
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1、轉(zhuǎn)膜(Trarsmembra n)i 轉(zhuǎn)膜的定義將電泳后分離的蛋白質(zhì)從凝膠中轉(zhuǎn)移到固相載體(例如 NC 膜)上,通常有兩種 方法:毛細(xì)管印跡法和 電泳印跡法。常用的電泳轉(zhuǎn)移方法有 濕轉(zhuǎn)和半干轉(zhuǎn)。兩者 的原理完全相同,只是用于固定膠/膜疊層和施加電場(chǎng)的機(jī)械裝置不同。前者操 作容易,轉(zhuǎn)移效率高;而后者適用于大膠的蛋白轉(zhuǎn)移,所用緩沖液少。2 轉(zhuǎn)移膜的選擇雜交膜的選擇是決定 Westernblot 成敗的重要環(huán)節(jié)。應(yīng)根據(jù)雜交方案、被轉(zhuǎn)移蛋 白的特性以及分子大小等因素,選擇合適材質(zhì)、孔徑和規(guī)格的雜交膜。用于 Westernblot的膜主要有兩種:硝酸纖維素膜(NC)和 PVDF 膜。NC 膜是蛋白 印跡
2、實(shí)驗(yàn)的標(biāo)準(zhǔn)固相支持物,在低離子轉(zhuǎn)移緩沖液的環(huán)境下,大多數(shù)帶負(fù)電荷的 蛋白質(zhì)會(huì)與膜發(fā)生疏水作用而高親和力的結(jié)合在一起,但在非離子型的去污劑作用下,結(jié)合的蛋白還可以被洗脫下來(lái)。 根據(jù)被轉(zhuǎn)移的蛋白分子量大小,選擇不同 孔徑的 NC 膜。因?yàn)殡S著膜孔徑的不斷減小,膜對(duì)低分子量蛋白的結(jié)合就越牢固。 通常用 0.45m和 0.2 pm 兩種規(guī)格的 NC 膜。大于 20kD 的蛋白可用 0.45 pm 的膜, 小于20kD 的蛋白就要用 0.2pm 的膜了,如用 0.45pm 的膜就會(huì)發(fā)生Blowthrough ”的現(xiàn)象。PVDF 膜靈敏度、分辨率和蛋白親和力比常規(guī)的膜要高,非常適合于低分子量蛋白的檢測(cè)。但
3、 PVDF 膜在使用之前必需用純甲醇浸泡飽和 1-5 秒鐘。最常用于 WesternBlot 的轉(zhuǎn)移膜主要是硝酸纖維素(Nitrocellulose,NC )膜和聚 偏二氟乙烯(PolyvinylideneFluoride,PVDF )膜,此外也有用尼龍膜、DEAE 纖維 素膜做蛋白印跡。尼龍膜和 NC 膜的特點(diǎn)相似,主要用于核酸雜交。硝酸纖維素(nitrocellulose,NC )膜:NC 與蛋白質(zhì)靠疏水作用結(jié)合,無(wú)需預(yù)先活 化,對(duì)蛋白質(zhì)的活性影響??;非特異性本底顯色淺;價(jià)格低廉,使用方便。但結(jié) 合在 NC上的小分子蛋白質(zhì)在洗滌時(shí)易丟失;NC 韌性較差,易損壞。聚偏二氟乙烯(Polyvin
4、ylidenefluoride,PVDF)膜:與蛋白質(zhì)親和力高,用前需在甲 醇中浸泡,以活化膜上的正電基團(tuán),使其更容易與帶負(fù)電荷蛋白結(jié)合。膜的選擇主要根據(jù):p 膜與目的蛋白分子的結(jié)合能力(也就是單位面積的膜能結(jié)合蛋白的載量),以 及膜的孔徑(也就是攔截蛋白的大小);p 不影響后續(xù)的顯色檢測(cè)(也就是適和用于所選的顯色方法,信噪比好);p 如果后繼實(shí)驗(yàn)有其他要求,比如要做蛋白測(cè)序或者質(zhì)譜分析,還要根據(jù)不同目 的來(lái)挑選不同的轉(zhuǎn)移膜。幾種膜的性質(zhì)對(duì)比PVDF 膜NC 膜尼龍膜背景低低較高蛋白結(jié)合能力100-200pg/cm280-100pg/cm2400ug/cm2機(jī)械強(qiáng)度強(qiáng)干的膜很脆軟而結(jié)實(shí)溶劑抗性
5、強(qiáng)差差使用前處理甲醛潤(rùn)濕緩沖液潤(rùn)濕緩沖液潤(rùn)濕價(jià)格高較低低3 轉(zhuǎn)膜步驟(以槽式濕轉(zhuǎn)為例)1. 將膠浸于轉(zhuǎn)移緩沖液中平衡 10min。注意:如檢測(cè)小分子蛋白,可省略此步,因小分子蛋白容易擴(kuò)散出膠。2. 依據(jù)膠的大小剪取膜和濾紙 6 片,放入轉(zhuǎn)移緩沖液中平衡 10min。如用 PVDF 膜 需用純甲醇浸泡飽和 3-5 秒鐘。(先把 PVDF 膜在甲醇中浸泡約 15s,小于 1min, 然后把膜放在 1X 轉(zhuǎn)膜緩沖液中浸泡,然后上面鋪 2 層濾紙浸泡)3. 裝配轉(zhuǎn)移三明治:海綿/3 層濾紙/膠/膜/3 層濾紙/海綿,每層放好后,用試管趕 去氣泡。切記:膠放于負(fù)極面(黑色面)。4. 將轉(zhuǎn)移槽置于冰浴中,
6、放入三明治(夾的黑面對(duì)槽的黑面,夾的白面對(duì)槽的紅 面),(因?yàn)殡娹D(zhuǎn)移時(shí)會(huì)產(chǎn)熱,在槽的一邊 放一塊冰來(lái)降溫),加轉(zhuǎn)移緩沖液, 插上電極,100V,1h (電流 350mA,1h30min )。注意:應(yīng)再次檢查三明治和電極是否裝配正確,電源是否接通。5. 轉(zhuǎn)膜結(jié)束后,切斷電源,取出雜交膜。4 轉(zhuǎn)膜注意事項(xiàng)1. 泡膜:轉(zhuǎn)膜之前將海綿、膠、膜都用預(yù)冷的轉(zhuǎn)移buffer 浸泡 20min ;a. 凝膠若是沒(méi)在預(yù)冷的轉(zhuǎn)膜 buffer 中浸泡,就會(huì)在轉(zhuǎn)膜過(guò)程中出現(xiàn)凝膠皺縮,導(dǎo) 致出現(xiàn)轉(zhuǎn)移條帶變形。b. PVDF 膜具有疏水性,需用甲醇浸泡。2. 轉(zhuǎn)膜順序:陰極碳板+海綿+三濾+膠+膜+三濾+海綿+陽(yáng)極碳板
7、;3. 轉(zhuǎn)膜條件:0.35A/250V/1h/40min/冰浴中進(jìn)行轉(zhuǎn)膜(轉(zhuǎn)膜過(guò)程產(chǎn)生大量的熱, 注意冷卻);(具體轉(zhuǎn)膜時(shí)間要根據(jù)目的蛋白的大小而定; 目的蛋白的分子量越大,需要的轉(zhuǎn)膜時(shí)間越長(zhǎng),反之則短。)4. 其它注意事項(xiàng):a. 避免直接用手碰雜交膜,使用鑷子。因?yàn)槭稚系牡鞍缀陀椭瑫?huì)影響轉(zhuǎn)膜效率并 會(huì)使膜臟掉。b. 夾好膜和凝膠后,確定在凝膠/膜和濾紙之間沒(méi)有氣泡存在,否則會(huì)導(dǎo)致轉(zhuǎn)膜 不完全。c. 保證膜和濾紙的大小和凝膠完全一樣,過(guò)大和過(guò)小都會(huì)影響轉(zhuǎn)膜效率。d. 雞來(lái)源的抗體與 PVDF 和尼龍膜有較強(qiáng)的結(jié)合能力,從而產(chǎn)生較高的背景,故 如果選擇雞來(lái)源的抗體最好使用硝酸纖維素膜(NC 膜)。5 轉(zhuǎn)膜后檢測(cè)(此步可以省略)轉(zhuǎn)膜完畢后,立即把蛋白膜放置到預(yù)先準(zhǔn)備好的TBST (或 PBST)中漂洗 1-2 分鐘,以洗去膜上的轉(zhuǎn)膜液。轉(zhuǎn)膜的效果可以觀察所使用的預(yù)染蛋白質(zhì)分子量標(biāo)準(zhǔn), 通常分子量最大的 1-2 條帶較難全部轉(zhuǎn)到膜上。轉(zhuǎn)膜的效果也可以用麗春紅染色 液或硬度墨汁染色液對(duì)膜進(jìn)行染色, 以觀察實(shí)際的轉(zhuǎn)膜效果。也可以用考馬斯亮 藍(lán)快速染色液對(duì)完成轉(zhuǎn)膜的 SDS-PAGE 膠進(jìn)行染色,以觀察蛋白的殘留情況。 a.麗春紅染色:蛋白帶出現(xiàn)后,于室溫用去離子水漂洗硝酸纖維素濾膜,換水幾 次。b.印度墨汁染色:只用于放射性標(biāo)記抗體或放射性標(biāo)記A 蛋白探針的
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