生物發(fā)光共振能量轉移

1、BRET 生物發(fā)光共振能量轉移技術簡介：生物發(fā)光共振能量轉移（BRET）技術是近10年來出現(xiàn)的一種新的檢測蛋白質-蛋白質相互作用的技術.它的最大優(yōu)勢是能在活細胞中實時進行檢測，因此能夠進行相互作用動力學的研究。在應用這個系統(tǒng)研究感興趣的蛋白前，首先需要將Rluc或者EYFP 融合到每個蛋白或者他們的輔蛋白上。在細胞中，融合蛋白共表達，然后和熒光素酶和其底物腔腸素反應，當能量供體Rluc，能量受體EYFP 之間距離比較近的時候(10-100Å)，那么光將從Rluc(峰值480nm發(fā)射)傳遞到EYFP，形成它的激發(fā)，并且發(fā)射一個波長在530nm 的發(fā)射光，BRET 量化的程度以發(fā)射光53

2、0nm 和480nm 的比率表示。實驗流程1、用于BRET的表達質粒構建；2、融合蛋白表達檢測；3、BRET實驗；4、實驗結果分析及提交實驗報告客戶提供1、目的基因cDNA（也可由我公司提供基因克?。?、用于實驗細胞（如果我公司細胞庫有可不需提供）公司提供詳細實驗步驟、使用儀器、及結果分析等詳細實驗報告。服務周期和價格具體咨詢本公司熒光共振能量轉移（FRET）熒光共振能量轉移-FRET（Fluorescent Resonance Energy Transfer）指兩個熒光發(fā)色基團在足夠靠近時，當供體分子吸收一定頻率的光子后被激發(fā)到更高的電子能態(tài)，在該電子回到基態(tài)前，通過偶極子相互作用，實現(xiàn)了能

3、量向鄰近的受體分子轉移。 （1）FRET發(fā)生條件：    能量匹配：供體分子的發(fā)射光譜可以被受體分子吸收并產生熒光信號。供體分子的發(fā)射光譜應與受體分子的激發(fā)光譜必須有顯著重疊（>30%）；    作用距離：供體分子與受體分子的作用距離為1-10nm；    FRET效率公式：用于計算分子/基團間作用距離R     偶極-偶極作用：供體分子與受體分子作用時的向量必須滿足一定條件。（2）FRET的應用：通過FRET技術可以獲得有關兩個蛋白分子之間相互作用

4、的空間信息（作用距離、作用方向、能量傳遞效率）。常用于解決如下問題：蛋白分子的共定位；蛋白分子聚合體；轉錄機制；轉化途徑；分子運動；蛋白折疊等生物學問題。（3）FRET常見的供體-受體熒光分子對：熒光蛋白類：                                

5、0;                       染料類：FRET檢測HIV附屬蛋白與細胞膜CD分子相互作用摘自：A Flow Cytometry-Based FRET Assay to Identify and Analyse Protein-Protein Interactions in Living CellsCarina Banning, Jo¨ r

6、g Votteler, et al. 圖釋：流式細胞儀FACSAria檢測FRET信號。（a）活的293T細胞分別單獨轉入CFP、YFP、CFP/YFP 、CFP/YFP融合蛋白作為對照，確定最好的圈門方式為CFP/FRET。（b）293T細胞經過2%PFA處理后，YFP熒光強度出現(xiàn)明顯下降。篩選有相互作用的未知蛋白質的流程 圖釋：流式細胞儀FACSAria進行FACS-FRET高通量篩選感興趣蛋白相互作用的未知蛋白。（a）FACS-FRET篩選流程。（b）在活的293T細胞中轉入Vpu-YFP作為誘餌，與等量的CFP融合蛋白（蛋白的cDNA庫）相互作用36小時后，分選FE

7、RT+細胞。 FRET研究蛋白酶功能摘自：Detection of Infective Poliovirus by a Simple, Rapid, and Sensitive Flow Cytometry Method Based on Fluorescence Resonance Energy Transfer TechnologyJason L. Cantera  et al. Applied and environmental  microbiology, Jan. 2010, p. 584-588 圖釋：流式細胞儀 FACSAria檢測脊髓灰質

8、炎病毒（PV1）10倍感染BGM-PV細胞，8小時后上機檢測。AC病毒濃度分別為0.40.004，D為陰性對照。雙分子熒光互補技術BiFC（Bimolecular Fluorescence Complementation）是將熒光報告蛋白按照規(guī)則分成沒有熒光的兩段，分別與誘餌蛋白和捕獲蛋白融合，只有在誘餌蛋白和捕獲蛋白發(fā)生相互作用的情況下，兩段不完整的熒光報告蛋白才會形成完整的報告蛋白，發(fā)出熒光?；罴毎占?，在流式細胞儀中的檢測是實時進行的，只要細胞中有熒光產生就會被捕捉到信號，因此，不論是親和力較弱的結合還是暫時性的結合都不會被遺漏。 雙分子熒光互補技術原理示意圖(a) 誘餌和捕

9、獲蛋白分別攜帶CYFP和NYFP兩段YFP熒光蛋白片段(b) 誘餌和捕獲蛋白結合同時CYFP與NYFP形成YFP (c) 形成的YFP發(fā)出熒光（1）BiFC檢測的特點：    活細胞分析；    可以用于研究2種或2種以上的啟動子調控之下的蛋白質相互作用；    具有很高的信噪比，弱蛋白相互作用也可以檢測到（>7nm）。（2）可用于BiFC的熒光蛋白：    GFP、BFP、CFP、YFP，生理條件可用的黃色的Venus和citrine，青色的cerulean；

10、0;   紅色系統(tǒng)：mRFP2Q66T、mCherry；Venus（EYFP的變體）是目前用于 BiFC分析最多的熒光蛋白，因為其熒光強且背景敏感度降低，是BiFC分析理想的熒光蛋白。 常見的用于雙分子熒光互補技術的熒光蛋白BiFC研究復合體中亞基間的相互作用摘自：Detection and Characterization of Influenza A Virus PA-PB2 Interaction through a Bimolecular Fluorescence Complementation AssayJoseph N. Hemerka, Dan Wa

11、ng,et al. JOURNAL OF VIROLOGY, Apr. 2009, p. 3944-3955圖釋：流式細胞儀 FACSCalibur檢測流感病毒復合體中亞基PA-PB2間的相互作用。（B）流式檢測同時轉入PA/PB2的COS-1細胞及單轉入PA-VC的細胞的Venus熒光信號，顯示轉入24小時后的熒光強度。（C）螢火蟲熒光蛋白酶顯示，轉入單或雙質粒的細胞，螢火蟲熒光蛋白酶活性一致。BiFC研究信號傳導通路中蛋白質間的相互作用摘自：Characterization of the latent membrane protein 1 signaling complex of Epst

12、ein-Barr virus in the membrane of mammalian cells with bimolecular fluorescence complementationPooja Talaty, Amanda Emery, et al. Virology Journal 2011, 8:414 圖釋：流式細胞儀FACSLSRII檢測BiFC信號。LMP1-NYFP和LMP1-NYFP突變體分別與CYFP-TRAF2、CYFP-TRAF3轉入細胞內，檢測其相互作用。曲線藍色部分為出現(xiàn)YFP的熒光陽性表達，表明LMP1與CYFP、CYFP均存在相互作用?？破找幌耂C

13、I科學引文索引（Science Citation Index, 簡稱 SCI ）于1957 年由美國科學信息研究所（Institute for Scientific Information, 簡稱 ISI）在美國費城創(chuàng)辦，是由美國科學信息研究所(ISI)1961年創(chuàng)辦出版的引文數(shù)據(jù)庫。SCI(科學引文索引 )、EI(工程索引 )、ISTP(科技會議錄索引 ) 是世界著名的三大科技文獻檢索系統(tǒng)，是國際公認的進行科學統(tǒng)計與科學評價的主要檢索工具。1976 年，ISI 在 SCI 基礎上引出期刊引用報告（journal citation report,JCR），提供了一套統(tǒng)計數(shù)據(jù)，展示科學期刊被引用

14、情況、發(fā)表論文數(shù)量以及論文的平均被引用情況。在 JCR 中可以計算出每種期刊的影響因子（Impact Factor,IF）。影響因子的高低，在一定程度上可以反應一個期刊的影響力。（百度百科）期刊的影響因子(Impact factor；IF)計算方式：IF 2014 = (該雜志2012-2013年發(fā)表文章在2014年被引用的次數(shù) /  (該雜志2012-2013年發(fā)表文章的總數(shù))附件是最近兩年的SCI期刊列表，2014年植物學類我紅色標注了部分，不過期刊名都是縮寫， 2013年的是全稱期刊名。影響因子從高到低排列，大體代表了期刊的水平檔次。三大國際頂尖期刊CNS， 指CELL， NATURE， SCIENCE。國際植物學專業(yè)期刊中，最好的研究論文期刊是Plant Cell （ IF2004=9.338），當然今年新創(chuàng)刊的NATUR