TUNEL法檢測細(xì)胞凋亡實(shí)驗(yàn)原理和方法_第1頁
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文檔簡介

1、tunel法檢測細(xì)胞凋亡實(shí)驗(yàn)原理和方法細(xì)胞凋亡中染色體dna的斷裂是個(gè)漸進(jìn)的分階段的過程,染色體dna首先在內(nèi)源性的核酸水解酶的作用下降解為50-300kb的大片段。然后大約30 的染色體dna在ca 和mg 依賴的核酸內(nèi)切酶作用下,在核小體單位之間被隨機(jī)切斷,形成180200bp核小體dna多聚體。 dna雙鏈斷裂或只要一條鏈上出現(xiàn)缺口而產(chǎn)生的一系列dna的3-oh末端可在脫氧核糖核苷酸末端轉(zhuǎn)移酶(tdt)的作用下,將脫氧核糖核苷酸和熒光素、過氧化物酶、堿性磷酸化酶或生物素形成的衍生物標(biāo)記到dna的3-末端,從而可進(jìn)行凋亡細(xì)胞的檢測,這類方法一般稱為脫氧核糖核苷酸末端轉(zhuǎn)移酶介導(dǎo)的缺口末端標(biāo)記

2、法(tunel)。 由于正常的或正在增殖的細(xì)胞幾乎沒有dna的斷裂,因而沒有3-oh形成,很少能夠被染色。低分子量的dna分離后,也可使用dna聚合酶進(jìn)行缺口翻譯(nick translation),使低分子量的dna標(biāo)記或染色,然后分析凋亡細(xì)胞。 tunel或缺口翻譯法實(shí)際上是分子生物學(xué)與形態(tài)學(xué)相結(jié)合的研究方法,對完整的單個(gè)凋亡細(xì)胞核或凋亡小體進(jìn)行原位染色,能準(zhǔn)確的反應(yīng)細(xì)胞凋亡最典型的生物化學(xué)和形態(tài)特征,可用于石蠟包埋組織切片、冰凍組織切片、培養(yǎng)的細(xì)胞和從組織中分離的細(xì)胞的細(xì)胞凋亡測定,并可檢測出極少量的凋亡細(xì)胞,靈敏度遠(yuǎn)比一般的組織化學(xué)和生物化學(xué)測定法要高,因而在細(xì)胞凋亡的研究中已被廣泛采

3、用。 一、過氧化物酶標(biāo)記測定法 原理:脫氧核糖核苷酸衍生物地高辛(digoxigenin)-11-dutp在tdt酶的作用下,可以摻入到凋亡細(xì)胞雙鏈或單鏈dna的3-oh末端,與datp形成異多聚體,并可與連接了報(bào)告酶(過氧化物酶或堿性磷酸酶)的抗地高辛抗體結(jié)合。在適合底物存在下,過氧化物酶可產(chǎn)生很強(qiáng)的顏色反應(yīng),特異準(zhǔn)確的定位出正在凋亡的細(xì)胞,因而可在普通光學(xué)顯微鏡下進(jìn)行觀察。 毛地黃植物是地高辛的唯一來源。在所有動物組織中幾乎不存在能與抗地高辛杭體結(jié)合的配體,因而非特異性反應(yīng)很低??沟馗咝恋奶禺愋钥贵w與脊椎動物甾體激素的交叉反應(yīng)不到1,若此抗體的fc部分通過蛋白酶水解的方法除去后,則可完全排

4、除細(xì)胞fc受體非特異性的吸附作用。 本方法可以用于福爾馬林固定的石蠟包埋的組織切片、冰凍切片和培養(yǎng)的或從組織中分離的細(xì)胞凋亡測定。 (一)試劑配制 1、磷酸緩沖液pbs(ph7.4):磷酸鈉鹽 50mm,nacl 200mm。 2、蛋白酶k(200g/ml,ph7.4):蛋白酶k 0.02g;pbs 100ml。 3、含2%h2o2的pbs緩沖液(ph7.4):h2o2 2.0ml;pbs緩沖液 98.0ml。 4、tdt酶緩沖液(新鮮配):trlzma堿 3.63g用 0.1n hcl調(diào)節(jié)ph至 7.2,加ddh2o定容到1000ml;再加入二甲砷酸鈉 2996g和氯化鈷0.238g。 5、

5、tdt酶反應(yīng)液:tdt酶32l;tdt酶緩沖液 76l,混勻,置于冰上備用。 6、洗滌與終止反應(yīng)緩沖液:氯化鈉 17. 4g;檸檬酸鈉 8.82g;ddh2o 1000ml 7、0.05二氨基聯(lián)苯(dab)溶液:dab 5mg;pbs 10ml,ph7.4, 臨用前過濾后,加過氧化氫至0.02%。 8、0.5甲基綠(ph4.0):甲基綠0.5g;0.1m乙酸鈉100ml。 9、100丁醇,100、95、90、80和70乙醇,二甲苯,10中性甲醛溶液,乙酸,松香水等。 10、過氧化物酶標(biāo)記的抗地高辛抗體(oncor) (二)實(shí)驗(yàn)步驟 1、標(biāo)本預(yù)處理: (1)石蠟包埋的組織切片預(yù)處理:將組織切片置

6、于染色缸中,用二甲苯洗兩次,每次5min。用無水乙醇洗兩次,每次3min。用95和75乙醇各洗一次,每次3min。用pbs洗5min 加入蛋白酶k溶液(20ugml),于室溫水解15min,去除組織蛋白。用蒸餾水洗4次,每次2min,然后按下述步驟2進(jìn)行操作。 (2)冰凍組織切片預(yù)處理:將冰凍組織切片置10中性甲醛中,于室溫固定10min后,去除多余液體。用pbs洗兩次,每次5min。置乙醇:乙酸(2:1)的溶液中,于-20處理5min,去除多余液體。用pbs洗兩次,每次5min,然后按下述步驟2進(jìn)行操作。 (3)培養(yǎng)的或從組織分離的細(xì)胞的預(yù)處理:將約 5 107個(gè)/ml細(xì)胞于 4中性甲醛室溫

7、中固定 10min。在載玻片上滴加 50100l細(xì)胞懸液并使之干燥。用pbs洗兩次,每次5min,然后按下述步驟2進(jìn)行操作。 2、色缸中加入含2過氧化氫的pbs,于室溫反應(yīng)5min。用pbs洗兩次,每次5min。 3、用濾紙小心吸去載玻片上組織周圍的多余液體,立即在切片上加2滴 tdt酶緩沖液,置室溫15min。 4、 用濾紙小心吸去切片周圍的多余液體,立即在切片上滴加 54l tdt酶反應(yīng)液,置濕盒中于37c反應(yīng) 1hr(注意:陰性染色對照,加不含tdt酶的反應(yīng)液)。 5、將切片置于染色缸中,加入已預(yù)熱到37的洗滌與終止反應(yīng)緩沖液,于37保溫30min,每10min將載玻片輕輕提起和放下一次,使液體輕微攪動。 6、 組織切片用pbs洗 3次,每次 5min后,直接在切片上滴加兩滴過氧化物酶標(biāo)記的抗地高辛抗體,于濕盒中室溫反應(yīng)30min。 7、用pbs洗4次,每次5min。 8、在組織切片上直接滴加新鮮配制的0.05dab溶液,室溫顯色36min。 9、用蒸餾水洗4次,前3次每次1min,最后1次5min。 10、 于室溫用甲基綠進(jìn)行復(fù)染10min。用蒸餾水洗3次,前兩次將載玻片提起放下10次,最后1次靜置30s。依同樣方法再用100正丁醇洗三次。 11、 用二甲苯脫水3次,每次2min,封片、干燥后,在光學(xué)顯微鏡

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