實(shí)驗(yàn)堿性磷酸酶米氏常數(shù)的測(cè)定課件_第1頁(yè)
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文檔簡(jiǎn)介

實(shí)驗(yàn)五堿性磷酸酶米氏常數(shù)的測(cè)定

一、目的要求1.學(xué)習(xí)分光光度法測(cè)定的原理和方法2.學(xué)習(xí)和掌握米氏常數(shù)(Km)及最大反應(yīng)速度(Vm)的測(cè)定原理和方法,測(cè)出堿性磷酸酶在以對(duì)硝基苯酚磷酸為底物時(shí)的Km和Vm值。二、原理一、分光光度法的基本原理及方法(一)利用吸收光譜對(duì)物質(zhì)進(jìn)行定性分析1.原理(3)比較吸光度的比值

純DNA(二)利用吸收光譜對(duì)物質(zhì)進(jìn)行定量分析 1.原理 Beer-Lambert(比爾)定律: T=I/I0A=lg1/T=lgI0/I

A=KCL其中:T為透光率;A為吸光率;I0為入射光強(qiáng)度;I為透射光強(qiáng)度;K為吸收系數(shù);C為溶液濃度;L為溶液光程的厚度2.常用方法 (1)標(biāo)準(zhǔn)曲線法

OD或A

濃度標(biāo)準(zhǔn)曲線與樣品的測(cè)定條件必須一致。(三)米氏常數(shù)的測(cè)定原理酶促反應(yīng)v-[S]曲線

v

[S]推導(dǎo)出米氏方程為:其中[S]為底物濃度;v為初速度;Vm為最大反應(yīng)速度;Km為米氏常數(shù)

米氏常數(shù)Km是酶的一個(gè)基本特征常數(shù),它包含著酶與底物結(jié)合和解離的性質(zhì)。特別是同一種酶能夠作用于幾種不同底物時(shí),米氏常數(shù)Km往往可以反映出酶與各種底物的親和力的強(qiáng)弱。

測(cè)定Km和Vm,可通過(guò)作圖法求得。最常用的Lineweaver-Burk雙倒數(shù)作圖法。這個(gè)方法是將米氏方程轉(zhuǎn)化為倒數(shù)形式,即:以1/v對(duì)1/[S]作圖,可得一條直線1/v1/Vm

-1/Km1/[S]本實(shí)驗(yàn)測(cè)定堿性磷酸酶催化對(duì)硝基苯磷酸鈉鹽(pNPP)水解的Km和Vm.反應(yīng)式:pNPP+H2OpNP+HPO42-

無(wú)色黃色

可通過(guò)分光光度法測(cè)定產(chǎn)物pNP的含量,求出反應(yīng)速度v。

四、分光光度計(jì)的使用

1.722型分光光度計(jì)的外形2.儀器操作鍵介紹“方式設(shè)定”鍵(MODE):用于設(shè)置測(cè)試方式“100%T/0ABS”鍵:用于自動(dòng)調(diào)整100.0%T(100.0透射比)或0ABS(零吸光度)“0%T”鍵:用于自動(dòng)調(diào)整零透射比“波長(zhǎng)設(shè)置”旋鈕:用于設(shè)置分析波長(zhǎng)返回返回返回(二)測(cè)定15支試管,1-5做兩組平行測(cè)定管,01-05作為空白對(duì)照。No.12345底物終濃度[S](mM)0.50.751.01.5

310mmol/LpNPP(mL)0.10.150.20.30.6蒸餾水(mL)0.50.450.40.30碳酸鹽緩沖液(mL)各加1.0mL20mmol/LMgCl2(mL)各加0.2mL預(yù)熱混勻,37℃,5分鐘酶液(mL)測(cè)定管各加0.2mL酶液反應(yīng)時(shí)間37℃,精確反應(yīng)10分鐘0.1mol/LNaOH(mL)各加2mL酶液(mL)空白管各補(bǔ)加0.2mL酶液OD405(三)數(shù)據(jù)處理各管在722分光光度計(jì)測(cè)定波長(zhǎng)405nm的OD值(OD405nm)。從對(duì)硝基苯酚標(biāo)準(zhǔn)曲線上查出OD405nm相當(dāng)于產(chǎn)物對(duì)硝基苯酚的含量(mol數(shù)),計(jì)算出各種底物濃度下的初速度vo(單位以molL-1min-1表示),取倒數(shù)1/v填入表內(nèi)。以1/v對(duì)1/[S]作圖,求出酶催化pNPP水解的米氏常數(shù)Km和最大反應(yīng)速度Vm。六、注意事項(xiàng)取液量一定要準(zhǔn)確。反應(yīng)時(shí)間一定要精確。加酶前后一定要將試劑混勻??瞻讓?duì)照一定要先加NaOH,后加酶。測(cè)定OD405時(shí)要以各自的空白調(diào)零點(diǎn)。移液管或取液器的使用比色杯的使用管號(hào)11'22'33'44'55'

加酶時(shí)間(min)0.511.522.533.544.55加NaOH時(shí)間10.51111.51212.51313.

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