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1、精選優(yōu)質(zhì)文檔-傾情為你奉上克隆形成實驗細(xì)胞生長狀況有關(guān)指標(biāo)的檢測方法一、細(xì)胞計數(shù)這是細(xì)胞培養(yǎng)中常用的基本技術(shù)之一。所用材料為血球計數(shù)板,巴氏吸管和顯微鏡。細(xì)胞計數(shù)的基本步驟:(1)取清潔計數(shù)板和專用蓋玻片,用絲綢布輕輕拭干.(2)取細(xì)胞懸液0.3mL,加入0.9mL結(jié)晶紫(或臺盼至)染液,混勻后滴半滴于血球計數(shù)板內(nèi),以充滿不外溢為宜。也可直接將細(xì)胞懸液在一側(cè)滴加到蓋玻片中,不要溢出,也不要過少或出現(xiàn)氣泡.(3)在顯微鏡下用10×物鏡觀察計數(shù)四角大分格中的細(xì)胞數(shù)。代入下式得出細(xì)胞密度。 細(xì)胞數(shù)/ml=(4大格細(xì)胞數(shù)之和/4)×104×稀釋倍數(shù)
2、臺盼藍(lán)染色法可計算出活細(xì)胞數(shù)和死細(xì)胞數(shù)以測定細(xì)胞存活百分率。一般0.5%1%的臺盼藍(lán)染液可使死細(xì)胞染成藍(lán)色,活細(xì)胞不著色。此外還可用0.02%的藻紅B染液將死細(xì)胞或受損細(xì)胞染成紅色,或用0.05%的苯胺黑染液將死細(xì)胞染成黑色。細(xì)胞存活百分率=(4大格活細(xì)胞數(shù)/4大格活細(xì)胞+死細(xì)胞數(shù))×100%細(xì)胞計數(shù)除用上述方法外,目前還有新型的自動計數(shù)儀,可供大規(guī)模細(xì)胞計數(shù)工作使用。各種型號的計數(shù)操作不盡相同,可根據(jù)使用說明進(jìn)行操作。在進(jìn)行細(xì)胞計數(shù)操作時,必須把細(xì)胞懸液準(zhǔn)備好,細(xì)胞應(yīng)分散良好,并充分混勻,若出現(xiàn)較多細(xì)胞團(tuán)或細(xì)胞數(shù)少于200個/10mm2或多于500個/10mm2時,需重制細(xì)胞懸液,
3、重新計數(shù)。二、細(xì)胞生長曲線和生長倍數(shù)細(xì)胞生長曲線是細(xì)胞培養(yǎng)實驗中最基本的指標(biāo),是測定細(xì)胞絕對增長數(shù)值和生長繁殖基本規(guī)律常用的簡便方法。常用的方法為:在同一規(guī)格的培養(yǎng)瓶中,接種同等量的同一代細(xì)胞,經(jīng)培養(yǎng)后每隔24小時取出幾瓶細(xì)胞進(jìn)行計數(shù),以培養(yǎng)時間為橫座標(biāo),不同時刻的細(xì)胞數(shù)的對數(shù)為底座標(biāo),標(biāo)出各點并連成線,即為該細(xì)胞的生長曲線,可反應(yīng)出細(xì)胞生長的動態(tài)。測定生長曲線的另一種方法是用96孔/24孔細(xì)胞培養(yǎng)板,分7組,每組3孔,培養(yǎng)一周(7天),期間逐日檢測一組,計數(shù),最后把7天中的細(xì)胞數(shù)值繪成圖,即為細(xì)胞生長曲線。也可采用MTT法來進(jìn)行生長曲線測定,較上述方法簡便。標(biāo)準(zhǔn)的細(xì)胞生長曲線近似“S”形,一
4、般在傳代后第一天細(xì)胞數(shù)有所減少,經(jīng)過一段時間的潛伏期,再進(jìn)入對數(shù)生長期,達(dá)到平臺期和生長穩(wěn)定,最后衰老。細(xì)胞生長倍數(shù)是指測定接種時活細(xì)胞的濃度,經(jīng)一個生長周期達(dá)到最大活細(xì)胞濃度的比率。 生長倍數(shù)=培養(yǎng)后最大活細(xì)胞濃度/接種時的活細(xì)胞濃度三、細(xì)胞分裂指數(shù)細(xì)胞分裂指數(shù)是表示細(xì)胞增殖旺盛程度的指標(biāo)。它以被測1000個細(xì)胞中的分裂細(xì)胞數(shù)來計算。其方法為:用秋水仙素將細(xì)胞處理12小時后,按染色體制片法制片并染色,計算1000個細(xì)胞中分裂相的數(shù)目,重復(fù)4次取平均值,用百分比表示?;静襟E:(1)細(xì)胞準(zhǔn)備 用蓋片(支持物)培養(yǎng)法。(2)每24小時取
5、出一個小玻片,按常規(guī)方法進(jìn)行固定,吉姆薩或HE染色,封片,制成永久標(biāo)本。(3)顯微鏡下選擇細(xì)胞密度適中的區(qū)域觀察分裂細(xì)胞并計數(shù)。逐個視野進(jìn)行,對每一時間組的玻片各取細(xì)胞多、中、少3個區(qū)域各一區(qū),共數(shù)1000個細(xì)胞,計算出平均分裂相值所占百分比。觀察時要掌握好分裂相標(biāo)準(zhǔn),主要是確定好劃分間期和前期,末期和間期等的界限,以減少誤差。細(xì)胞分裂指數(shù)=細(xì)胞分裂相數(shù)/細(xì)胞總數(shù)(1000)×1000四、細(xì)胞接種存活率細(xì)胞接種存活率又稱細(xì)胞貼壁率。它是細(xì)胞被制成分散的懸液后,以低密度(25個細(xì)胞/cm2)被接種到底物上,貼壁并能存活生長形成細(xì)胞小群(克隆)的細(xì)胞百分?jǐn)?shù)值,用以表示細(xì)胞的生存能力和細(xì)胞
6、群的活力。基本步驟:(1)取對生長期細(xì)胞,用消化法制成細(xì)胞懸液,計數(shù)后按檢測細(xì)胞生長曲線的接種細(xì)胞的原則,將細(xì)胞接種于培養(yǎng)瓶(濃度相對高些)。接種1215瓶。(2)每2小時取出一瓶細(xì)胞,倒掉培養(yǎng)液,然后加入胰酶消化已貼壁細(xì)胞,計數(shù)已貼壁細(xì)胞,用下面公式逐個計算每個時間上的貼壁率。每2小時一次,共觀察24小時即12。 接種存活率%(貼壁率)=(貼壁存活細(xì)胞數(shù)/接種細(xì)胞數(shù))×100%五、克隆形成率細(xì)胞接種存活率只表示接種細(xì)胞后貼壁的細(xì)胞數(shù),但貼壁后的細(xì)胞不一定每個都能增殖和形成克隆。而形成克隆的細(xì)胞必為貼壁和有增殖活力的細(xì)胞??寺⌒纬陕史从臣?xì)胞群體依賴性和增殖能力
7、兩個重要性狀。由于細(xì)胞生物學(xué)性狀不同,細(xì)胞克隆形成率差別也很大,一般初代培養(yǎng)細(xì)胞克隆形成率弱,傳代細(xì)胞系強;二倍體細(xì)胞克隆形成率弱,轉(zhuǎn)化細(xì)胞系強;正常細(xì)胞克隆形成率弱,腫瘤細(xì)胞強。并且克隆形成率與接種密度有一定關(guān)系,做克隆形成率測定時,接種細(xì)胞一定要分散成單細(xì)胞懸液,直接接種在碟皿中,持續(xù)一周,隨時檢查,到細(xì)胞形成克隆時終止培養(yǎng)。1、平板克隆形成試驗基本步驟:(1)取對數(shù)生長期的單層培養(yǎng)細(xì)胞,用0.25%胰蛋白酶消化并吹打成單個細(xì)胞,把細(xì)胞懸浮在10%胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)液中備用。(2)將細(xì)胞懸液作梯度倍數(shù)稀釋,以適當(dāng)?shù)募?xì)胞密度(根據(jù)增殖能力)接種于培養(yǎng)皿中。一般分每皿50、100、
8、200個細(xì)胞的梯度密度分別接種含10mL 37預(yù)溫培養(yǎng)液的皿中,并輕輕轉(zhuǎn)動,使細(xì)胞分散均勻。置37 5% CO2及飽和濕度的環(huán)境下,靜置培養(yǎng)23周。(3)經(jīng)常觀察,當(dāng)培養(yǎng)皿中出現(xiàn)肉眼可見的克隆時,終止培養(yǎng)。棄去上清液,用PBS小心浸洗2次。加純甲醇或1:3醋酸/甲醇5mL,固定15分鐘。然后去固定液,加適量Giemsa應(yīng)用染色液染1030分鐘,然后用流水緩慢洗去染色液,空氣干燥。(4)將平皿倒置并疊加一張帶網(wǎng)格的透明膠片,用肉眼直接計數(shù)克隆,或在顯微鏡(低倍鏡)計數(shù)大于10個細(xì)胞的克隆數(shù)。最后計算克隆形成率。
9、0; 克隆數(shù) 克隆形成率= ×100% 接種細(xì)胞數(shù)平板克隆形成試驗方法簡單,適用于貼壁生長的細(xì)胞。適宜底物為玻璃的、塑料瓶皿。試驗成功的關(guān)鍵是細(xì)胞懸液的制備和接種密度。細(xì)胞一定要分散得好,不能有細(xì)胞團(tuán),接種密度不能過大。2、軟瓊脂培養(yǎng)克隆形成試驗基本步驟:(1)取對數(shù)生長期細(xì)胞,用0.25%胰蛋白酶消化并輕輕吹打,使之成為單細(xì)胞,作活細(xì)胞計數(shù),用含20%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液調(diào)整細(xì)胞密度至1×106細(xì)胞/L。然后根據(jù)實驗要求作梯度倍數(shù)稀釋。(2)用蒸餾水分別制備出1.2%和0.7%兩個濃度的低溶點瓊脂糖液,高壓滅菌后,維持在40中不會凝固。(3)按1:1比例使1.2%的瓊脂糖和2×DMEM培養(yǎng)基(含有2×抗生素和20%的小牛血清)混合后,取3mL混合液注入直徑6cm平皿中(10cm平皿加710mL),冷卻凝固,可作底層瓊脂置CO2溫箱中備用。(4)按1:1比例讓0.7%的瓊脂糖和2×DMEM培養(yǎng)基在無菌試管中相混以后,再向管中加入0.2mL的細(xì)胞懸液,充分混勻,注入鋪有1.2%瓊脂糖底層平皿中,逐形成雙瓊脂層。待上層瓊脂凝固后,置入37 5%CO2溫箱
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