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文檔簡介
1、食品微生物學(xué)檢驗 菌落總數(shù)培訓(xùn)(GB/T4789.2)2022-4-261內(nèi)容一、立項修訂依據(jù)二、主要修訂內(nèi)容三、檢驗程序四、第一法五、第二法 2022-4-263一 立項修訂依據(jù)修訂的背景 標(biāo)準(zhǔn)清理 多年未進行修訂修訂的意義(緊迫性) WTO的要求 原標(biāo)準(zhǔn)的局限(培養(yǎng)基、計數(shù)方式等) 3M紙片法菌落總數(shù)的衛(wèi)生學(xué)意義2022-4-264修訂依據(jù)(修訂的主要參考方法) FDA/BAM Chapter 3 Aerobic Plate Count Jan. 2001SN 0168-92 出口食品平板菌落計數(shù)AOAC 986.32Aerobic Plate Count in FoodsAOAC 988
2、.18Aerobic Plate CountAOAC 990.12Aerobic Plate Count in FoodsUSDA/FSIS MLG CHAPTER 3 EXAMINATION OF FRESH, REFRIGERATED AND FROZEN PREPARED MEAT, POULTRY AND PASTEURIZED EGG PRODUCTS ISO 4833:1991 Microbiology - General guidance for the enumeration of micro-organisms - Colony count technique at 30 d
3、egrees C ISO 6610:1992 Milk and milk products-Enumeration Colony-forming units of micro-organisms-Colony-count technique at 30NMKL APHA CCFRA JAPAN HPB2022-4-265 二、修訂的主要內(nèi)容培養(yǎng)基由營養(yǎng)瓊脂改為平板計數(shù)瓊脂添加了PetrifilmTM 細(xì)菌總數(shù)檢驗測試片法菌落計數(shù)公式進行了修改添加了拍打式均質(zhì)器或等效的設(shè)備 2022-4-2661、培養(yǎng)基改變情況平板計數(shù)瓊脂平板計數(shù)瓊脂 (PCA)胰蛋白胨 5.0g酵母浸膏 2.5g葡萄糖 1.
4、0g瓊脂 15.0g蒸餾水 1000mL營養(yǎng)瓊脂(營養(yǎng)瓊脂(NA)蛋白胨 10.0g牛肉膏3.0g氯化鈉5.0g瓊脂15.0g蒸餾水 1000mL2022-4-267培養(yǎng)基改變依據(jù) 國外食品微生物權(quán)威的檢測方法如ISO、AOAC和FDA/BAM等基本上都是采用平板計數(shù)瓊脂或在平板計數(shù)瓊脂的基礎(chǔ)上進行了改良; 針對能力驗證菌落總數(shù)的樣品,采用兩種培養(yǎng)基,結(jié)果無顯著性差異; 平板計數(shù)瓊脂具有細(xì)菌比較容易生長,菌落特征明顯,容易計數(shù)等特點。2022-4-2682、3MTM PetrifilmTM 細(xì)菌總數(shù)試片法 國外情況 比對試驗數(shù)據(jù)(已發(fā)表) 標(biāo)準(zhǔn)方法 國內(nèi)情況 使用狀況 比對試驗數(shù)據(jù)(已發(fā)表)2
5、022-4-269優(yōu)缺點優(yōu)點:1、培養(yǎng)基具有良好的生產(chǎn)質(zhì)量;2、菌落計數(shù)特別方便(容易判讀),紅色菌落,易于食品顆粒分開,也不菌落重疊現(xiàn)象;3、準(zhǔn)確計數(shù),有方格,尤其是數(shù)目較多時,兩個人分別計數(shù)同一紙片時差異;4、菌落分布特別均勻;5、平行平板菌落結(jié)果一致性比較好,與避免了熱損傷有關(guān);6、菌落蔓延或半透明菌膜現(xiàn)象很少發(fā)生;7、安全方面不像玻璃平皿易碎、對人員造成潛在的傷害,另外密封比較好,不容易直接接觸菌落。缺點:1、某些有紅色顆粒的樣品,需要注意;粘稠的液體樣品,不易分散開;表面活性比較大,易流出等2、顏色特別重的樣品,如桔黃色,掩蓋了菌落;3、抑菌劑濃度比較高的樣品,如辣椒及辣椒粉、大蒜及
6、洋蔥制品;4、某些微生物會液化凝膠,造成局部擴散或菌落模糊的現(xiàn)象,大部分是芽胞桿菌。3、菌落計算公式有兩個稀釋度的菌落數(shù)在合適范圍,按照如下公式計算:N = 樣品中菌落數(shù)C =平板菌落數(shù)之和n1 = 含合適范圍菌落數(shù)的第一稀釋度(低)平板數(shù)n2 =含合適范圍菌落數(shù)的第二稀釋度(高)平板數(shù)d = 第一稀釋度(低)2022-4-2611dnnCN)1.0(21菌落計算公式1:100(第一稀釋度) 232,2441:1000(第二稀釋度)33,35dnnCN)1 . 0(212022-4-26122500024727102 . 254410)21 . 0(2353324423222菌落計算例子300
7、0030150104120610435038024423221022212211222111dnCnCdnCdnCN1:100(第一稀釋度) 232,2441:1000(第二稀釋度)38,352022-4-26132500024909102 . 254910)21 . 0 (2 3538244232)1 . 0(2221dnnCN統(tǒng)計學(xué)依據(jù)統(tǒng)計學(xué)依據(jù): 平板菌落數(shù)越多,結(jié)果越具有代表性;平板菌落數(shù)越多,結(jié)果越具有代表性; (不考慮稀釋倍數(shù)和培養(yǎng)基的營養(yǎng)狀況等) 取樣量越大,結(jié)果越具有代表性;取樣量越大,結(jié)果越具有代表性; (同等取樣條件、排除其他方面的干擾因素) 兩個相鄰的稀釋度平板菌落數(shù)直接
8、相加,不考慮稀釋倍數(shù)的影響,采用加權(quán)平均值代替簡單的算術(shù)平均值2022-4-26144、其他內(nèi)容菌落形成單位的定義菌落總數(shù)的英文培養(yǎng)溫度和時間 361培養(yǎng)48h2h。水產(chǎn)品301培養(yǎng)72h3h微量移液器天平2022-4-2615三 檢驗程序2022-4-2616 361 48h2h檢 樣 25g(mL)樣品+ 225mL稀釋液,均質(zhì)10倍系列稀釋選擇23個適宜樣品勻液,各取1mL分別加入無菌培養(yǎng)皿內(nèi)培 養(yǎng)計數(shù)各平板菌落數(shù)計算菌落總數(shù)每皿中加入15mL20mL平板計數(shù)瓊脂培養(yǎng)基,混勻報 告第一法 平板菌落計數(shù)法操作步驟樣品稀釋 固體和半固體樣品:固體和半固體樣品:稱取25g樣品至盛有225 mL
9、磷酸鹽緩沖稀釋液或生理鹽水的無菌均質(zhì)杯內(nèi),8000r/min10000 r/min均質(zhì)1min2min,或放入盛有225 mL稀釋液的無菌均質(zhì)袋中,用拍擊式均質(zhì)器拍打1min2min,制成1:10的樣品勻液。 液體樣品:液體樣品:以無菌吸管吸取25mL樣品至盛有225mL磷酸鹽緩沖稀釋液或生理鹽水的無菌錐形瓶(瓶內(nèi)預(yù)置適當(dāng)數(shù)量的無菌玻璃珠)中,充分混勻,制成1:10的樣品勻液。操作步驟樣品稀釋 用1mL無菌吸管或微量移液器吸取1:10樣品勻液1mL,沿管壁緩慢注于盛有9mL稀釋液的無菌試管中(注意吸管或吸頭尖端不要觸及稀釋液面),振搖試管或換用1支無菌吸管反復(fù)吹打使其混合均勻,制成1:100的
10、樣品勻液。 按上述操作程序,制備10倍系列稀釋樣品勻液。每遞增稀釋一次,換用1次1mL無菌吸管或吸頭。操作步驟樣品稀釋 根據(jù)對樣品污染狀況的估計,選擇23個適宜稀釋度的樣品勻液(液體樣品可包括原液),在進行10倍遞增稀釋時,每個稀釋度分別吸取1mL樣品勻液于2個無菌平皿內(nèi)。同時分別取1mL稀釋液加入2個無菌平皿作空白對照。 及時將15mL20mL冷卻至46的平板計數(shù)瓊脂培養(yǎng)基(可放置于461恒溫水浴箱中保溫)傾注平皿,并轉(zhuǎn)動平皿使其混合均勻。操作步驟培養(yǎng) 瓊脂凝固后,將平板翻轉(zhuǎn),361培養(yǎng)48h2h。水產(chǎn)品301培養(yǎng)72h3h。 如果樣品中可能含有在瓊脂培養(yǎng)基表面彌漫生長的菌落時,可在凝固后的
11、瓊脂表面覆蓋一薄層瓊脂培養(yǎng)基(約4mL),凝固后翻轉(zhuǎn)平板,按上述條件進行培養(yǎng)。菌落計數(shù) 可用肉眼觀察,必要時用放大鏡或菌落計數(shù)器,記錄稀釋倍數(shù)和相應(yīng)的菌落數(shù)量。菌落計數(shù)以菌落形成單位(colony-forming units,cfu)表示。 選取菌落數(shù)在30cfu300cfu之間、無蔓延菌落生長的平板計數(shù)菌落總數(shù)。低于30cfu的平板記錄具體菌落數(shù),大于300cfu的可記錄為多不可計。每個稀釋度的菌落數(shù)應(yīng)采用兩個平板的平均數(shù)。 其中一個平板有較大片狀菌落生長時,則不宜采用,而應(yīng)以無片狀菌落生長的平板作為該稀釋度的菌落數(shù);若片狀菌落不到平板的一半,而其余一半中菌落分布又很均勻,即可計算半個平板后
12、乘以2,代表一個平板菌落數(shù)。 平板內(nèi)如有鏈狀菌落生長時(菌落之間無明顯界線),則應(yīng)將每條鏈(不同來源)作為一個菌落計。結(jié)果的表述菌落總數(shù)的計算方法若只有一個稀釋度平板上的菌落數(shù)在適宜計數(shù)范圍內(nèi),計算兩個平板菌落數(shù)的平均值,再將平均值乘以相應(yīng)稀釋倍數(shù),作為每g(mL)中菌落總數(shù)結(jié)果。若有兩個連續(xù)稀釋度的平板菌落數(shù)在適宜計數(shù)范圍內(nèi)時,按公式計算。 若所有稀釋度的平板上菌落數(shù)均大于300,則對稀釋度最高的平板進行計數(shù),其他平板可記錄為多不可計,結(jié)果按平均菌落數(shù)乘以最高稀釋倍數(shù)計算。若所有稀釋度的平板菌落數(shù)均小于30,則應(yīng)按稀釋度最低的平均菌落數(shù)乘以稀釋倍數(shù)計算。若所有稀釋度(包括液體樣品原液)平板均
13、無菌落生長,則以小于1乘以最低稀釋倍數(shù)計算。若所有稀釋度的平板菌落數(shù)均不在30300之間,其中一部分大于300或小于30時,則以最接近30或300的平均菌落數(shù)乘以稀釋倍數(shù)計算。結(jié)果的表述菌落總數(shù)的報告 菌落數(shù)在100以內(nèi)時,按“四舍五入”原則修約,采用兩位有效數(shù)字報告。 大于或等于100時,前第3位數(shù)字采用“四舍五入”原則修約后,取前2位數(shù)字,后面用0代替位數(shù)來表示結(jié)果;也可用10的指數(shù)形式來表示,此時也按“四舍五入”原則修約,采用兩位有效數(shù)字。 若所有平板上為蔓延菌落而無法計數(shù),則報告菌落蔓延。 若空白對照上有菌落生長,則此次檢測結(jié)果無效。 稱重取樣以cfu/g為單位報告,體積取樣以cfu/
14、mL為單位報告。第二法 菌落總數(shù)PetrifilmTM測試片法檢驗程序 除將平板計數(shù)瓊脂培養(yǎng)基改成PetrifilmTM菌落總數(shù)測試片外,其它與檢驗程序同第一法。操作步驟樣品的稀釋 1:10的樣品勻液制備后,用1mol/L NaOH或1 mol/L HCl調(diào)節(jié)pH至6.67.2。 其他步驟同第一法操作步驟接種 根據(jù)對樣本污染狀況的估計,選擇23個適宜稀釋度的樣品勻液進行檢驗。將測試片置于平坦實驗臺表面,揭開上層膜,用吸管或微量移液器吸取1mL樣品勻液,垂直滴加在測試片的中央,將上層膜蓋下,允許上層膜直接落下,但不要滾動上層膜,將壓板(凹面底朝下)放置在上層膜中央,輕輕地壓下,使樣液均勻覆蓋于圓形的培養(yǎng)膜上,切勿扭轉(zhuǎn)壓板。拿起壓板,靜置至少1分鐘以使培養(yǎng)基凝固。每個稀釋度接種兩張測試片。操作步驟培養(yǎng) 將測試片的透明面朝上,水平置于培養(yǎng)箱內(nèi)??啥询B至20片,培養(yǎng)溫度和時間同第一法。操作步驟計數(shù) 培養(yǎng)結(jié)束后立即計數(shù),可肉眼觀察計數(shù),或用菌落計數(shù)器、放大鏡、PetrifilmTM自動判
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