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文檔簡介
1、一個新的具有特殊結構和潛在趨化活性的人細胞因子趨化素樣因子1的克隆和特性研究韓文玲 婁雅欣 唐軍民 張穎妹 陳英玉 馬大龍 等細胞因子是在免疫和炎癥反應中起重要作用的小分子蛋白質(zhì)。近年來,越來越多的細胞因子得以發(fā)現(xiàn)。本文介紹一種新的細胞因子趨化素樣因子1(CKLF1)的發(fā)現(xiàn)和特性研究。CKLF1全長cDNA序列包括530個堿基,有一個編碼99個氨基酸的完整開放讀碼框架。CKLF1與已發(fā)現(xiàn)的其它細胞因子沒有明顯的序列同源性。CKLF1在PHA刺激的U937細胞中的表達可被IL-10所部分抑制。重組的CKLF1能夠明顯趨化嗜中性細胞、單核細胞和淋巴細胞,同時,它能夠刺激小鼠骨骼肌細胞的增殖。以上結
2、果表明CKLF1可能在炎癥和骨骼肌再生過程中發(fā)揮重要作用。關鍵詞:白細胞介素10;骨骼肌細胞;剪切;抑制性減數(shù)雜交前 言細胞因子是一群在免疫和炎癥反應中起重要作用的小分子蛋白質(zhì)??偟膩碚f,細胞因子在細胞被活化后呈一過性誘導表達,其表達受多種因素調(diào)控。細胞因子包括白細胞介素、腫瘤壞死因子、生長因子和趨化因子等(1)。其中,趨化因子是結構相似的小分子蛋白質(zhì),在吸引和活化白細胞過程中起重要作用。趨化因子在蛋白質(zhì)水平上含有4個保守的半胱氨酸,根據(jù)前兩個半胱氨酸的相對位置不同,趨化因子可分為CXC()、CC()、C()和CX3C()4個亞家族,C代表半胱氨酸,X代表任一氨基酸(2)。以前的研究表明:人前
3、單核細胞系U937細胞在PHA刺激下,能夠產(chǎn)生多種細胞因子;而白細胞介素10能抑制多種細胞因子的產(chǎn)生(3)(4)?;谝陨涎芯拷Y果,我們設計了一條新的技術路線來發(fā)現(xiàn)新的細胞因子。利用抑制性減數(shù)雜交技術,從PHA刺激的U937細胞中克隆到能被IL-10所抑制的cDNA序列,其中一個序列編碼一個新的分泌性細胞因子,含有CC家族趨化因子所具有的特征性結構即兩個連續(xù)的半胱氨酸,并對多種白細胞具有趨化作用,該因子被命名為趨化素樣因子1(CKLF1)。但是,該因子與其它CC家族趨化因子有如下區(qū)別:(1)CKLF1成熟蛋白質(zhì)只有一個連續(xù)的CC結構,其羧基端沒有其它的半胱氨酸;(2)CKLF1與已發(fā)現(xiàn)的其它C
4、C家族趨化因子沒有明顯序列上的同源性; (3)CKLF1至少存在其它三種不同的RNA剪切形式;(4)它對骨骼肌細胞有刺激作用。CKLF1可能代表一個新的家族的趨化因子。因此,我們將其命名為趨化素樣因子1,其相應的變異體命名為CKLF2,CKLF3和CKLF4。材 料 和 方 法抑制性減數(shù)雜交(SSH)SSH的操作方法按Diatchenko報道的進行操作(5), 用CLONTECH公司的 PCR-Select TM cDNA Subtraction Kit。SSH技術把抑制性PCR(Suppression PCR)和傳統(tǒng)的減數(shù)雜交方法相結合(16),可用于比較兩個群體的mRNA,得到在一組mRN
5、A中表達,而在另一組mRNA中低表達或不表達的基因。先將mRNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA,其中含有特異表達基因的樣本為tester,另一組為driver,tester和driver cDNA雜交,去除雜交體cDNA,沒有形成雜交體的cDNA即是在tester中特異表達或高表達的基因,而在driver中不表達或低表達的基因。抑制性PCR在選擇性擴增特異基因的同時,抑制自身的擴增,使雜交陽性率更高。在SSH操作過程中,人前單核細胞系U937細胞由本室長期傳代培養(yǎng)。細胞培養(yǎng)在含10%胎牛血清 ,100U/ml青鏈霉素的RPMI1640培養(yǎng)基中。用于SSH操作的U937細胞批量培養(yǎng)至2107細胞,離心收集細胞
6、, 用Hanks液洗三遍后懸于含10ng/mlPHA的10% FCS RPMI1640中, 其中一半即1107細胞作為tester, 另一半細胞中加入終濃度為100ng/ml的IL-10作為driver。繼續(xù)培養(yǎng)8小時后收集細胞, 提取mRNA,取2mgmRNA合成雙鏈cDNA,用RsaI切后,將tester分為兩組,在T4 DNA連接酶作用下,分別連上Adapter1和Adapter2,進行兩輪雜交,雜交產(chǎn)物用作PCR擴增的模板。將雜交產(chǎn)物稀釋1000倍,利用試劑盒提供的PCR引物,進行第一輪PCR,擴增27輪,然后將第一輪PCR產(chǎn)物稀釋10倍,分別以NESTED PCR引物1和 NESTE
7、D PCR引物2R進行第二輪PCR,擴增15輪,得到的擴增產(chǎn)物即為差異基因片段,Glassmilk回收2001600bp的片段,克隆到pGEM-T easy中,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化XL-Blue菌,選白色克隆。得到約100個克隆,隨機篩選15個變大明顯的克隆,純化質(zhì)粒DNA,用ALF快速測序儀進行序列分析,并在NCBI中進行序列同源性比較。生物信息學將來自PHA刺激的U937細胞文庫的EST片段與GenBank TBLASTN 的EST數(shù)據(jù)庫進行比較。將與CKLF1片段有高度同源性的序列(50個以上堿基,95%以上同源性),通過 EST Assembly Machine (http:/www.tige
8、m.it). 進行EST拼接(6)。用于CKLF1拼接的EST片段的登記號為 W38899, N95062, AA429945, AA987264, AA927461, W19056, N89912, AA516431, AA479657, AA455042, AA989129, AF151058,NM-016951,W52820。在PHA刺激的U937細胞中得到CKLF1的全長序列,測序證明EST拼接正確。CKLF1可能的信號肽切割位點分析用PcGene、Prosite軟件和 Signal P server (http:/www.cbs.dtu.dk/services/SignalP)進行分
9、析。CKLF1的染色體定位用HTGS數(shù)據(jù)庫分析()。包含CKLF1基因的兩個染色體片段的登錄號為AC010542和AC018557。Northern Blot分析我們對目的基因的表達情況進行了Northern Blot分析,細胞總RNA的提取用生命公司的TRIZ0LTM試劑提取。分別取20 mg tester或driver RNA,在1.5%的甲醛變性膠中電泳,通過毛細管吸引法將RNA轉(zhuǎn)到尼龍膜上。探針的標記和雜交操作參照DUPONT公司Random Primer Fluorescein Labeling kit with Antifluor
10、escein-HRP (DuPont NEN NELMGC-803)試劑盒說明書。標記探針的核苷酸均為來源于SSH雜交得到的全長EST片段(CKLF1全長cDNA片段中的53-530位堿基)。寡核苷酸用于擴增CKLF1及其變異體的全長cDNA片段的引物為: P1 5 GCA, AGA, AGC,GGG, AAG, CCG, A 3和P2 5 GGA, AGA, ATA, CAG, AAA, TAT, GTT, TAA, TAC 3; 用于擴增CKLF1及其變異體的編碼區(qū)cDNA片段以構建pCDI-CKLF1的引物為: P3 5 ATG, GAT, AAC, GTG, CAG, CCG, AAA
11、, AT 3和P4 5 TTA, CAA, AAC, TTC, TTT, TTT, TTC, ATG, C 3; 用于擴增不含終止密碼的CKLF1及其變異體的cDNA片段,以構建pEGFP-N1-CKLF1, pEGFP-N1-CKLF2 和 pEGFP-N1-CKLF4的下游引物為: P5 5 CGG GAT CCA AAA CTT CTT TTT TTT CAT GC 3CKLF1表達譜分析用巢式PCR的方法對CKLF1及其變異體在各種不同組織中的表達水平進行分析,用Clontech公司Multiple Tissue cDNA Panels試劑盒提供的單鏈cDNA文庫作模板,利用P1,P2
12、和P3,P4引物,進行PCR擴增。在第一輪PCR反應中,取1lcDNA文庫作模板,反應體系為25l,進行25個循環(huán);在第二輪PCR反應中,取1l第一輪PCR產(chǎn)物作模板,反應體系為25l,進行20個循環(huán)。取10l第二輪PCR產(chǎn)物,在5%SDS-PAGE膠中電泳。質(zhì)粒構建為了對CKLF1, CKLF2和CKLF4的亞細胞定位進行研究,將去終止碼的相應序列克隆到表達載體pEGFP-N1中。用P3和P5引物,從PHA刺激的U937細胞cDNA文庫中,擴增CKLF1,CKLF2和CKLF4的cDNA序列,在P5引物中,終止碼被去除,并引入BamH1酶切位點。PCR產(chǎn)物用Klenow酶處理為平端,然后用B
13、amH1酶切。pEGFP-N1載體先用EcoRI酶切,再用Klenow酶處理為平端,然后用BamH1酶切。酶切處理后的載體片段和目的基因片段回收后,連接得到重組質(zhì)粒pEGFP-N1-CKLF1,pEGFP-N1-CKLF2和pEGFP-N1-CKLF4。用P3和P4引物從PHA刺激的U937細胞cDNA文庫中,擴增CKLF1的 ORF片段,克隆入pGEM-T載體中,測序。用EcoRI將插入片段釋放出來,連接至經(jīng)EcoRI切后,并用CIP處理后的pcDI載體中,經(jīng)酶切鑒定可得到CKLF-1的正義表達載體pcDI-CKLF1。pcDI是將pcDNA3的BglI-kpnI片段與pCI的BglI-Kp
14、nI片段置換后得到的一個真核表達載體(7)。轉(zhuǎn)染和轉(zhuǎn)染試劑在瞬時轉(zhuǎn)染中, COS-7細胞在10%胎牛血清的DMEM中培養(yǎng)。用SuperFect轉(zhuǎn)染試劑,根據(jù)說明轉(zhuǎn)染COS-7細胞。48小時后,收集轉(zhuǎn)染上清,用于活性分析和Western blot分析。細胞用PBS洗,甲醛固定30分鐘,再用PBS洗,熒光顯微鏡觀察。CKLF1-EGFP,CKLF2-EGFP,CKLF3-EGFP在COS-7細胞上清中的Western blot分析將pEGFP-N1,pEGFP-N1-CKLF1, pEG FP-N1-CKLF2 和 pEGFP-N1-CKLF4四種質(zhì)粒分別轉(zhuǎn)染COS-7細胞,48小時后,各取70l
15、細胞上清,進行SDS-PAGE電泳,電轉(zhuǎn)至尼龍膜上,與抗EGFP多克隆抗體反應,再與HRP標記的二抗反應,用化學發(fā)光的方法進行檢測。趨化實驗按照以前報道的方法(8),從健康成年志愿者外周血中分離嗜中性粒細胞、淋巴細胞和單核細胞。純化的嗜中性粒細胞重懸于HBSS緩沖液中,細胞密度為1X106/ml;淋巴細胞和單核細胞重懸于含0.5%低內(nèi)毒素BSA和20mM Hepes的1640培養(yǎng)液中,細胞密度分別為5X106/ml和2X106/ml。細胞趨化實驗用48孔趨化小室,按照文獻報道的進行(9)。小孔的下面裝滿COS-7細胞的轉(zhuǎn)染上清,上面是各種不同類型的細胞。用于嗜中性細胞的聚炭膜孔徑為3m,趨化時
16、間為30分鐘;用于單核細胞和淋巴細胞的聚炭膜孔徑為5m,趨化時間為90分鐘。DNA注射和肌肉切片分析所有的實驗動物均購自北京大學醫(yī)學部實驗動物部。將100gpcDI-CKLF1或pcDI分別溶于100l生理鹽水中,取6-8周齡BALB/c小鼠,分別注射pcDI-CKLF1或pcDI于骨胳肌中,同時用40ms,80V電刺激,以提高質(zhì)粒的攝取量(10)。10天后,處死小鼠,將注射質(zhì)粒部位的肌肉取出。標本分為兩部分,一部分用于常規(guī)組織學處理,分別進行Feulgen,ANAE,POX和HE染色。另外一部分用于提取RNA,進行RT-PCR分析。 結 果差異顯示cDNA片段的獲得利用SSH技術,我們從PH
17、A刺激的U937細胞中得到了能被IL-10所抑制表達的cDNA序列。篩選了15個插入序列大于200個堿基的克隆,測序,并在Genbank公共數(shù)據(jù)庫中檢索,發(fā)現(xiàn)其中6個克隆包括CKLF1為新基因。Northern blot分析再次證明白細胞介素10能夠抑制CKLF1的表達,CKLF1約為600個堿基(見圖1)。 圖1. CKLF表達的Northern blot分析第2和第4泳道的RNA來自PHA刺激的U937細胞;第1和第3泳道的RNA來自PHA刺激同時IL-10抑制的U937細胞。CKLF1在PHA刺激的U937細胞中的表達可被IL-10部分抑制(第1和第2泳道)。CKLF1全長DNA序列克隆
18、及其編碼蛋白質(zhì)的特征通過SSH技術從PHA刺激的U937細胞中獲得的CKLF1片段含有多聚腺苷酸尾巴和相對少見的加尾信號ATTAAA,人趨化因子Eotaxin和TARC的加尾信號也是ATTAAA(11,12)。這表明該片段包含完整的3非翻譯區(qū)(13,14)。該片段有一個編碼99個氨基酸的完整開放讀碼框架,96-98位為翻譯起始密碼ATG,其周邊序列為GCGATGG,符合Kozak規(guī)律(15)。在Genbank數(shù)據(jù)庫中檢索發(fā)現(xiàn),CKLF1為一個新基因;但是EST數(shù)據(jù)庫檢索發(fā)現(xiàn),來自不同cDNA文庫的多條EST序列與我們得到的序列部分相同或高度同源。通過EST延伸技術,在CKLF1原有cDNA序列
19、基礎上,向5非翻譯區(qū)延長了52個堿基。Northern blot顯示CKLF1與預期的大小基本相符。為證明EST拼接是否正確,我們設計了引物P1和P2,從PHA刺激的U937細胞中成功得到CKLF1的全長cDNA序列,DNA序列分析表明我們的EST拼接是正確的。CKLF1的全長cDNA序列及其編碼的蛋白質(zhì)序列如圖2A所示(CKLF1在GenBank中的登錄號為AF096895)。 圖2. CKLF1的核酸和相應的蛋白質(zhì)序列及其與TARC和STCP-1的序列比較(A)CKLF1的核酸和蛋白質(zhì)序列。核酸序列為正義鏈,從5到3方向。核酸序列下為相應的蛋白質(zhì)序列,終止碼用星號表示。(B)CKLF1的蛋
20、白質(zhì)序列與CC家族趨化因子TARC和STCP-1的比較。加深的為保守的氨基酸。CKLF1編碼的蛋白質(zhì)含有99個氨基酸,分子量為10.9KDa,為高度堿性的疏水性蛋白質(zhì)。CKLF1蛋白沒有N糖基化位點,SignalP分析發(fā)現(xiàn)沒有典型的信號肽切割位點(16,17),轉(zhuǎn)基因分析和Western blot分析發(fā)現(xiàn),CKLF1可被分泌到細胞上清中。其他實驗室的研究發(fā)現(xiàn),一些沒有前導序列的蛋白質(zhì)能被分泌出來,如乳腺來源的生長抑制因子,白細胞介素1和巨噬細胞移動抑制因子2等(18)。因此,CKLF1可能利用另外一種分泌機制。CKLF1在蛋白質(zhì)水平上僅與線蟲的amino acid permease蛋白有低水平
21、的同源性,與其它蛋白質(zhì)沒有明顯的同源性。CKLF1蛋白具有兩個結構特性:(1)CKLF1僅有三個半胱氨酸,最后兩個連續(xù)排列,具有CC家族趨化因子的結構特征;(2)BLAST檢索發(fā)現(xiàn),CKLF1與其它CC家族趨化因子之間沒有明顯同源性。但是,手工排列發(fā)現(xiàn),CKLF1與兩個位于16號染色體上CC家族趨化因子TARC和STCP-1在CC附近有數(shù)個關鍵的氨基酸相同(圖2B所示)。CKLF1三個變異體的克隆化通過RT-PCR技術,我們從PHA刺激的U937細胞中得到CKLF1的全長cDNA序列,同時,得到了其它三條片段,經(jīng)克隆化和序列分析后,發(fā)現(xiàn)它們?yōu)镃KLF1的三種變異體,分別命名為CKLF2(AF1
22、35380),CKLF3(AF135381)和CKLF4(AF145216)。在PHA刺激的U937細胞中,CKLF1比CKLF2,CKLF3和CKLF4的表達水平高,且該基因的表達可被IL-10所抑制,因此Northern Blot檢測時只看到一條帶,可能因為其它變異體豐度較低,Northern Blot敏感度不夠而未能檢測到。讀碼框架分析表明:CKLF-2 、CKLF-3和CKLF-4分別編碼152個氨基酸, 67個氨基酸和120個氨基酸,它們與CKLF1有相同的氨基端和羧基端, 中間27-112為氨基酸不同, 但都有CC結構。用編碼最多氨基酸的CKLF2作參照, CKLF1,CKLF3和
23、CKLF4分別缺失27-79,27-111,80-111位氨基酸(圖3所示)。 圖3. CKLF1、CKLF2、CKLF3和CKLF4的蛋白質(zhì)序列圖4.人CKLF基因內(nèi)含子和外顯子交界處序列及CKLF1,2,3,4結構示意圖(A)人CKLF基因內(nèi)含子和外顯子交界處序列。外顯子序列用大寫字母表示;內(nèi)含子序列用小寫字母表示。(B)CKLF對外顯子的選擇性應用及CKLF1,2,3,4的結構示意圖。CKLF1與其變異體有相同的氨基端和羧基端。在CKLF2蛋白質(zhì)的基礎上,CKLF1,CKLF3和CKLF4選擇性用27-79,27-111和80-111位氨基酸。下劃線序列指CKLF2和CKLF4可能的穿膜
24、區(qū)序列CKLF基因定位和結構通過檢索HTGS數(shù)據(jù)庫,將CKLF2全長cDNA序列與人類基因組工作草圖相比較,我們發(fā)現(xiàn)兩個位于16號染色體上的片段與其有高度同源性。CKLF基因包括4個外顯子和3個內(nèi)含子。內(nèi)含子和外顯子交界處的序列符合真核細胞剪接規(guī)律(圖4A)(19)。CKLF基因與cDNA序列比較發(fā)現(xiàn),外顯子1,2,3,4分別編碼1-26,27-79,80-111,112-152位氨基酸(圖4B)。CKLF1,2,3,4有共同的外顯子1和4,選擇性擁有外顯子2和3。因此,它們?yōu)橥换虻牟煌艚有问健KLF1 mRNA在不同組織中的表達CKLF1 mRNA在PHA刺激的U937細胞中存在不同
25、的變異體形式。我們用RT-PCR技術分析了CKLF1及其變異體在成年及胚胎組織中的表達情況,結果發(fā)現(xiàn):CKLF1及其變異體在脾臟、肺、睪丸、卵巢、外周血白細胞、胎盤、胰腺、胎腦、胎兒骨胳肌和心臟中高表達;成年人骨胳肌、肝臟、胸腺、結腸、前列腺、胎脾和胎肝中表達水平較低;而在成年人腦組織、腎臟、心臟、小腸、胎肺和胎腎中的表達幾乎檢測不到。在絕大多數(shù)組織中,CKLF1和CKLF2的表達水平相類似,均比CKLF4的表達水平高,而CKLF3的表達水平最低(圖5所示)。 圖5.人CKLF1及其變異體在各種組織中的分布(A)CKLF及其變異體在胚胎組織中的表達。(B)CKLF及其變異體在成年組織中的表達。
26、左邊顯示的分子量標準。CKLF1,CKLF2和CKLF4的亞細胞定位為了研究CKLF1,2,4的細胞定位,我們構建了CKLF-EGFP融合表達載體,EGFP在CKLFcDNA序列的下游,二者位于同一讀碼框架。將融合表達載體和空載體對照分別轉(zhuǎn)染COS-7細胞。熒光顯微鏡下觀察熒光的分布。表達對照EGFP的細胞有分布均勻的亮綠色熒光,在細胞內(nèi)沒有特異性亞細胞定位(圖6A);而轉(zhuǎn)染CKLF1-EGFP的細胞,細胞內(nèi)熒光很弱(圖6B)?;贑KLF1的結構特征,可以推測大部分CKLF1-EGFP蛋白可能被分泌到細胞培養(yǎng)上清中。相反,CKLF2-EGFP和CKLF4-EGFP主要位于細胞邊緣,在細胞的其
27、它位置,僅有很少的熒光分布(圖6C和6D)。轉(zhuǎn)染HEK-293細胞,也得到相似的結果,這表明CKLF1,CKLF2和CKLF4的亞細胞定位不僅局限于COS-7細胞。圖6.EGFP、CKLF1-EGFP、CKLF2-EGFP和CKLF4-EGFP融合蛋白的亞細胞定位EGFP位于CKLF1,CKLF2和CKLF4的羧基端,它們在同一讀碼框架上,瞬時轉(zhuǎn)染COS-7細胞,熒光顯微鏡觀察。(A)轉(zhuǎn)染EGFP對照。(B)轉(zhuǎn)染CKLF1-EGFP。(C)轉(zhuǎn)染CKLF2-EGFP。(D)轉(zhuǎn)染CKLF4-EGFP。放大倍數(shù)為400倍。CKLF1為分泌性表達從CKLF1的亞細胞定位結果來看,我們推測CKLF1可能
28、為分泌性表達。為證明這一點,收集COS-7細胞轉(zhuǎn)染上清,進行SDS-PAGE電泳和Western blot分析。Western blot表明在pcDI-CKLF1-EGFP轉(zhuǎn)染細胞中,有一條約38KD的特異表達帶,分子量與CKLF1-EGFP融合蛋白相吻合(圖7)。而在其它三組轉(zhuǎn)染上清中,沒有檢測到特異的表達帶。因此,我們可以得出以下結論:雖然CKLF1的信號肽尚有待確定,但CKLF1為分泌性蛋白,在細胞上清中檢測不到CKLF2-EGFP和CKLF4-EGFP的存在。而且,計算機分析發(fā)現(xiàn),CKLF2和CKLF4的27-79位氨基酸為高度疏水性氨基酸,可能是穿膜蛋白。將CKLF2序列遞交到Gen
29、Bank后,發(fā)現(xiàn)了其他兩個實驗室克隆的序列,與CKLF2有相同的讀碼框架,其中一個的登錄號為AF057306,被認為是穿膜蛋白脂,這提示CKLF2可能是穿膜蛋白。圖7.應用抗EGFP多克隆抗體,在COS-7細胞上清中檢測CKLFs/EGFP。第一泳道:高分子量蛋白質(zhì)標準;第二泳道:EGFP;第三泳道:CKLF1/EGFP;第四泳道:CKLF2/EGFP;第五泳道:CKLF4/EGFP重組CKLF1在體外的趨化活性為了研究CKLF1的生物學活性,我們構建了CKLF1真核表達質(zhì)粒pcDI-CKLF1,該質(zhì)粒包括CKLF1的完整讀碼框架。我們將pcDI-CKLF1和空載體pcDI分別轉(zhuǎn)染COS-7細
30、胞,收集細胞上清,進行趨化活性分析。重組CKLF1的趨化活性分析用穿孔移動分析法,趨化活性用趨化指數(shù)表示(趨化指數(shù)是指pcDI-CKLF1轉(zhuǎn)染細胞上清組的細胞數(shù)與空載體pcDI轉(zhuǎn)染細胞上清組的細胞數(shù)的比值)(20)。與pcDI轉(zhuǎn)染細胞上清相比較,pcDI-CKLF1轉(zhuǎn)染細胞上清對人中性粒細胞、淋巴細胞和單核細胞有明顯的趨化活性(圖8所示)。我們在果蠅S2細胞系統(tǒng)中得到相似的實驗結果,這說明CKLF1的趨化活性不僅局限于COS-7細胞系統(tǒng)。CKLF1體內(nèi)趨化活性我們將pcDI-CKLF1裸質(zhì)粒注射到BALB/c小鼠肌肉中,10天后,取注射部位肌肉組織,RT-PCR分析發(fā)現(xiàn)CKLF1的表達水平較高
31、;同時,肌肉縱切,F(xiàn)eulgen染色,發(fā)現(xiàn)與空載體對照組相比,注射pcDI-CKLF1裸質(zhì)粒的小鼠肌肉切片中有更多的細胞浸潤。這表明CKLF1能引起白細胞的聚集或能刺激干細胞的增殖或二者兼而有之。為進一步驗證CKLF1的體內(nèi)趨化活性,我們又對部分肌肉切片進行POX或ANAE染色,然后用HE復染(21)。如圖9D和圖9F所示,許多細胞呈POX或ANAE強陽性,而在圖9C和圖9E中,沒有發(fā)現(xiàn)相應的陽性細胞。眾所周知,POX陽性細胞主要是嗜中性粒細胞,而ANAE陽性細胞主要為單核細胞和T淋巴細胞(22)。在細胞染色的基礎上,結合形態(tài)學觀察,CKLF1在體內(nèi)能夠趨化嗜中性粒細胞、單核細胞和淋巴細胞,這
32、與CKLF1的體外趨化活性一致。圖8.CKLF1對白細胞的趨化作用將人外周血淋巴細胞、單核細胞和嗜中性粒細胞置于趨化小室中,下面孔中加入不同稀釋度的COS-7細胞轉(zhuǎn)染上清。在高倍鏡下,隨機選5個視野,計數(shù)穿膜細胞的數(shù)量。CI:趨化指數(shù)。 圖9.小鼠肌肉內(nèi)注射pcDI-CKLF1引起的白細胞浸潤A、C、E為注射pcDI組小鼠;B、D、F為注射pcDI-CKLF1組小鼠。注射質(zhì)粒10天后,取肌肉組織,作組織切片。D和F中可見白細胞浸潤。CKLF1在體內(nèi)引起骨胳肌的形態(tài)學改變將肌肉組織固定后,分別作縱切片和橫切片,HE染色。在表達CKLF1的肌肉組織中,除了觀察到多細胞浸潤現(xiàn)象外,還發(fā)現(xiàn)了肌肉組織的
33、形態(tài)學改變,如圖10所示。在橫切面中,CKLF1組有細胞核居中現(xiàn)象(圖10B),而對照組沒有這種現(xiàn)象(圖10A);在縱切面中,CKLF1組細胞核成串珠狀排列(圖10D)。這種現(xiàn)象說明肌衛(wèi)星細胞被活化,肌肉處于再生狀態(tài)(23)。目前,尚需進一步的實驗來證明這是CKLF1的直接作用還是由被趨化細胞產(chǎn)生的細胞因子導致的結果。圖10.CKLF1對BALB/c小鼠骨胳肌的作用裸質(zhì)粒注射后10天,取肌肉組織,作縱切片和橫切片,HE染色,200倍放大后鏡檢。表達CKLF1的肌組織切片中(B,D),可明顯觀察到肌纖維再生,即核居中現(xiàn)象。而在對照組肌肉切片中,無細胞核居中現(xiàn)象。討 論我們通過一種新的技術路線,成
34、功地克隆了新細胞因子CKLF1及其三種變異體。應用這條技術路線,把其它的細胞因子產(chǎn)生細胞和細胞因子合成抑制抑制因子結合起來,可發(fā)現(xiàn)更多新的細胞因子。CKLF1-EGFP、CKLF2-EGFP和CKLF3-EGFP轉(zhuǎn)染COS-7細胞和HEK-293細胞的結果表明,CKLF1是分泌性蛋白質(zhì),而CKLF2和CKLF4為穿膜蛋白。根據(jù)計算機分析結果,我們推測CKLF1的另外一個變異體CKLF3可能與CKLF1相同,為分泌性表達,目前這部分工作正在研究之中。令人感興趣的是,CKLF1的不同變異體可為分泌性表達,也可為跨膜蛋白。有人報道,新的CC家族趨化因子Eskine,由于選擇性應用5外顯子,而造成兩種
35、不同的變異體,其中之一為分泌性表達,另一種定位于細胞核(24)。對CKLF1的不同變異體而言,不同的表達形式可能是由于對27-79這段高疏水性氨基酸的選擇性應用有關。從CKLF1的結構上來看,CKLF1有三個半胱氨酸,最后兩個連續(xù)排列,呈CC家族趨化因子的特征性結構,第一個半胱氨酸可能位于信號肽內(nèi)。CKLF1與其它趨化因子的不同之處在于它的羧基端沒有其它的半胱氨酸。CKLF1基因定位于16號染色體,與CC家族趨化因子TARC和STCP-1有低水平的同源性(25)。在目前發(fā)現(xiàn)的所有CC家族趨化因子中,只有TARC和STCP-1定位于16號染色體上,其它絕大多數(shù)CC家族趨化因子位于17染色體上。F
36、RN是目前發(fā)現(xiàn)的唯一一種CX3C趨化因子,也是唯一一種膜結合型趨化因子,同樣定位與16號染色體(25)。重組的CKLF1在體內(nèi)外均具有廣譜的趨化活性, 我們認為CKLF1可能代表一個新的家族的趨化因子,它與TARC、STCP-1和FRN在進化上可能有一定的保守性。在小鼠肌肉中表達重組的CKLF1,可刺激肌肉細胞的增殖和分化,這與IGF-1對成年小鼠趾長伸肌的作用一致(27)。我們推測CKLF1可能通過以下幾種機制來調(diào)控骨胳肌細胞的再生:第一,與IGF-1相同,CKLF1本身能夠調(diào)控肌衛(wèi)星細胞的增殖和分裂;第二,CKLF1趨化的白細胞能夠產(chǎn)生多種細胞因子,這些細胞因子能夠影響肌細胞的生長;第三,
37、CKLF1與其它細胞因子具有協(xié)同作用,刺激肌細胞的再生和肌管的形成。目前,尚需進一步的實驗來證明我們的推測??傊覀兂晒Φ乜寺×艘粋€新的細胞因子及其三種變異體。CKLF1的表達水平可被IL-10所部分抑制。功能實驗證明,CKLF1具有廣譜的趨化活性,并能刺激骨胳肌細胞的增殖和分化。致謝:感謝懷特博士對CKLF1命名所提的建議;感謝李凌松博士協(xié)助論文修改;感謝黃大無和鐘英誠在照片處理過程中所提供的幫助;感謝范中玉對論文的輸入所做的工作。這項研究工作是由國家863和973基金支持。參 考 文 獻1. Nicola, N. A., Walter and Hall, E. (1994) Guideb
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