蛋白質(zhì)的提取與分離純化-生化實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)講解課件_第1頁(yè)
蛋白質(zhì)的提取與分離純化-生化實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)講解課件_第2頁(yè)
蛋白質(zhì)的提取與分離純化-生化實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)講解課件_第3頁(yè)
蛋白質(zhì)的提取與分離純化-生化實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)講解課件_第4頁(yè)
蛋白質(zhì)的提取與分離純化-生化實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)講解課件_第5頁(yè)
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1、 生化實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì) 蛋白質(zhì)的提取與分離純化主講人:第三組組員:華中師范大學(xué)化學(xué)學(xué)院 已知某蛋白的分子量約為17 kDa,等電點(diǎn)3.94.1,它能耐一定的高溫,在90 C加熱34 min后仍然能夠保持80%的活性。該蛋白含有較多的疏水性殘基,與Ca2+結(jié)合后可以暴露它的疏水基團(tuán)。該蛋白的作用是作為生物體內(nèi)酶的激活劑。請(qǐng)?jiān)O(shè)計(jì)一個(gè)從腦組織中提取和分離純化該蛋白的實(shí)驗(yàn)方案,要求寫(xiě)出具體的步驟和理由,以及檢測(cè)方法。文獻(xiàn)查得: 鈣調(diào)蛋白(CaM)是由148個(gè)氨基酸組成的單鏈分子,其pI值在3.9-4.1之間,分子量約為17KDa.該蛋白能夠耐一定的高溫,在90oC加熱3-4min后仍然能夠保持80%的活性。該

2、蛋白分子中含有較多的疏水性殘基,與Ca2+結(jié)合后可以暴露出它的疏水基團(tuán)。整個(gè)實(shí)驗(yàn)過(guò)程一般可分為 5 個(gè)階段: 材料的選擇和預(yù)處理 細(xì)胞的破碎(有時(shí)需進(jìn)行細(xì)胞器的分離)提取 純化(包括等電點(diǎn)沉降法,鹽析,有機(jī)溶劑沉淀,吸附、層析、等)分析鑒定。一、材料的選定:大鼠腦組織 預(yù)處理: 將切取的組織用4預(yù) 冷的0.01mol/l的PBS漂洗去血漬,再用濾紙吸干殘留的PBS(磷酸鹽緩沖液 ) 。實(shí)驗(yàn)步驟:玻璃勻漿機(jī)b、細(xì)胞器的分離 細(xì)胞器的分離一般采用差速離心法。細(xì)胞經(jīng)過(guò)破碎后,在適當(dāng)介質(zhì)中進(jìn)行差速離心。三、蛋白質(zhì)粗提取原理:利用蛋白質(zhì)在PH等電點(diǎn)時(shí)的溶解度最小,因而會(huì)以沉淀的方式析出。試劑:檸檬酸、磷

3、酸氫二鈉步驟:1向試管中加入磷酸氫二鈉和檸檬酸,使其PH=4。2將提取的溶液加入到第1步驟所配的緩沖液中。3靜置一段時(shí)間,待沉淀完全。4過(guò)濾或離心出粗產(chǎn)品。注意事項(xiàng):防止局部過(guò)酸或過(guò)堿造成蛋白質(zhì)變性。金屬螯合親和層析 固定化金屬螯合親和層析是建立在蛋白質(zhì)表面的氨基酸與固定化金屬離子的親和力的不同來(lái)進(jìn)行蛋白質(zhì)分離的一項(xiàng)技術(shù)。過(guò)渡態(tài)金屬離子能夠與電子供體,如氮、硫、氧等原子以配位鍵結(jié)合,金屬離子上剩余的空軌道是電子供體的配位點(diǎn),當(dāng)它在溶液中會(huì)被水分子或陰離子占據(jù)。 鈣調(diào)蛋白的外形似啞鈴,有兩個(gè)球形的末端,中間被一個(gè)長(zhǎng)而富有彈性的螺旋結(jié)構(gòu)相連,每個(gè)末端有兩個(gè)Ca2+ 結(jié)構(gòu)域,每個(gè)結(jié)構(gòu)域可以結(jié)合一個(gè)C

4、a2+ , 這樣,一個(gè)鈣調(diào)蛋白可以結(jié)合4個(gè)Ca2+ ,鈣調(diào)蛋白與Ca2+ 結(jié)合后的構(gòu)型相當(dāng)穩(wěn)定 。四、精細(xì)純化值得注意的是,在洗脫時(shí),會(huì)有少許配基與蛋白質(zhì)一同被洗脫下來(lái),因此常在其后加一凝膠層析以除去小分子的配基。 凝膠層析法屬最常用的蛋白質(zhì)分離方法。系混合物隨流動(dòng)相流經(jīng)裝有凝膠作為固定相的層析柱時(shí),混合物中各物質(zhì)因分子大小不同而被分離的技術(shù)。在洗柱過(guò)程中,分子量最大的物質(zhì)不能進(jìn)入凝膠網(wǎng)孔而沿凝膠顆粒間的空隙最先流出柱外。分子量最小的物質(zhì)因能進(jìn)入凝膠網(wǎng)孔而受阻滯,流速緩慢,致使最后流出柱外。 當(dāng)分子量在15KD到200KD之間時(shí),蛋白質(zhì)的遷移率和分子量的對(duì)數(shù)呈線性關(guān)系,符合下式: logMW=K-bX, 式中:MW為分子量,X為遷移率,k、b均為常數(shù)若將已知分子量的標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)的遷移率對(duì)分子量對(duì)數(shù)作圖,可獲得一條標(biāo)準(zhǔn)曲線,未知蛋白質(zhì)在相同條件下進(jìn)行電泳,根據(jù)它的電泳遷移率即可在標(biāo)準(zhǔn)曲線上求得分子量。B、定量分析紫外檢測(cè)法、考馬斯亮藍(lán)法、Folin-酚試劑法(最常用方法)Folin-酚試劑法包括兩步反應(yīng):第一步是在堿性條件下,蛋白質(zhì)與銅作用生成蛋白質(zhì)-銅絡(luò)合物;第二步是此絡(luò)合物將磷鉬酸-磷鎢酸試劑(Folin 試劑)還原,產(chǎn)生深藍(lán)色(磷鉬藍(lán)和磷鎢藍(lán)混合物),顏色深淺與蛋白質(zhì)含量成正比。此法操作簡(jiǎn)便,靈敏度比雙縮脲法高100 倍,定量范圍為5100g 蛋白質(zhì)。Folin 試劑

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