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文檔簡介
維生素C原料藥、片劑、注射劑含量測定具體方案一、維生素C原料藥含量測定具體方案碘量法:1.原理:維生素C具有還原性,可被不同氧化劑定量氧化,可用氧化還原法測定含量。2.儀器與材料:儀器:吸量管(25mL)、安全吸球、容量瓶(100mL)、燒杯(100mL,2個)、電磁加熱攪拌器、磁攪拌子、滴定管(25mL)、錐形瓶(125mL,2個)材料:市售維生素C、碘化鉀(potassiumiodide,KI)、0.025M碘酸鉀(potassiumiodate,KIO3)、1M鹽酸(hydrochloricacid,HCl)、2%淀粉水溶液(starch)。3.方法:維生素C原料的含量測定取本品約0.2g→精密稱定→加新沸過的冷水100ml與稀醋酸10ml使溶解→加淀粉指示液1ml→立即用碘滴定液(0.1mol/L)滴定→顯藍色并在30秒鐘內(nèi)不褪。4.說明:(1)維生素C與碘的反應(yīng)摩爾比是1:2,每1ml碘滴定液(0.1mol/L)相當(dāng)于8.806mg的維生素C。二..維生素C片劑含量測定具體方案紫外分光光度法維生素C(VitC)又名抗壞血酸,可降低毛細血管通透性,降低血脂,增強機體的抵抗能力,并有一定的解毒功能和抗組胺作用[1]。臨床主要用于壞血病、急慢性中毒、心肌炎、慢性肝炎等病癥。對于其含量測定,縱觀各種質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)均采用2,6-二氯吲哚酚滴定法等滴定分析法,該方法簡便、快速、準(zhǔn)確,中國藥典(2000年版)也采用碘量法。雖然該法對于維生素C原料藥的測定結(jié)果比較滿意,但對于制劑中維生素C含量的測定結(jié)果就不甚滿意了。由于維生素C易被空氣中的氧所氧化,再加上制劑輔料對測定的干擾,測定前必須先做處理。采用紫外分光光度法測定維生素C時,存在于維生素C或復(fù)合維生素制劑中的輔料一般不對測定產(chǎn)生干擾[2]。所以本法既可以測定維生素C各種制劑及復(fù)合維生素片劑,也可以測定多種飲料中的維生素C的含量。1.儀器與試劑
UV-260紫外分光光度計,VitC對照品及VitC片(規(guī)格:50mg)均由河南某藥廠提供,硫酸溶液(pH=6)。2實驗操作
2.1標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制精密稱取VitC對照品0.05g溶于100ml硫酸溶液,再稀釋成一系列不同濃度的對照品溶液(0~14μg/ml),分別測出其吸光度。然后以濃度為橫坐標(biāo),以相應(yīng)的吸光度為縱坐標(biāo)繪制出標(biāo)準(zhǔn)曲線。該曲線是經(jīng)過原點的一條直線,可求出該曲線的斜率。
2.2樣品測定取VitC20片,精密稱定,研細,精密稱出適量(相當(dāng)于VitC50mg),置于100ml量瓶中,加硫酸溶液溶解并稀釋至刻度,濾過,精密量取續(xù)濾液2ml置于另一100ml量瓶中,加硫酸溶液稀釋至刻度,測出其吸光度A樣。由標(biāo)準(zhǔn)曲線查出樣品的濃度C樣品[3]。
2.3結(jié)果計算根據(jù)精密稱出的樣品的質(zhì)量、溶解及稀釋的體積可求出C樣。
VitC含量=C樣品/C樣或VitC含量=A樣/K×C樣
注:K為標(biāo)準(zhǔn)曲線的斜率。
3討論
維生素C的還原能力強而易被氧化,特別是在堿性溶液中更易被氧化。另外在堿性溶液或強酸性溶液中還能進一步發(fā)生水解。因此,選擇硫酸溶液使成弱酸性。
測定時溶液pH的選擇:維生素C的紫外最大吸收波長與溶液的pH值有著密切關(guān)系。在pH=2.0時,溶液的最大吸收波長在245nm;在pH=12時,溶液的最大吸收波長在300nm;在pH=5~10范圍時,溶液的最大吸收波長在267nm,況且在pH=6.0時吸收度值最大。所以,選擇測定溶液的pH=6.0。
本方法對儀器的要求不是很高,適用于大批量樣品的定量分析。但是,若儀器搬動或重新校正波長、或者更換儀器時,標(biāo)準(zhǔn)曲線必須重新繪制。參考文獻:三..維生素C注射劑含量測定具體方案2,4-二硝基苯肼法1.原理總抗壞血酸包括還原型、脫氫型和二酮古樂糖酸。樣品中還原型抗壞血酸經(jīng)活性炭氧化為脫氫抗壞血酸,再與2,4-二硝基苯肼作用生成紅色脎,脎的含量與總抗壞血酸含量成正比,進行比色測定。。2.儀器恒溫箱:37±0.5℃,可見-紫外分光光度計,打碎機3.試劑:蒸餾水,試劑純度均為分析純。3.14.5mol/L硫酸:謹慎地加250ml硫酸(比重1.84)于700ml水中,冷卻后用水稀釋至1000ml。3.285%硫酸:謹慎地加900ml硫酸(比重1.84)于100ml水中。3.32%2,4-二硝基苯肼溶液:溶解2g2,4-二硝基苯肼于100ml4.5mol/L硫酸內(nèi),過濾。不用時存于冰箱內(nèi),每次用前必須過濾。3.42%草酸溶液:溶解20g草酸于700ml水中,稀釋至1000ml。3.51%草酸溶液:稀釋500ml2%草酸溶液到1000ml。3.61%硫脲溶液:溶解5g硫脲于500ml1%草酸溶液中。3.72%硫脲溶液:溶解10g硫脲于500ml1%草酸溶液中。3.81mol/L鹽酸:取100ml鹽酸,加入水中,并稀釋至1200ml。3.9活性炭:將100g活性炭加到750ml1mol/L鹽酸中,回流1~2h,過濾,用水洗數(shù)次,至濾液中無鐵離子(Fe3+)為止,然后置于110℃烘箱中烘干。3.10標(biāo)準(zhǔn)(1)抗壞血酸標(biāo)準(zhǔn)溶液(1mg/ml):溶解100mg純抗壞血酸于100ml1%草酸溶液中。(2)標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制加1g活性炭于50ml標(biāo)準(zhǔn)溶液中,搖動1min,過濾。取10ml濾液放入500ml容量瓶中,加5.0g硫脲,用1%草酸溶液稀釋至刻度??箟难釢舛葹?0μg/ml。取5,10,20,25,40,50,60ml稀釋液,分別放入7個100ml容量瓶中,用1%硫脲溶液稀釋至刻度,使最后稀釋液中抗壞血酸的濃度分別為1,2,4,5,8,10及12μg/ml。按樣品測定步驟形成脎并比色。以吸光值為縱坐標(biāo),以抗壞血酸濃度(μg/ml)為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。4.操作步驟4.1樣品制備全部實驗過程應(yīng)避光。4.2氧化處理:取25ml上述濾液,加入0.5g活性炭,振搖1min,過濾,棄去最初數(shù)毫升濾液。取10ml此氧化提取液,加入10ml2%硫脲溶液,混勻。4.3呈色反應(yīng)4.3.1于三個試管中各加入4ml稀釋液。一個試管作為空白,在其余試管中加入1.0ml2%2,4-二硝基苯肼溶液,將所有試管放入37±0.5℃恒溫箱或水浴中,保溫3h。4.3.23h后取出,除空白管外,將所有試管放入冰水中??瞻坠苋〕龊笫蛊淅涞绞覝?,然后加入1.0ml2%2,4-二硝基苯肼溶液,在室溫中放置10~15min后放入冰水內(nèi)。其余步驟同樣品。4.3.385%硫酸處理:當(dāng)試管放入冰水后,向每一試管中加入5ml85%硫酸,滴加時間至少需要1min,需邊加邊搖動試管。將試管自冰水中取出,在室溫放置30min后比色。4.3.4比色:用1cm比色杯,以空白液調(diào)零點,于500nm波長測吸光值。5.標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制(1)加2g活性炭于50mL標(biāo)準(zhǔn)溶液中,振動1min后過濾。吸取10.00mL濾液放入500mL容量瓶中加5.0g硫脲,用1%草酸溶液稀釋至刻度??箟难釢舛?0μg/mL。吸取5,10,20,25,40,50,60mL稀釋液,分別放放7個100mL容量瓶中,用1%硫脲溶液稀釋至刻度,使最后稀釋液中抗壞血酸的深度分別為1,2,4,5,8,10,12μg/mL,為抗壞血酸標(biāo)準(zhǔn)使用液。(2)分別吸取4mL各不同深度的抗壞血酸標(biāo)準(zhǔn)使用液,于7個試管中,吸取4mL水于試劑空白管,各加入1.0mL2%2,4–二硝基苯肼溶液,混勻,將全部試管放入37℃±5℃恒溫箱或恒溫水浴中,保溫3h。3h后將8個試管取出,全部放入冰水冷卻后,向每一試管中加入5mL85%硫酸,滴加時間至少需要1min,邊加邊搖,。將試管自冰水取出,在室溫放置30min后,以試劑空白管調(diào)零,并比色測定。以吸光值為縱坐標(biāo),抗壞血酸含量(mg)為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線或計算回歸方程。五、結(jié)果計算式中X——樣品中總抗壞血酸含量[mg/100g];c——由標(biāo)準(zhǔn)曲線查得或由回歸方程算得試樣測定液總抗壞血酸含量(mg);m——測定時所取濾液相當(dāng)于樣品的用量(g)。計算結(jié)果表示到小數(shù)點后兩位。6.注意事項及說明1、利用普魯士藍反應(yīng)可對鐵離子存在與否進行檢驗:將2%亞鐵氰化鉀與1%鹽酸等量混合,將需檢測的樣液滴入,如有鐵離子則產(chǎn)生藍色沉淀。2、硫脲的作用在于防止抗壞血酸的繼續(xù)被氧化和有助于脎的形成。3、加硫酸顯色后,溶液顏色可隨時間的延長而加深,因此,在加入硫酸溶液30min后,應(yīng)即立比色測定。4、檢測過程中,測定樣的吸光值不落在標(biāo)準(zhǔn)曲線上,可重新調(diào)整測定樣品的量或標(biāo)準(zhǔn)曲線的濃度范圍。5、本實驗法在1μg/ml~12μg/mL抗壞血酸范圍內(nèi)呈良好線性關(guān)系,最低檢出限為0.1μg/mL。6、本實驗適用于水果、蔬菜及其制品中總抗壞血酸的測定。7、食品分析中的總抗壞血酸是指抗壞血酸
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