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DB12DB12/T506—2014大豆轉(zhuǎn)基因成分篩查方法Screeningmethodforgeneticallymodifiedsoybean2014-04-22發(fā)布2014-07-20實(shí)施天津市質(zhì)量技術(shù)監(jiān)督局發(fā)布DB12/T506—2014DB12/T506—2014本標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定了大豆中轉(zhuǎn)基因成分定性PCR篩查的術(shù)語GB/T6682分析實(shí)驗(yàn)室用水規(guī)格NY/T672轉(zhuǎn)基因植物及其產(chǎn)品檢測(cè)通用要求農(nóng)業(yè)部2031號(hào)公告—19—2013轉(zhuǎn)基因植物及其產(chǎn)品檢測(cè)抽樣Lectin基因LectingeneCaMV35S啟動(dòng)子35Spromoterfromcauliflowermosaicvirus(CaMV)NOS終止子terminatorofnopalinesynthase(NOS)geneCP4-epsps基因5-enolpyruvylshikimate-3-phosphatesynthasegenederivedfromAgrobacter來源于土壤農(nóng)桿菌株系(Agrobacteriumsp.)CP4株系一段可編碼5-Bt基因Bt(Bacillusthuringiensis)gene來源與蘇云金芽胞桿菌(Bacillusthur),見的Bt基因有cry1Ac基因、cry1Ab基因、cry1Ab/crybar/pat基因bialaphosresistancegene/phosphinothricinacetyltransferasDB12/T506—2014bar基因來源于土壤吸水鏈霉菌(Streptomyceshygroscopicuspat基因來源于綠產(chǎn)色鏈霉菌4檢測(cè)方法4.1.1實(shí)驗(yàn)用水為重蒸餾水或符合GB/),注:溴化乙錠有致癌作用,配制和使用時(shí)應(yīng)戴),):):),),4.1.13引物:大豆內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因和轉(zhuǎn)基因大豆Lectin210bpCaMV35SNOSNOS-F:5′-GAATCCTGTTGCCGGTCTTG-NOS-R:5′-TTATCCTAGTTTGCGCGCTA-DB12/T506—2014mCP4ES-F:5′-ACGGTGAYCGTCTTCCMGTTACmCP4ES-R:5′-GAACAAGCARGGCMGCAACCBtBt-F:5′-GAAGGTTTGAGCAATCBt-R:5′-CGATCAGCCTAGTAAGbarbar-F:5′-GAAGGCACGCAACGCCTACbar-R:5′-CCAGAAACCCACGTCATGCC262bppatpat-F:5′-GAAGGCTAGGAACGCTTACGpat-R:5′-CCAAAAACCAACATCATGCCA262bpDB12/T506—2014水2.5μL25mmol/L氯化鎂溶液1.5μL2.0μL0.1~0.5μmol/L0.25~1.25μL0.1~0.5μmol/L0.25~1.25μL0.025U/μL——2.0μL25.0μL注1:大豆內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因PCR檢測(cè)反應(yīng)體系中,上下游引物分別為lec-1672F和lec-為0.2μmol/L;CaMV35S啟動(dòng)子PCR檢測(cè)反應(yīng)體系中,上下游引物分別是35S-F和35S-Bt基因PCR檢測(cè)反應(yīng)體系中,上下游引物分別是Bt-F和Bt-R,引物終濃度分別為0.5μmol/L;bar基因和pat別為0.1μmol/L。LectinNOS5DB12/T506—2014Btbar/pat4.3.5.1.5反應(yīng)結(jié)束后取出PCR管,對(duì)PCR反應(yīng)產(chǎn)物進(jìn)行電泳檢測(cè)。mL瓊脂糖溶液中加入5μLEB溶液,混勻,稍適冷卻后,將其倒入電泳板上,插條件下電泳檢測(cè)。DB12/T506—20145.2.1在試樣的PCR反應(yīng)中,內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)基因得到擴(kuò)增,且擴(kuò)增片段大小與預(yù)期片段大小一致;而CaMV35S啟動(dòng)子、NOS終止子、Bt基因、bar/pat基因和CP4-epsps基因均未得到DB12/T506—2014A.2CaMV35S啟動(dòng)子PCR擴(kuò)增產(chǎn)物核苷酸序列A.4CP4-epsps基因PCR擴(kuò)增產(chǎn)物核苷酸序列一

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