第十三頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五
抗原抗體BFB/FB/B+F
4/2=2
4/6=67%
оо
3/3=1
3/6=50%
оо
оо
оо
оооо
2/4=0.5
2/6=33%
оо
оо
оооооооооооооо
о
оооооооооооооо
1/5=0.2
1/6=17%
游離的Ag*結(jié)合的Ag*-Ag第十四頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五標(biāo)準(zhǔn)競(jìng)爭(zhēng)抑制曲線第十五頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五基本步驟:放射免疫分析目的:檢測(cè)待測(cè)樣品中抗原(Ag)的量。如上圖加樣。0-1是標(biāo)準(zhǔn)樣品;T管;NSB是非特異性管;待測(cè)管可是若干個(gè)待測(cè)樣品。室溫放置或保溫一定時(shí)間。加入二抗(T管不加〕,室溫放置或保溫,使二抗與抗原-抗體復(fù)合物充分結(jié)合成分子量很大的復(fù)合物;3500-5000轉(zhuǎn)/分離心(T管不離心),去上清(抗原抗體的復(fù)合物沉淀,);探測(cè)器測(cè)cpm值。利用公式計(jì)算B%:
標(biāo)準(zhǔn)管0123456Ag*1ul1ul1ul1ul1ul1ul1ulAg010204080160200Ab1111111待測(cè)管
1ul?血清
1TNSB1ul1ul04000×100%第十六頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五以已知的標(biāo)準(zhǔn)抗原含量(ng/ml)為橫坐標(biāo),B%為縱坐標(biāo)做標(biāo)準(zhǔn)曲線。標(biāo)準(zhǔn)競(jìng)爭(zhēng)抑制曲線待測(cè)樣品的測(cè)量,先與標(biāo)準(zhǔn)樣品一樣,計(jì)算出B%,再在標(biāo)準(zhǔn)曲線上查出待測(cè)樣品的抗原含量。
第十七頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五對(duì)于抗原、抗體的制備,劉兢老師的免疫學(xué)課中會(huì)做介紹。在這不作介紹了。第十八頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五第三節(jié)放射性示蹤技術(shù)
示蹤-即為在研究對(duì)象中引入一標(biāo)記物作為探針,通過(guò)觀察探針的去向,了解其分布、運(yùn)動(dòng)及轉(zhuǎn)化的情況。放射性示蹤的基本依據(jù)是:(1)可測(cè)性,因?yàn)榉派湫院怂乜偸亲园l(fā)發(fā)射各種射線。(2)放射性核素與其同種非放射性核素理化性質(zhì)基本相同,一般生物體不區(qū)別對(duì)待它們。
放射性示蹤的特點(diǎn):靈敏度高、操作簡(jiǎn)便、合乎生理?xiàng)l件、可解決其他方法不能解決的難題、準(zhǔn)確定位。標(biāo)記化合物來(lái)源少、技術(shù)操作要求高、輕元素的同位素效應(yīng)、放射效應(yīng)。第十九頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五例:檸檬酸HO—C—COOHH2C—C*OOHH2C—COOH
酶
2HC—C*OOHH—C—HH2C—COOHOα—酮戊二酸KMnO4C—OHH2C—COOHH—C—HO+C*O2+CO2+H2O琥珀酸檸檬酸脫羧機(jī)制的確定
第二十頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五示蹤實(shí)驗(yàn)的設(shè)計(jì)及步驟:
1、根據(jù)實(shí)驗(yàn)?zāi)康暮蛯?shí)驗(yàn)周期長(zhǎng)短,選擇合適的放射性核素及其標(biāo)記化合物。
(1)
合適放射性核素的選擇,(2)合適標(biāo)記化合物的選擇:2、示蹤劑的用量,根據(jù)實(shí)驗(yàn)周期長(zhǎng)短,示蹤劑的給予方式的不同(如:喂養(yǎng)、靜脈注射、呼吸等),被示蹤生物對(duì)示蹤劑的利用率和在體內(nèi)分布及排泄情況,確定。3、選擇合適的輻射防護(hù)條件和廢物處理方法,對(duì)于操作復(fù)雜的實(shí)驗(yàn),需先做空白實(shí)驗(yàn)。4、根據(jù)實(shí)驗(yàn)的要求及示蹤劑射線類型,選擇合適的樣品測(cè)量方法。(包括:定量測(cè)量、定位測(cè)量、定性測(cè)量〕5、對(duì)放射性測(cè)量結(jié)果進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,并根據(jù)實(shí)驗(yàn)要求計(jì)算、書寫出一定的數(shù)據(jù)形式。
第二十一頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五放射性核素稀釋分析法(放射性核素稀釋法又稱為載體法或俘獲技術(shù))。
此分析法的特點(diǎn):可以對(duì)含有多種性質(zhì)相近成分的混合物中某一化合物進(jìn)行定量分析。
正稀釋法:分析計(jì)算混合物中某一化合物的含量(WX)。具體方法如下:(1)在混合物中加入一定量(W0)的已知放射性比活度(S0)的與待測(cè)化合物相同的放射性核素或標(biāo)記化合物;(2)充分均勻混合;(3)分離純化待測(cè)化合物,直至恒定比活度(S);
根據(jù)放射性被加入混合物前后,雖比活度發(fā)生了變化,但放射性總強(qiáng)度沒(méi)變,可由下列方程式成立。反稀釋法:分析計(jì)算混合物中某一放射性標(biāo)記化合物的含量(WX)。具體方法如下:(1)取一定量的待測(cè)混合物進(jìn)行分離純化,直至恒定放射性比活度,探測(cè)器測(cè)得該活度為S0;(2)在混合物中加入大量的與待測(cè)標(biāo)記化合物相同的非標(biāo)記化合物,已知加入量為W0;(3)充分混合,并分離純化,直至恒定放射性比活度,探測(cè)器測(cè)得該活度為S;同理,有下列方程成立。第二十二頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五放射性探針的制備雙鏈探針的合成法:單鏈探針的合成法:切口平移法用隨機(jī)寡核苷酸引物合成均一標(biāo)記的DNA探針合成可與克隆于噬菌體或M13噬菌體載體上的序列互補(bǔ)的放射性標(biāo)記DNA。將克隆于特定載體上的靶序列轉(zhuǎn)錄成放射性的RNA,在此載體上帶有可被噬菌體依賴于DNA的RNA聚合酶識(shí)別的sp6啟動(dòng)子。第二十三頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五切口平移法混合下列成分:10×切口平移緩沖液2.5ul;DNA模板0.5ug;未標(biāo)記的三種20nmol/L的dNTP各1ul;一種α-32P-dNTP1ul;加水至終體積為21.5ul,使混合液驟冷至0C。加入2.5ul胰DNA酶Ⅰ(10mg/ml,用1×切口平移緩沖液配制〕,振蕩均勻。加入E.coilDNA聚合酶2.5單位16℃溫育60min加入25ul100mmol/LEDTA終止反應(yīng)。將反應(yīng)混合物上柱(SephadexG50),用TE緩沖液洗脫,分管收集,測(cè)cpm值,合并第一個(gè)cpm峰(探針〕,第二個(gè)cpm峰為α-32P-dNTP。標(biāo)記水平的計(jì)算:32P-dNTP利用率=*DNA(dpm/g)=DNA重量第一個(gè)峰總計(jì)數(shù)(cpm)-本底探測(cè)器的探測(cè)效率第一個(gè)峰總計(jì)數(shù)-本底(cpm)第一,第二峰總計(jì)數(shù)(cpm)×100%3,OH缺口(胰DNA酶I作用)
缺口向3,端移動(dòng)大腸桿菌DNA聚合酶I5,-3,聚合酶活性第二十四頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五用隨機(jī)寡核苷酸引物合成均一標(biāo)記的DNA探針首先需要純化所需制備探針的目的DNA(200ug)并與過(guò)量的隨機(jī)引物(75ug)混合將混合液沒(méi)入沸水中煮3min。
到時(shí)取出后,迅速?zèng)]入冰水中1min。
取出,并移入已配置好的(如下)混合液中。(20mmol/LDTT1ul;dGTP,dCTP,dTTP的混合液,濃度各5mmol/L1ul;10×RP緩沖液0.67ul;α-32P-dATP(比活度>3000Ci/mmol)3ul;H2O1ul)加5各單位(約1ul)的大腸桿菌聚合酶IKlenow片段,混合
室溫下溫育至少3小時(shí)。
在反應(yīng)液中加入10ulA緩沖液。
隨機(jī)引物可由以下三種途徑得到:1、用DNA酶I消化小牛胸腺DNA或鮭精DNA產(chǎn)生大量長(zhǎng)為6—12核苷酸的單鏈DNA。2、直接從一些廠家購(gòu)買用小牛胸腺DNA制備的隨機(jī)引物。3、在自動(dòng)DNA合成儀上合成,這種合成引物也可在公司買到。第二十五頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五單鏈探針的制備
由DNA模板體外制備單鏈探針有以下兩種方法:(1)合成可與克隆于噬菌體或M13噬菌體載體上的靶序列互補(bǔ)的放射性標(biāo)記DNA。(2)將克隆于特定載體上的靶序列轉(zhuǎn)錄成放射性的RNA,在此載體上帶有可被噬菌體依賴于DNA的RNA聚合酶識(shí)別的啟動(dòng)子。這兩種方法都可以產(chǎn)生比活度極高且長(zhǎng)度固定的探針。但第一種方法需用物理手段把新合成的放射性標(biāo)記DNA與互補(bǔ)的未標(biāo)記模板分開(kāi)(例如:根據(jù)片段大小選用變性聚丙烯酰胺凝膠或堿性瓊脂糖凝膠電泳、堿性柱層吸等)。而第二種方法中,DNA模板更容易用不含RNA酶的DNA酶I除去。也可以以RNA為模板制備單鏈探針。這時(shí)合成cDNA的引物可以用寡脫氧胸苷酸(oligo(dT))或隨機(jī)序列的寡核苷酸。cDNA探針合成的主要思路:1、選擇適當(dāng)?shù)囊铩?、選擇適當(dāng)?shù)腞NA模板。3、在有dNTP(其中一種是放射性dNTP*)存在下,利用依賴于RNA的DNA聚合酶(反轉(zhuǎn)錄酶)催化合成cDNA*放射性探針。第二十六頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五以寡核苷酸作為引物合成與單鏈RNA互補(bǔ)的總cDNA探針為例在1無(wú)菌的EP管中+3ul(無(wú)RNA酶)水+1ugRNA模板,混勻。
70℃加熱5分鐘,并馬上放在冰上驟冷。加入:胎盤RNA酶抑制物20單位;引物(2.5mg/ml)(隨機(jī)序列的八核苷酸)5ul。10×隨機(jī)引物緩沖液2.5ul;dGTP,dTTP,dATP各20mmol/L的混合液1ul;120umol/L.
120umol/L.dCTP-α-32P(比活度>3000Ci/mmol)10ul;Moloney鼠白血病病毒反轉(zhuǎn)錄酶(200000單位/毫升)0.5ul;加水至25ul,輕搖混勻。37℃溫育1小時(shí)。
加入0.5mol/LNaOH,68℃溫育30min,水解RNA。
待溶液溫度降到室溫后,加入10ul1mol/LTris.Cl(PH7.4),再加入3ul2mol/LHCl。
通過(guò)酚氯仿抽提純化cDNA*分離cDNA*
和dCTP*(可用SephadexG50,也可用乙醇選擇性沉淀)。cDNA*產(chǎn)率的測(cè)定:取三張Whatman圓濾紙,剪成能放進(jìn)液閃瓶大小。
CA、B用5%三氯醋酸,0.5%焦磷酸鈉抽洗兩次,再用95%乙醇10ml抽洗,涼干。(為了除去dCTP*)。將A、B、吹干,測(cè)計(jì)數(shù)。A、空白對(duì)照(本底)B、cDNA*計(jì)數(shù)(cpm/ul)C、cDNA*+dCTP*計(jì)數(shù)(cpm/ul)
AA在中心滴1ul反應(yīng)前溶液BB在中心滴1ul反應(yīng)后溶液C在中心滴1ul反應(yīng)后溶液cDNA*
合成量(ug)=(B-A)/C×dNTP(四種)質(zhì)量(ng)
第二十七頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五電泳—帶電物質(zhì)在電場(chǎng)中向其相反電極泳動(dòng)的現(xiàn)象稱為電泳。第二十八頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五DNA的泳動(dòng)率與MW的關(guān)系第二十九頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五第三十頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五第三十一頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五第三十二頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五第三十三頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五第三十四頁(yè),共三十七頁(yè),編輯于2023年,星期五
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