標(biāo)準(zhǔn)解讀
《GB/T 18448.2-2008 實驗動物 弓形蟲檢測方法》與《GB/T 18448.2-2001 實驗動物 弓形蟲檢測方法》相比,主要在以下幾個方面進(jìn)行了更新和調(diào)整:
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檢測技術(shù)的更新:2008版標(biāo)準(zhǔn)融入了近年來在實驗動物弓形蟲檢測領(lǐng)域的新技術(shù)和新方法,如改進(jìn)的免疫學(xué)檢測技術(shù)(如酶聯(lián)免疫吸附試驗ELISA)和分子生物學(xué)技術(shù)(如PCR),以提高檢測的敏感性和特異性,而2001版標(biāo)準(zhǔn)主要依賴于傳統(tǒng)的一些微生物學(xué)和血清學(xué)方法。
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檢測對象范圍的明確:2008版標(biāo)準(zhǔn)對適用的實驗動物種類和樣本類型(如血液、組織、排泄物等)進(jìn)行了更詳細(xì)的分類和說明,使得檢測范圍更加明確和廣泛,有利于實際操作中的準(zhǔn)確應(yīng)用。
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采樣和前處理方法優(yōu)化:新版標(biāo)準(zhǔn)對樣品采集、保存及預(yù)處理步驟進(jìn)行了優(yōu)化,提供了更為詳細(xì)的操作指導(dǎo),旨在減少因樣本處理不當(dāng)導(dǎo)致的假陽性或假陰性結(jié)果,提高檢測的準(zhǔn)確性。
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質(zhì)量控制要求提升:2008版標(biāo)準(zhǔn)加強(qiáng)了實驗室質(zhì)量控制要求,包括內(nèi)部質(zhì)控、外部質(zhì)控以及對檢測試劑和設(shè)備的校準(zhǔn)與驗證,確保檢測結(jié)果的可靠性和可比性。
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結(jié)果判定標(biāo)準(zhǔn)的修訂:根據(jù)新的檢測技術(shù)和科學(xué)研究進(jìn)展,新版標(biāo)準(zhǔn)對弓形蟲感染的判定標(biāo)準(zhǔn)進(jìn)行了修訂,明確了陽性和陰性的具體判定指標(biāo),以及可疑結(jié)果的處理方式,提高了檢測結(jié)果解釋的一致性和科學(xué)性。
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安全性和倫理考量:2008版標(biāo)準(zhǔn)在實驗操作過程中增加了對實驗人員的安全防護(hù)指導(dǎo)和動物福利的考慮,強(qiáng)調(diào)了實驗操作應(yīng)遵循相關(guān)的生物安全和倫理原則。
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- 現(xiàn)行
- 正在執(zhí)行有效
- 2008-12-03 頒布
- 2009-03-01 實施



文檔簡介
犐犆犛65.020.30
犅44
中華人民共和國國家標(biāo)準(zhǔn)
犌犅/犜18448.2—2008
代替GB/T18448.2—2001
實驗動物弓形蟲檢測方法
犔犪犫狅狉犪狋狅狉狔犪狀犻犿犪犾—犕犲狋犺狅犱犳狅狉犲狓犪犿犻狀犪狋犻狅狀狅犳犜狅狓狅狆犾犪狊犿犪犵狅狀犱犻犻
20081203發(fā)布20090301實施
中華人民共和國國家質(zhì)量監(jiān)督檢驗檢疫總局
發(fā)布
中國國家標(biāo)準(zhǔn)化管理委員會
書
犌犅/犜18448.2—2008
前言
GB/T18448《實驗動物》由10項實驗動物寄生蟲檢測方法組成。
本部分為GB/T18448的第2部分《實驗動物弓形蟲檢測方法》。
本部分自實施之日起代替GB/T18448.2—2001。
本部分與GB/T18448.2—2001相比主要技術(shù)差異如下:
a)增加弓形蟲酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA)和免疫酶染色試驗(IEA),將PCR檢測方法列入附錄
內(nèi)容,保留間接血凝試驗(IHA)作為推薦方法之一;
b)將檢測方法所需的“材料與試劑”和“檢測步驟”分別敘述。
本部分附錄A是規(guī)范性附錄。
本部分由全國實驗動物標(biāo)準(zhǔn)化技術(shù)委員會提出并歸口。
本部分起草單位:全國實驗動物標(biāo)準(zhǔn)化技術(shù)委員會。
本部分主要起草人:潘振業(yè)、屈霞琴、陳俏梅、李冠民、王彥平。
本部分所代替標(biāo)準(zhǔn)的歷次版本發(fā)布情況為:
———GB/T14926.34—1994,GB/T18448.2—2001。
Ⅰ
書
犌犅/犜18448.2—2008
實驗動物弓形蟲檢測方法
1范圍
GB/T18448的本部分規(guī)定了實驗動物弓形蟲的檢測方法和試劑等。
本部分適用于小鼠、大鼠、地鼠、豚鼠、兔、犬及猴等實驗動物弓形蟲的檢測。
2原理
根據(jù)免疫學(xué)原理,采用弓形蟲抗原檢測被檢動物血清中的弓形蟲抗體。
3主要試劑和器材
3.1試劑
3.1.1ELISA抗原
3.1.1.1特異性抗原
弓形蟲(RH株)速殖子腹腔接種清潔級以上實驗小鼠(KM、ICR、BALB/c等均可),3d~5d后,以
無菌生理鹽水灌洗被接種小鼠的腹腔,收集含有蟲體的小鼠腹腔液,3000r/min離心10min,取沉淀,
PBS洗3次。沉淀物加適量蒸餾水反復(fù)凍融5次,或用超聲波處理后,10000r/min離心30min,取上
清液。上清液用葡聚糖凝膠G200進(jìn)行純化(柱內(nèi)徑×柱高:1.5cm×60cm),流速為0.2mL/min。每
管收集2mL左右。共收集60管以上。分別測定每個收集管中蛋白在280nm下的吸光度值。分離純
化后,出現(xiàn)2個蛋白峰;將第一峰各管合并,即為弓形蟲特異性抗原(也稱弓形蟲可溶性抗原)。
3.1.1.2正常抗原
以無菌生理鹽水注射清潔級以上實驗小鼠(與制備抗原的小鼠同品種或品系)腹腔,3d~5d后,以
無菌生理鹽水灌洗被注射小鼠腹腔,收集小鼠腹腔液,3000r/min離心10min,取沉淀,PBS洗3次。
沉淀物加適量蒸餾水反復(fù)凍融5次,或用超聲波處理后,10000r/min離心30min,取上清液,即為正常
抗原。
3.1.2抗原片
弓形蟲RH株速殖子腹腔接種清潔級以上實驗小鼠(KM、ICR、BALB/c等均可),3d~5d后處
死,收取蟲體,胰酶消化,以一定濃度涂片,充分晾干后冷丙酮固定,-20℃保存。
3.1.3弓形蟲抗原致敏綿羊紅細(xì)胞
將綿羊紅細(xì)胞與一定濃度的鞣酸液反應(yīng),制成鞣化紅細(xì)胞,然后,用弓形蟲可溶性抗原在適宜的條
件下致敏鞣化紅細(xì)胞,制成弓形蟲抗原致敏綿羊紅細(xì)胞。
3.1.4正常對照綿羊紅細(xì)胞。
3.1.5陽性對照血清
自然感染弓形蟲的相應(yīng)動物抗體陽性血清,或弓形蟲免疫血清。
3.1.6陰性對照血清
確證無弓形蟲感染的動物血清。
3.1.7酶結(jié)合物
辣根過氧化物酶標(biāo)記的抗小鼠、大鼠、地鼠、豚鼠、兔、犬和猴IgG
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