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1、熒光定量PCR常見(jiàn)問(wèn)題及解答更新畤冏:2010-12-10 10:43:37一、無(wú)Ct值(信號(hào))出現(xiàn):反應(yīng)循環(huán)數(shù)不夠:一般都要在35個(gè)循環(huán)以上,可根據(jù)實(shí)驗(yàn)情況增加 循環(huán),但高于45個(gè)循環(huán)會(huì)增加過(guò)多的背景信號(hào);檢測(cè)熒光信號(hào)的步驟有誤:一般采用72C延伸時(shí)采集熒光,Taqman 方法則一般在退火結(jié)束或延伸結(jié)束采集信號(hào);引物或探針降解:可通過(guò)PAGE電泳檢測(cè)其完整性;探針設(shè)計(jì)不佳:設(shè)計(jì)探針溫度低于引物,造成探針未雜交上而產(chǎn)物已 延伸;模板量少:對(duì)未知濃度的樣品應(yīng)從系列稀釋樣品的最高濃度做起;模板降解:避免樣品制備中雜質(zhì)的引入以及模板反復(fù)凍融的情況發(fā)生。二、如何確認(rèn)模板中是否含有PCR反應(yīng)阻害物質(zhì):有
2、時(shí)RNA或cDNA模板中存在對(duì)反轉(zhuǎn)錄和熒光PCR反應(yīng)的阻害物質(zhì)。為 了確認(rèn)這樣的阻害物質(zhì)的有無(wú),我們可以使用高濃度的模板按3-4個(gè)梯度稀釋?zhuān)?并使用其進(jìn)行熒光定量PCR反應(yīng)。如果無(wú)阻害物質(zhì)存在,得到的Ct值就會(huì)依模板濃度的變化而變化;而如果模板中有阻害物質(zhì)的存在,實(shí)驗(yàn)過(guò)程中我們就會(huì) 發(fā)現(xiàn)高濃度的模板有反應(yīng)性能下降的現(xiàn)象。三、Ct值出現(xiàn)過(guò)晚:反應(yīng)條件不佳:未最佳反應(yīng)條件,可重新設(shè)計(jì)引物或探針,適當(dāng)降低退火溫度,增加鎂離子濃度等;PCR各種反應(yīng)成分的降解或加樣量不夠;擴(kuò)增產(chǎn)物片段過(guò)長(zhǎng):一般采用100 200bp的擴(kuò)增長(zhǎng)度。四、標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性關(guān)系不佳:加樣存在誤差,標(biāo)準(zhǔn)品稀釋不呈梯度;標(biāo)準(zhǔn)品降解:標(biāo)
3、準(zhǔn)品盡量避免反復(fù)凍融;引物或探針不佳:重新設(shè)計(jì);模板中存在抑制物,或模板濃度過(guò)高。五、陰性對(duì)照液出現(xiàn)明顯的擴(kuò)增:熒光PCR mix或水被污染;引物二聚體的出現(xiàn):在35循環(huán)后陰性對(duì)照出現(xiàn)擴(kuò)增屬正常情況,可 配合溶解曲線進(jìn)行分析;反應(yīng)過(guò)程中探針降解:用PAGE電泳對(duì)探針進(jìn)行檢測(cè)。六、溶解曲線不止一個(gè)主峰:引物設(shè)計(jì)不佳:避免二聚體和發(fā)夾結(jié)構(gòu)的出現(xiàn);引物濃度不佳:適當(dāng)調(diào)整引物濃度;退火溫度低:提高退火溫度;鎂離子濃度過(guò)高:適當(dāng)降低鎂離子濃度;模板中有基因組的污染:RNA提取過(guò)程中避免基因組DNA的污染,或 通過(guò)引物設(shè)計(jì)避免非特異擴(kuò)增。七、如何避免熒光定量PCR中基因組DNA擴(kuò)增:引物設(shè)計(jì)時(shí)避免基因組D
4、NA擴(kuò)增;在RNA提取過(guò)程中使用DNase I處理去除RNA中混有的基因組DNA。八、擴(kuò)增效率低:反應(yīng)試劑中部分成分特別是熒光染料降解;反應(yīng)條件不佳:適當(dāng)降低退火溫度或改為三步擴(kuò)增法;反應(yīng)體系中有抑制物:一般為模板中引入,應(yīng)先把模板適當(dāng)稀釋?zhuān)偌尤氲襟w系中,減少抑制物的影響。九、重復(fù)性不好:加樣不準(zhǔn)確;儀器在樣品上溫度條件有差異,溫度均一性不好;模板濃度低:樣品初始濃度越低,重復(fù)性越差,應(yīng)減少樣品的稀釋倍 數(shù)。十、擴(kuò)增曲線不正常,剛進(jìn)入指數(shù)期就很快進(jìn)入平臺(tái)期并向右下彎曲:基線等設(shè)置不當(dāng):按儀器說(shuō)明書(shū)重新操作;模板量過(guò)多:當(dāng)擴(kuò)增曲線在10個(gè)循環(huán)內(nèi)起峰時(shí),應(yīng)將模板稀釋100 一 1000倍后使用。十一、各孔間的熒光信號(hào)如何進(jìn)行校正:由于加樣操作的誤差、離心管透光性能的差異、熒光激發(fā)效率的差異等 偶然誤差不可避免,因此儀器收集到的原始信號(hào)必須進(jìn)行歸一化校正,以消除這 些因素對(duì)定量結(jié)果的影響。這種校正可以通過(guò)在反應(yīng)體系中添加額外的熒光染料來(lái)實(shí)現(xiàn),一般采用紅色ROX熒光,稱(chēng)為陽(yáng)性參比信號(hào)。ROX在反應(yīng)緩沖液中的濃 度是固定的,因此其信號(hào)的強(qiáng)度與反應(yīng)體系的總體積和總的熒光激發(fā)效率正相關(guān)。ROX校正可以提高定量數(shù)據(jù)的精度和重現(xiàn)性,減少孔間差異。十二、熒光定量PCRCT值一般在多少后認(rèn)為模板沒(méi)擴(kuò)增:當(dāng)進(jìn)入對(duì)數(shù)期的循環(huán)數(shù)大于3
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