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文檔簡介
ICS65.020
B16
DB41
河南省地方標(biāo)準(zhǔn)
DB41/T987—2014
脫毒甘薯種薯(苗)病毒檢測技術(shù)規(guī)程
Technicalcriterionforvirusdetectionofvirus-freesweetpotatoseedtuberor
seedling
2014-12-30發(fā)布2015-03-01實(shí)施
河南省質(zhì)量技術(shù)監(jiān)督局發(fā)布
DB41/T987-2014
目次
前言................................................................................II
1范圍..............................................................................1
2術(shù)語和定義........................................................................1
2.1脫毒組培苗....................................................................1
2.2擴(kuò)繁苗........................................................................1
2.3脫毒種薯(苗)................................................................1
2.4原原種........................................................................1
2.5原種..........................................................................1
2.6大田用種......................................................................1
2.7允許帶毒率....................................................................2
2.8允許病毒顯癥率................................................................2
3檢測對(duì)象..........................................................................2
4抽樣..............................................................................2
4.1組培苗抽樣....................................................................2
4.2田間抽樣......................................................................2
5檢測方法..........................................................................2
5.1硝酸纖維素膜酶聯(lián)免疫吸附測定(NCM-ELISA)檢測法...............................2
5.2指示植物檢測法................................................................3
5.3聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)檢測法...................................................3
5.4反轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(RT-PCR)檢測法..........................................3
6脫毒種薯(苗)的檢測程序及質(zhì)量要求................................................3
6.1脫毒組培苗....................................................................3
6.2原原種........................................................................3
6.3原種..........................................................................3
6.4大田用種......................................................................3
附錄A(規(guī)范性附錄)硝酸纖維素膜酶聯(lián)免疫吸附測定(NCM-ELISA)檢測法.................4
附錄B(規(guī)范性附錄)指示植物檢測法..................................................6
附錄C(規(guī)范性附錄)聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)檢測法.....................................7
附錄D(規(guī)范性附錄)反轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(RT-PCR)檢測法............................9
I
DB41/T987-2014
前言
本標(biāo)準(zhǔn)按照GB/T1.1-2009給出的規(guī)則起草。
本標(biāo)準(zhǔn)由河南省農(nóng)業(yè)科學(xué)院提出。
本標(biāo)準(zhǔn)起草單位:河南省農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所。
本標(biāo)準(zhǔn)主要起草人:張振臣、喬奇、秦艷紅、張德勝、王爽、田雨婷、王永江。
II
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脫毒甘薯種薯(苗)病毒檢測技術(shù)規(guī)程
1范圍
本標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定了脫毒甘薯種薯(苗)病毒檢測的術(shù)語定義、檢測對(duì)象、抽樣、檢測方法和脫毒種薯(苗)
的檢測程序及質(zhì)量要求。
本標(biāo)準(zhǔn)適用于脫毒甘薯種薯(苗)的病毒檢測。
2術(shù)語和定義
下列術(shù)語和定義適用于本文件。
2.1
脫毒組培苗virus-freetissuecultureseedling
利用莖尖分生組織培養(yǎng)技術(shù)獲得的再生組培苗,經(jīng)檢測,確認(rèn)不含甘薯羽狀斑駁病毒(Sweetpotato
featherymottlevirus,SPFMV)、甘薯潛隱病毒(Sweetpotatolatentvirus,SPLV)、甘薯G病毒
(SweetpotatovirusG,SPVG)、甘薯病毒2(Sweetpotatovirus2,SPV2)、甘薯褪綠斑病毒(Sweet
potatochloroticfleckvirus,SPCFV)、甘薯褪綠矮化病毒(Sweetpotatochloroticstuntvirus,
SPCSV)和甘薯卷葉病毒(Sweetpotatoleafcurlvirus,SPLCV)的種苗。
2.2
擴(kuò)繁苗propagationseedling
由脫毒組培苗在無菌條件下或者防蟲溫(網(wǎng))室內(nèi)快繁后得到的甘薯苗。
2.3
脫毒種薯(苗)virus-freeseedtuberorseedling
由脫毒組培苗經(jīng)逐代繁殖增加種薯(苗)數(shù)量的種薯(苗)生產(chǎn)體系生產(chǎn)出來的種薯(苗)。分原
原種、原種、大田用種三個(gè)級(jí)別。
2.4
原原種pre-elite
用脫毒組培苗或擴(kuò)繁苗在防蟲網(wǎng)室內(nèi)生產(chǎn)出的符合質(zhì)量要求的種薯(苗)。
2.5
原種elite
用原原種作種薯,在隔離條件下生產(chǎn)出的符合質(zhì)量要求的種薯(苗)。
2.6
大田用種certifiedseed
用原種作種薯,在隔離條件下生產(chǎn)出的符合質(zhì)量要求的種薯(苗)。
2.7
允許帶毒率permissionvirus-carryingrate
各級(jí)甘薯種薯(苗)繁殖田中允許攜帶病毒植株的比率。
2.8
允許病毒顯癥率permissionvirus-symptomrate
1
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各級(jí)甘薯種薯(苗)繁殖田中允許出現(xiàn)病毒病癥狀植株的比率。
3檢測對(duì)象
甘薯羽狀斑駁病毒(SPFMV);
甘薯潛隱病毒(SPLV);
甘薯G病毒(SPVG);
甘薯病毒2(SPV2);
甘薯褪綠斑病毒(SPCFV);
甘薯褪綠矮化病毒(SPCSV);
甘薯卷葉病毒(SPLCV)。
4抽樣
4.1組培苗抽樣
4.1.1脫毒組培苗
每株均應(yīng)檢測。
4.1.2擴(kuò)繁苗
隨機(jī)抽取1%~2%的擴(kuò)繁苗檢測。
4.2田間抽樣
4.2.1原原種田抽樣
定植后30d、60d、收獲前2周,在目測的基礎(chǔ)上,采用五點(diǎn)取樣法。面積≤0.1hm2,抽取數(shù)量為
200株;0.1hm2<面積≤1hm2,抽取數(shù)量為500株;每超出1hm2面積,劃出另一檢驗(yàn)區(qū),按本規(guī)程規(guī)定
的面積取樣。每株取上、中、下部葉片1g~5g,-20℃以下低溫保存。
4.2.2原種田和大田用種田抽樣
定植后30d、收獲前兩周,在目測的基礎(chǔ)上,采用五點(diǎn)取樣法。取樣方法及樣品保存同4.2.1。
5檢測方法
5.1硝酸纖維素膜酶聯(lián)免疫吸附測定(NCM-ELISA)檢測法
用于檢測SPFMV、SPLV、SPVG、SPV2、SPCFV、SPCSV和SPLCV共7種病毒,檢測法見附錄A。
5.2指示植物檢測法
用于輔助檢測SPFMV、SPLV、SPVG、SPV2、SPCFV、SPCSV和SPLCV共7種病毒,檢測法見附錄B。
5.3聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)檢測法
用于檢測SPLCV。檢測法見附錄C。
2
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5.4反轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(RT-PCR)檢測法
用于檢測SPCSV。檢測法見附錄D。
6脫毒種薯(苗)的檢測程序及質(zhì)量要求
6.1脫毒組培苗
樣品同時(shí)利用NCM-ELISA、PCR、RT-PCR和指示植物4種方法進(jìn)行檢測,4種方法的檢測結(jié)果均應(yīng)為陰
性,即允許帶毒率為0。
6.2原原種
先目測調(diào)查樣品的病毒顯癥率,然后利用NCM-ELISA或指示植物法進(jìn)行檢測,至少其中10%的樣品分
別利用PCR和RT-PCR檢測。允許帶毒率為0,允許病毒顯癥率為0。
6.3原種
先目測調(diào)查樣品的病毒顯癥率,然后利用NCM-ELISA或指示植物進(jìn)行檢測,至少其中5%的樣品分別
利用PCR和RT-PCR檢測。SPFMV、SPLV、SPVG、SPV2和SPCFV的允許帶毒率≤2.0%,SPCSV和SPLCV的允許
帶毒率為0。允許病毒顯癥率≤1.0%。
6.4大田用種
先目測調(diào)查樣品的病毒顯癥率,然后利用NCM-ELISA或指示植物進(jìn)行檢測,至少其中1%的樣品分別
利用PCR和RT-PCR檢測。SPFMV、SPLV、SPVG、SPV2和SPCFV的允許帶毒率≤10.0%,SPCSV和SPLCV的允許
帶毒率為0,允許病毒顯癥率≤5.0%。
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AA
附錄A
(規(guī)范性附錄)
硝酸纖維素膜酶聯(lián)免疫吸附測定(NCM-ELISA)檢測法
A.1溶液配制
除非另有規(guī)定僅使用分析試劑。水為無菌蒸餾水。
A.1.1Tris-HCl溶液[c(Tris-HCl)=1.0mol/L]:稱取60.60g的三羥甲基氨基甲烷(Tris)溶于
300mL無菌蒸餾水中,加入32.5mL濃鹽酸(HCl),調(diào)節(jié)pH值為7.5,定容至500mL。4℃保存?zhèn)溆谩?/p>
A.1.2氯化鈉溶液[c(NaCl)=5.0mol/L]:稱取292.20g氯化鈉,在800mL無菌蒸餾水中,溶解定容至
1L。4℃保存?zhèn)溆谩?/p>
A.1.3三羥甲基氨基甲烷溶液(TBS):分別取1mol/LTris-HCl(A.1.1)20mL和5mol/L氯化鈉
(A.1.2)100mL,混合后用無菌蒸餾水定容至1L。
A.1.4洗滌緩沖液(TBST):0.5mL吐溫-20(Tween-20)溶于1LTBS(A.1.3)中。
A.1.5抽提緩沖液:稱取亞硫酸鈉(Na2SO3)0.20g溶于TBS(A.1.3)中,定容至100mL。
A.1.6封閉緩沖液:稱取脫脂奶粉0.50g,分別量取曲拉通(Triton)X-1000.5mL和TBS(A.1.3)
25mL。先將脫脂奶粉溶于少量TBS(A.1.3)中,再用TBS(A.1.3)定容至25mL,加入TritonX-100
混合均勻,現(xiàn)配現(xiàn)用。
A.1.7抗體緩沖液:稱取脫脂奶粉1.00g,量取TBS(A.1.3)50mL。先將脫脂奶粉溶解于少量TBS
(A.1.3)中,再用TBS(A.1.3)定容至50mL。
A.1.8底物緩沖液:分別稱取三羥甲基氨基甲烷6.10g、氯化鈉2.90g、氯化鎂(MgCl2?6H2O)
0.50g,溶于400mL蒸餾水中,用濃鹽酸調(diào)pH值至9.5,定容至500mL。
A.1.9氯化硝基四氮唑藍(lán)(NBT)儲(chǔ)備液:稱取0.04gNBT溶于1.2mL70%N,N-二甲基甲酰胺(DMF)
中,-20℃避光保存?zhèn)溆谩?/p>
A.1.105-溴-4-氯-3-吲哚基-磷酸鹽(BCIP)儲(chǔ)備液:稱取0.02gBCIP溶于1.2mLN,N-二甲基甲酰
胺(DMF)中,-20℃避光保存?zhèn)溆谩?/p>
A.1.11NBT/BCIP底物溶液:先后取100μLNBT貯備液(A.1.9)和100μLBCIP貯備液(A.1.10),加
入25mL底物緩沖液中,振搖混勻,現(xiàn)配現(xiàn)用。
A.2樣品制備
將待測葉片用清水清洗干凈,從每一樣品上中下部的葉片上各取一直徑約1cm圓片。放入研缽中,
加入3mL抽提緩沖液充分研磨,6000r/min離心2min,取上清液點(diǎn)膜。
A.3操作步驟
A.3.1點(diǎn)膜
將劃好方格(1cm×1cm)的硝化纖維素膜用TBS緩沖液處理后放在潔凈的濾紙上,每個(gè)樣品各吸
取15μL上清液滴在膜上方格的正中,室溫干燥15min~30min。同時(shí)設(shè)陽性、陰性和空白對(duì)照。根據(jù)
需要設(shè)置重復(fù)。
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A.3.2封閉
將干燥后的膜浸入封閉緩沖液中,室溫下?lián)u床振蕩1h,轉(zhuǎn)速為50r/min。
A.3.3與一抗反應(yīng)
將膜置于用抗體緩沖液稀釋至工作濃度的病毒特異性抗體溶液中,室溫下?lián)u床振蕩10h~12h,轉(zhuǎn)
速為50r/min。
A.3.4洗膜
用洗滌緩沖液洗膜4次,每次搖床振蕩3min,轉(zhuǎn)速為80r/min。
A.3.5與二抗反應(yīng)
用濾紙將膜表面的溶液吸干,將膜放入用抗體緩沖液稀釋至工作濃度的堿性磷酸酶標(biāo)記的抗體溶液
中,室溫下?lián)u床振蕩1h,轉(zhuǎn)速為50r/min。
A.3.6洗膜
洗滌4次,方法同A.3.4。
A.3.7顯色
用濾紙將膜表面的溶液吸干,將膜置于NBT/BCIP底物溶液中,避光緩慢搖動(dòng)。
A.3.8終止反應(yīng)
棄去底物溶液并用蒸餾水洗膜3次,每次搖床振蕩10min,轉(zhuǎn)速為50r/min。
A.3.9結(jié)果判斷
晾干后觀察顏色反應(yīng),陽性樣品在膜上形成紫色沉淀,陰性樣品則無顏色反應(yīng)。
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BB
附錄B
(規(guī)范性附錄)
指示植物檢測法
B.1繁育指示植物
在防蟲條件下盆栽巴西牽牛(Ipomoeasetosa),至1~2片真葉時(shí)嫁接。
B.2嫁接
以待測樣品的莖蔓為接穗,巴西牽牛為砧木,在巴西牽牛的莖部(子葉處)斜切,將待檢樣品底端
削成楔型,插入砧木的切口內(nèi),用封口膜扎緊,置25℃~30℃防蟲網(wǎng)室內(nèi),嫁接15d~30d后觀察記
載癥狀。每個(gè)樣品重復(fù)至少3次(3株),同時(shí)設(shè)陽性和陰性對(duì)照。
B.3結(jié)果判斷
根據(jù)巴西牽牛是否表現(xiàn)花葉、葉片扭曲、明脈、黃化以及植株矮化等癥狀,確定是否帶毒。所有嫁
接的巴西牽牛植株均沒有表現(xiàn)任何病毒病癥狀,樣品為陰性;只要有1株表現(xiàn)病毒病癥狀,該樣品判斷
為陽性。
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CC
附錄C
(規(guī)范性附錄)
聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)檢測法
該方法用于檢測甘薯卷葉病毒(SPLCV)。
C.1試劑及緩沖液配制
先用按C.1.1~C.1.6配方配置50倍的濃貯存液,使用時(shí)再用無菌蒸餾水稀釋至工作濃度。
C.1.1TAE電泳緩沖液:稱取三羥基甲基氨基甲烷(Tris)242.0g、冰乙酸57.1mL、Na2EDTA?2H2O
37.2g,用氫氧化鈉調(diào)pH值至8.5,滅菌雙蒸水定容至1L。
C.1.2溴化乙錠(EB)溶液:稱取溴化乙錠20.00mg溶于20mL滅菌雙蒸水中。
C.1.31.0%瓊脂糖凝膠板:稱取1.00g瓊脂糖加入100mLTAE電泳緩沖液中,在微波爐中加熱至瓊脂
糖融化,溫度降至50℃~60℃時(shí),加溴化乙錠溶液(EB)5μL,搖勻,倒入電泳槽中均勻鋪板,凝固
后取下梳子使用。
C.1.4CTAB緩沖液:稱取CTAB(十六烷基三甲基溴化銨)20.00g、NaCl81.80g、EDTA5.80g和
Tris12.10g,溶于1L蒸餾水中,用HCl調(diào)pH值至8.0,高溫滅菌后加入PVP(聚乙烯吡咯烷酮K30)
10.00g。
C.1.5TE緩沖液:稱取EDTA0.30g和Tris1.20g,溶于1L蒸餾水中,用HCl調(diào)pH值至8.0,高溫滅菌。
C.1.6加樣緩沖液:稱取EDTA0.88g、溴酚藍(lán)0.05g,量取丙三醇36mL,溶于100mL蒸餾水中,
用氫氧化鈉調(diào)pH值至7.0。
C.2DNA提取-CTAB法
預(yù)熱(60℃)CTAB緩沖液(C.1.4)。取0.5g新鮮植物材料,于液氮中研磨成粉,把粉末倒入盛有
預(yù)熱的600μLCTAB緩沖液(C.1.4)的1.5ml的eppendorf管中,再加入20μL巰基乙醇,輕輕混勻;
60℃保溫1h,其間搖動(dòng)幾次;加入等體積的苯酚/氯仿/異戊醇(25:24:1),輕輕混勻,室溫下4500r/min
離心10min;將上清液轉(zhuǎn)入另一離心管中,加入2/3體積的異丙醇,小心混勻后-20℃放置30min以上,
可見DNA絮狀沉淀;10000r/min離心10min,棄去上清液;沉淀加清洗緩沖液(70%乙醇,100mmol/L
醋酸銨)漂洗2~3次,10000r/min離心10min,沉淀風(fēng)干后溶于50μLTE緩沖液(C.1.5)。開展后續(xù)
試驗(yàn)或-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>
C.3PCR
C.3.1引物
上游引物BM-V:5ˊ-KSGGGTCGACGTCATCAATGACGTTRTAC-3ˊ,
下游引物BM-C:5ˊ-AARGAATTCATKGGGGCCCARARRGACTGGC-3ˊ。
C.3.2PCR擴(kuò)增
PCR反應(yīng)體系為:滅菌重蒸水36.7μL,dNTPs(2.5mmol/L)4μL,10×ExTaqBuffer(含MgCl2)
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5μL,上游引物BM-V(10μmol/L)和下游引物BM-C(10μmol/L)各1μL,ExTaqDNA聚合酶(5U/μL)
0.3μL,模板DNA2μL。PCR反應(yīng)條件為:94℃3min,接著進(jìn)行35個(gè)循環(huán),條件為94℃1min、
55℃1min和72℃3min,最后72℃延伸10min。
C.3.3PCR產(chǎn)物的電泳檢測
制備1.0%瓊脂糖凝膠板(C.1.3)。在電泳槽中加入TAE電泳緩沖液(C.1.1)。每個(gè)樣品取10μLPCR
產(chǎn)物與加樣緩沖液混合后,加入凝膠孔進(jìn)行電泳。恒壓(120V~150V)下電泳20min~30min,經(jīng)EB
染色后,將凝膠放到凝膠成像系統(tǒng)上觀察結(jié)果。
C.3.4試驗(yàn)成立的條件
PCR產(chǎn)物經(jīng)電泳檢測,陽性對(duì)照在預(yù)期大?。?800bp)的位置出現(xiàn)特異性條帶,同時(shí),陰性對(duì)照和
空白對(duì)照均沒有出現(xiàn)預(yù)期大小的目的條帶。
C.3.5結(jié)果判定
應(yīng)用本標(biāo)準(zhǔn)的檢測方法對(duì)待檢樣品進(jìn)行檢測,如果在2800bp對(duì)應(yīng)位置出現(xiàn)特異性條帶,則判定樣
品為SPLCV病毒陽性,否則判定樣品為該病毒陰性。
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DD
附錄D
(規(guī)范性附錄)
反轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(RT-PCR)檢測法
該方法用于檢測甘薯褪綠矮化病毒(SPCSV)。
D.1試劑及緩沖液配制
D.1.1DEPC水:取焦碳酸二乙酯(DEPC)50μL加至100mL滅菌蒸溜水中,室溫放置10h~12h,
121℃高溫滅菌15min,分裝到DEPC(D.1.1)處理過的離心管中。
D.1.2引物溶液:用DEPC水(D.1.1)將上、下游引物分別配制成濃度為10μmol/L的溶液。
D.1.3TAE電泳緩沖液、1.0%瓊脂糖凝膠板和溴化乙錠(EB)溶液:TAE電泳緩沖液、溴化乙錠(EB)
溶液和1.0%瓊脂糖凝膠板配制方法分別同附錄C.1.1、C.1.2和C.1.3。
D.2RNA提取-Trizol法
稱取0.1g葉片放于研缽中,加液氮充分研磨成粉,將粉末迅速轉(zhuǎn)入到無RNase的無菌1.5mL離心
管中,加入1mLTrizol迅速振蕩混勻;4℃12000r/min,離心5min;取上清液,加入200μL氯仿,
混勻,室溫放置15min;4℃,12000r/min,離心15min;吸取上層水相至新的無菌1.5mL離心管中,
加入0.5mL異丙醇,混勻,室溫放置10min;4℃,12000r/min,離心10min,棄上清液,留沉淀;
加入1mL75%乙醇,溫和振蕩離心管,懸浮沉淀;4℃,12000r/min,離心5min,棄上清液,將離心
管倒置于滅菌濾紙上,自然干燥;加入25-200μLDEPC水(D.1.1)溶解沉淀,即得到總RNA。
D.3RT-PCR
D.3.1引物
上游引物CSV70P1:5ˊ-GACGGKGGTACKATGAARGTCC-3ˊ,
下游引物CSV70P2:5ˊ-GGCTCACAAACHGAYTTCATAAACAT-3ˊ。
D.3.2反轉(zhuǎn)錄
反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)體系為:dNTPs(10mmol/L)1μL,MgCl2(25mmol/L)1μL,5×AMV緩沖液2μL,
AMV(5U/μL)0.5μL,RNase抑制劑(40U/μL)0.25μL,模板核酸5μL,下游引物CSV70P2(10μmol/L)
0.5μL。反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)條件為:42℃50min,99℃5min。
D.3.3PCR擴(kuò)增
PCR反應(yīng)體系為:滅菌重蒸水33.7μL,dNTPs(2.5mmol/L)4μL,10×ExTaqBuffer(含MgCl2)
5μL,上游引物CSV70P1(10μmol/L)和下游引物CSV70P2(10μmol/L)各1μL,ExTaqDNA聚合酶
(5U/μL)0.3μL,cDNA5μL。PCR反應(yīng)條件為:94℃3min,接著進(jìn)行35個(gè)循環(huán),條件為94℃30s、
55℃30s和72℃50s,最后72℃延伸10min。
D.3.4PCR產(chǎn)物的電泳檢測
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制備1.0%瓊脂糖凝膠板(C.1.2)。在電泳槽中加入1×TAE緩沖液。每個(gè)樣品取10μLPCR產(chǎn)物與
加樣緩沖液混合后,加入凝膠孔進(jìn)行電泳。恒壓(120V~150V)下電泳20min~30min,經(jīng)EB染色后,
將凝膠放到凝膠成像系統(tǒng)上觀察結(jié)果。
D.3.5試驗(yàn)成立的條件
PCR產(chǎn)物經(jīng)電泳檢測,陽性對(duì)照在預(yù)期大小(431bp)的位置出現(xiàn)特異性條帶,同時(shí),陰性對(duì)照和
空白對(duì)照均沒有出現(xiàn)預(yù)期大小的目的條帶。
D.3.6結(jié)果判定
應(yīng)用本標(biāo)準(zhǔn)的檢測方法對(duì)待檢樣品進(jìn)行檢測,如果在431bp對(duì)應(yīng)位置出現(xiàn)特異性條帶,則判定樣品
為SPCSV病毒陽性,否則判定樣品為該病毒陰性。
_________________________________
10
DB41/T987-2014
目次
前言................................................................................II
1范圍..............................................................................1
2術(shù)語和定義........................................................................1
2.1脫毒組培苗....................................................................1
2.2擴(kuò)繁苗........................................................................1
2.3脫毒種薯(苗)................................................................1
2.4原原種........................................................................1
2.5原種..........................................................................1
2.6大田用種......................................................................1
2.7允許帶毒率....................................................................2
2.8允許病毒顯癥率................................................................2
3檢測對(duì)象..........................................................................2
4抽樣..............................................................................2
4.1組培苗抽樣....................................................................2
4.2田間抽樣......................................................................2
5檢測方法..........................................................................2
5.1硝酸纖維素膜酶聯(lián)免疫吸附測定(NCM-ELISA)檢測法...............................2
5.2指示植物檢測法................................................................3
5.3聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)檢測法...................................................3
5.4反轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(RT-PCR)檢測法..........................................3
6脫毒種薯(苗)的檢測程序及質(zhì)量要求................................................3
6.1脫毒組培苗....................................................................3
6.2原原種........................................................................3
6.3原種..........................................................................3
6.4大田用種......................................................................3
附錄A(規(guī)范性附錄)硝酸纖維素膜酶聯(lián)免疫吸附測定(NCM-ELISA)檢測法.................4
附錄B(規(guī)范性附錄)指示植物檢測法..................................................6
附錄C(規(guī)范性附錄)
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