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文檔簡介
這里想明確兩個概念,一個是Transwell,另一個是腫瘤細胞侵襲模型。1.Transwell關于Transwell這個詞該如何解釋,查了很多資料也未見準確的注解,我覺得可以這么理解吧,trans-這個詞根有轉移、轉運、穿過等意思,well有小室的意思,可以從字面上理解,這是一類有通透性的杯狀的裝置,根據(jù)Corning公司的Transwell說明書中的介紹,可以認為這是一種膜濾器(Membranefilters),也可認為是一種有通透性的支架(permeablesupports)。更準確地說,Transwell應該是一種實驗技術,這項技術的主要材料是Transwell小室(Transwellchamber,Transwellinsert),其外形為一個可放置在孔板里的小杯子,不同廠家對Transwell會有不同的命名,而不同型號也可有不同形狀,不同大小,根據(jù)實驗需要,可有不同選擇。但無論是何種外形,其關鍵部分都是一致的,那就是杯子底層的一張有通透性的膜,而杯子其余部分的材料與普通的孔板是一樣。這層膜帶有微孔,孔徑大小有0.1—12.0pm,根據(jù)不同需要可用不同材料,一般常用的是聚碳酸酯膜(polycarbonatemembrane)。將Transwell小室放入培養(yǎng)板中,小室內稱上室,培養(yǎng)板內稱下室,上室內盛裝上層培養(yǎng)液,下室內盛裝下層培養(yǎng)液,上下層培養(yǎng)液以聚碳酸酯膜相隔。我們將細胞種在上室內,由于聚碳酸酯膜有通透性,下層培養(yǎng)液中的成分可以影響到上室內的細胞,從而可以研究下層培養(yǎng)液中的成分對細胞生長、運動等的影響。應用不同孔徑和經(jīng)過不同處理的聚碳酸酯膜,就可以進行共培養(yǎng)、細胞趨化、細胞遷移、細胞侵襲等多種方面的研究。下面參考guxuefeng戰(zhàn)友和cosmosci戰(zhàn)友的帖子具體來談談孔徑的選擇,當然不同細胞其體積不同,具體選擇時要考慮到細胞大小。這里主要談幾種大家常用的實驗:.共培養(yǎng)體系:小于3.0um孔徑條件下,細胞不會遷徙通過,因此,若研究不涉及細胞運動能力,不需要細胞穿過聚碳酸酯膜,則應選擇3.0pm以下孔徑。常用0.4、3.0pm。我們實驗室用的是0.4pm。將細胞A種于上室,細胞B種于下室,可以研究細胞B分泌或代謝產(chǎn)生的物質對細胞A的影響。.趨化性實驗可用5.0、&0、12.0pm膜,上室細胞可穿過聚碳酸酯膜進入下室,計數(shù)進入下室的細胞量可反映下室成分對上室細胞的趨化能力。細胞B對細胞A的趨化作用:將細胞A種于上室,細胞B種于下室,可以研究細胞B分泌或代謝產(chǎn)生的物質對細胞A的趨化作用。趨化因子對細胞的趨化作用:將細胞種于上室,下室加入某種趨化因子,可研究該趨化因子對細胞的趨化作用。(3).腫瘤細胞遷移實驗常用&0、12.0pm膜,上室種腫瘤細胞,下室加入FBS或某些特定的趨化因子,腫瘤細胞會向營養(yǎng)成分高的下室跑,計數(shù)進入下室的細胞量可反映腫瘤細胞的遷移能力。(4).腫瘤細胞侵襲實驗常用&0、12.0pm膜,原理與腫瘤細胞遷移實驗類似。上室種腫瘤細胞,下室加入FBS或某些特定的趨化因子,腫瘤細胞會向營養(yǎng)成分高的下室跑,但與腫瘤細胞遷移實驗不同的是,聚碳酸酯膜上室側鋪上一層基質膠,用以模仿體內細胞外基質,細胞欲進入下室,先要分泌基質金屬蛋白酶(MMPs)將基質膠降解,方可通過聚碳酸酯膜。計數(shù)進入下室的細胞量可反映腫瘤細胞的侵襲能力。以上是Transwell的一些常見的應用2.步驟2.1Transwell小室制備2.1.1無基質膠Transwell小室制備包被基底膜:用50mg/LMatrigel1:8稀釋液包被Transwell小室底部膜的上室面,4°C風干。如果需要在下室面鋪FN的話,可將200ul槍頭的尖端剪掉,吸取FN均勻涂抹在小室的下面。用膠原(collagen)的話,一般配成0.5mg/ml,直接用槍吸了涂在膜上。水化基底膜:吸出培養(yǎng)板中殘余液體,每孔加入50ul含10g/LBSA的無血清培養(yǎng)液,37C,30min。另有tianjin_glioma戰(zhàn)友提供的方法:在上室的聚碳酸酯膜上加入稀釋后的Matrigel(3.9ug/ul)60-80pl(注意體積不可太大,以剛把聚碳酸酯膜浸濕為最好),置37C30min使Matrigel聚合成凝膠。2.1.2有基質膠的Transwell小室制備Chemicon公司的ECM550系列說明書要求,將小室放入培養(yǎng)板中,在上室加入300pl預溫的無血清培養(yǎng)基,室溫下靜置15-30min,使基質膠再水化。再吸去剩余培養(yǎng)液。2.2制備細胞懸液制備細胞懸液前可先讓細胞撤血清饑餓12-24h,進一步去除血清的影響。但這一步并不是必須的。消化細胞,終止消化后離心棄去培養(yǎng)液,用PBS洗1—2遍,用含BSA的無血清培養(yǎng)基重懸。調整細胞密度至1—10x105,個人認為不要超過5x105。具體實驗時采用密度要自己摸索,因為不同細胞,其侵襲能力是不同的。個人經(jīng)驗,細胞量過多,穿過膜的細胞會過多過快,如果最后用計數(shù)法統(tǒng)計結果的話將難以計數(shù);而過少的話,可能還沒到檢測的時間點,所有的細胞都已穿過,因此最少也要保證在收樣的時候,上室內還要有一定量的細胞存在。個人認為,對照組和處理盡量不要分開計數(shù),因為細胞數(shù)目的差異會嚴重影響實驗結果。如果需要對細胞預處理而不得不分開計數(shù),那么計數(shù)一定要多重復幾次,力求準確,盡量保證對照組和處理組細胞密度一致。2.3接種細胞取細胞懸液100—200卩1加入Transwell小室,不同公司的、不同大小的Transwell小室對細胞懸液量有不同要求,請參考說明書。24孔板小室一般200卩l(xiāng)。24孔板下室一般加入500pl含F(xiàn)BS或趨化因子的培養(yǎng)基,不同的培養(yǎng)板加的量有不同要求,具體請參考說明書。這里要特別注意的是,下層培養(yǎng)液和小室間常會有氣泡產(chǎn)生,一旦產(chǎn)生氣泡,下層培養(yǎng)液的趨化作用就減弱甚至消失了,在種板的時候要特別留心,一旦出現(xiàn)氣泡,要將小室提起,去除氣泡,再將小室放進培養(yǎng)板。培養(yǎng)細胞:常規(guī)培養(yǎng)12—48h(主要依癌細胞侵襲能力而定)。時間點的選擇除了要考慮到細胞細胞侵襲力外,處理因素對細胞數(shù)目的影響也不可忽視。以我的課題為例,我使用的藥物不僅會抑制腫瘤細胞侵襲力,還對細胞增殖有明顯抑制。我選擇的藥物濃度是用MTT篩選出的72h的IC50。用這個濃度處理細胞,24h內對細胞增殖并無明顯抑制,但24h后,抑制作用就開始出現(xiàn)了。所以,用這個濃度來做Transwell,處理時間也必須限定在24h內,否則一旦藥物抑制了細胞增殖或者誘導出凋亡,使處理組細胞數(shù)目少于對照組,那么就難以肯定穿過膜的細胞比對照組少,究竟是由于侵襲被抑制引起,還是處理后細胞數(shù)目本身就比對照組少而引起的了。時間過長不可以,同樣,過短也不行,因為細胞內會有一定量的MMPs儲存,短時間內可能侵襲能力不會有太大改變。同時從藥物被吸收進去,進而發(fā)揮作用,影響MMPs表達,到最后釋放到培養(yǎng)基中,還需要一個過程。時間點的選擇可盡量長點,也可選擇多個時間點研究時間依賴效應,但前提是這個時間范圍內細胞數(shù)目不能有明顯變化。另外,我看到細胞在小室內的形態(tài)不是正常培養(yǎng)貼壁的形態(tài),而是圓形的,仍是懸浮時的形態(tài),不過會聚集成團,所以看到細胞不正常貼壁也不要緊張,是正?,F(xiàn)象在培養(yǎng)過程中,膜下會逐漸有少量小氣泡產(chǎn)生,這是正?,F(xiàn)象,可不予處理,但我遇到過培養(yǎng)一段時間后,膜下出現(xiàn)了大氣泡,幸虧及時發(fā)現(xiàn),否則后果將非常嚴重。因此,個人建議,最好接種細胞后1—2h把培養(yǎng)板從培養(yǎng)箱里拿出來看看,確信沒有大氣泡產(chǎn)生。2.4結果統(tǒng)計檢測穿過的細胞數(shù)有兩種方法:2.4.1直接計數(shù)法2.4.1.1“貼壁”細胞計數(shù)這里所謂的“貼壁”是指細胞穿過膜后,可以附著在膜的下室側而不會掉到下室里面去。通過給細胞染色,可在鏡下計數(shù)細胞①用棉簽擦去基質膠和上室內的細胞染色:常用的染色方法有結晶紫染色、臺肦藍染色、Giemsa染色、蘇木精染色、伊紅染色等。個人推薦采用0.1%結晶紫染色,這種方法有如下優(yōu)勢:(1).不需要固定細胞,直接染色即可。(2).配制簡單方便。(3).染色后可以用33%醋酸脫色,將結晶紫完全洗脫下來,洗脫液可在酶標儀上570nm測其OD值,間接反映細胞數(shù)。個人認為這是結晶紫染色最大的優(yōu)勢所在。因為,雖然經(jīng)過準確的細胞計數(shù),往往穿過膜的細胞數(shù)仍難以準確控制,可能某一批實驗穿過的細胞會特別多,以致細胞成堆,這種情況下就難以計數(shù)了,這種情況下就可以用醋酸脫色后用酶標儀檢測。使用結晶紫染色要注意,染色前要將膜風干,否則可能會染不上。細胞計數(shù):我們使用的是LeicaDC300F正置顯微鏡進行觀察和拍照,把Transwell小室反過來底朝上就可清楚看到小室底膜上下室側附著的細胞。也有不少人用手術刀將膜切下后染色,再貼在玻片上,滴二甲苯,再蓋上蓋玻片,就可以長期保存,但是這樣做小室就成了一次性的了,未免有點浪費。取若干個視野計數(shù)細胞個數(shù)。論壇里一般采用3-5個視野,也有人用10個,都是隨機選取,個人認為這樣選擇的視野帶有很大的偶然性,也會摻進人為影響,特別是計數(shù)視野較少的時候。我選取16個視野,不是隨機選擇,而是有固定的位置。我們使用的顯微鏡所看到的視野的直徑剛好是Chemicon公司的ECM550系列小室底面膜的直徑的1/4。不同廠家不同型號的小室,膜的面積不盡相同,但個人認為,拍照時還是應當選取固定的位置,并選擇盡可能多的視野。2.4.1.2“非貼壁”細胞計數(shù)由于某些細胞自身的原因或某些膜的關系,有時細胞在穿過膜后不能附著在膜上,而是掉進下室。這種情況我沒有遇到過,根據(jù)論壇里提供的經(jīng)驗,可以收集下層培養(yǎng)液,用流式細胞儀計數(shù)細胞量,也可用細胞計數(shù)的方法直接在鏡下計數(shù),個人認為MTT應該也是可以用的,有興趣的可以試試看。2.4.1間接計數(shù)法間接計數(shù)法主要用于穿過細胞過多,而無法通過計數(shù)獲得準確的細胞數(shù)所采用的方法,與常用的MTT實驗是同樣的原理。2.4.1.1MTT法用棉簽擦去基質膠和上室內的細胞24孔板中加入500卩1含0.5mg/mlMTT的完全培養(yǎng)基,將小室置于其中,使膜浸沒在培養(yǎng)基中,37°C4h后取出。24孔板中加入500卩1DMSO,將小室置于其中,使膜浸沒在DMSO中,振蕩10min,使甲臜充分溶解。取出小室,24孔板于酶標儀上測OD值。2.4.1.1熒光試劑檢測這類方法一般是與Transwell小室一起出售的,其原理與MTT法類似,是用一種熒光染料染細胞,再將細胞裂解,檢測熒光值。Chemicon的ECM554即屬于這類。2.4.1.1結晶紫檢測上文已說過,這里不再贅述,原理與MTT法也是類似的。但結晶紫染色還有個優(yōu)點,就是染色和脫色的過程并不影響膜上細胞,在脫色后還可重新染色。我的課題涉及Transwell侵襲實驗和Transwell遷移實驗,其他方面的Transwell應用我不太清楚,因此這里主要談談Transwell侵襲實驗。1.實驗用品:①Transwell小室:多種廠家可提供,論壇里常用的是Costar、Corning、BD生產(chǎn)的小室,我們實驗室用的是Chemicon公司的ECM550系列,另有Boydenchamber、Millipore公司的millicell和雕弓滿月射天狼戰(zhàn)友介紹的Thincert。這些廠家提供的小室,有的已鋪好基質膠,買來就可以用,很方便,但也比較貴,我們實驗室用的Chemicon公司的ECM550系列是已經(jīng)鋪好膠的,質量很好,但是非常貴,24孑L板配套的小室,每個價格約130元,不推薦給大家。BD也有已包被好的,價格不清楚。Coster和Corning公司生產(chǎn)的小室,是論壇里比較常用的,好像是要自己鋪膠,但據(jù)說每個小室成本只有40左右,應該比較適合中國國情。下面是一些戰(zhàn)友提供的價格,具體建議大家聯(lián)系代理商咨詢。linanping1979戰(zhàn)友提供的價格:coster的24孑L板的transwell的價格是456元RMB,8pm,用于腫瘤的侵襲實驗。iceyxy戰(zhàn)友提供的價格:Millipore的8pm的50個1760RMB,0.4pm的2000多,是一次性的。梅林戰(zhàn)友提供的BD價格:240RMB—塊(6.5um,24孔,12instert),好像是沒膠的。liguofan說國產(chǎn)的boyden30塊一個。jjyy提供的價格是:corningcatNo.3422.6.5mmtranswellwith8.0umprorepolycarbonatemembraneinsert,Qty48,950人民幣不到。平均每個20元不到。Transwell小室按照公司的要求,都是一次性使用的。不過其實洗洗泡泡還是可以重復用的。我用的Chemicon公司的ECM554,用完后擦去基質膠,再用胰酶和75%酒精泡,可以把膜洗得很干凈,用前用紫外里外都照30min。sword01戰(zhàn)友提供的處理方法:用棉簽輕輕擦去膠和反面細胞,清水沖洗,超聲清洗,低擋,30min,清水3x5min,蒸餾水3x5min,室溫涼干,用前紫外線小室正面3h,反面6h,微波,低火10minx2。因為我買的是鋪好膠的,所以沒買Matrigel,二次利用的小室只用來做不需要鋪膠的遷移實驗。以前的ChemiconECM550系列,膜很結實,擦不壞,可以反復用很多次,但現(xiàn)在的膜已經(jīng)改用一種很薄很脆的材料,一般只能重復用一次,真黑?。『芏鄳?zhàn)友說Costar和Corning也是可以重復用的,大家可以試試。本人沒見過,有興趣的可以自己研究一下。另外,根據(jù)論壇戰(zhàn)友提供的信息,osmonic公司有專用的膜出售,鼎國生物代理。Transwell小室用過后,可把原來的膜切下,貼上osmonic公司的膜,這樣又可以用了,不過我沒用過,有興趣的可以試試。maojianwen戰(zhàn)友的使用方法:trasnwell小室做一次后,將原來的膜去掉,重新泡酸,泡酒精,使用前照紫外,然后用女士用指甲油(注意用無色較稀的)將osmonic公司的膜貼上,剪掉多余的邊緣。再照紫外。②上層培養(yǎng)液:上層培養(yǎng)液采用無血清培養(yǎng)基,為維持滲透壓,需加入0.05%-0.2%BSA。③細胞:值得注意的是,有侵襲能力的細胞才可用于Transwel1侵襲實驗。建議實驗前先用酶譜法檢測MMPs的表達,特別是MMP-2的表達。如果不清楚細胞MMPs的表達情況,就盲目進行Transwell侵襲實驗,可能會造成不必要的浪費,一次Transwell侵襲實驗花錢少則數(shù)百,多則數(shù)千,并不是筆小數(shù)目,還是小心為妙。另外,為了讓實驗結果更明顯,可先撤血清讓細胞饑餓12-24h,再進行實驗。基質膠:常用的是人工重構基底膜材料Matrigel,主要成分為層黏連蛋白和IV型膠原,生產(chǎn)廠家有BD、美國CollaborativeRsearch公司等。CaoY戰(zhàn)友的帖這么說的:Matrigel是BD公司生產(chǎn)的,是一種細胞外基質,4度時是液體,在37度會逐漸凝固成膠狀,不可逆。同樣的東西在sigma叫ECM。zhangyongl036戰(zhàn)友提供的價格:BD公司的matrigel1500左右。如果購買的小室是已經(jīng)鋪好基質膠的,那么Matrigel就不需要購買了。下層培養(yǎng)液:下層常用含5%-10%FBS的培養(yǎng)基,具體濃度根據(jù)細胞侵襲力而定,侵襲力弱的細胞可適當提高FBS濃度。下層也可用趨化因子,有戰(zhàn)友將纖維粘連蛋白加入下層培養(yǎng)液作為趨化因子,但個人認為,F(xiàn)BS仍是最合適的。細胞培養(yǎng)板:常用于Transwell侵襲實驗的細胞培養(yǎng)板有6孑L板、12孑L板、24孔板等,以24孔最常用。細胞培養(yǎng)板沒什么特殊要求,普通的細胞培養(yǎng)板就可以。但要注意,細胞培養(yǎng)板應當與購買的Transwell小室相配套。此外,膜的下室面可涂上纖維粘連蛋白(fibronectin,FN,Sigma有售),這樣做的目的是使穿過膜的細胞更好地附著在膜上,也可用膠原(collagen)或明膠(gelatin)。很多戰(zhàn)友認為這不是必須的,而且我也是不涂的,細胞照樣貼壁很好。如果貼壁不好的話可以試試看。linanping1979戰(zhàn)友認為,如果培養(yǎng)時間很長(>24h),細胞還是會掉到下室里面去,所以有條件的話,最好還是在膜下層涂上FN。另外,值得一提的是,膜下層涂上FN還有一定的趨化作用。zhangyong1036戰(zhàn)友提供的價格:sigma的fibronectin,價格在1500左右。1.Transwell腫瘤細胞遷移實驗過程與Transwell侵襲實驗基本一致,不同的只是不需要鋪Matrigel。個人認為,由于沒有基質膠的阻擋,細胞穿過膜的速度較侵襲實驗明顯加快,所以細胞量要更大。我做侵襲實驗的細胞密度是1x105,而遷移實驗的密度是1x106。另外,下層培養(yǎng)液的FBS濃度也可適當下調,我做侵襲實驗的濃度是5%,遷移實驗的濃度是2.5%。2?Transwell上皮細胞培養(yǎng)步驟做了一段時間的原代細胞培養(yǎng),把經(jīng)驗拿出來跟大家分享一下吧,請有關戰(zhàn)友共同探討:.將雄性wistar大鼠麻醉,開胸,將氣管取出,置于4°C含0.1%胰蛋白酶XIV(Sigma),100U/ml青霉素和100ug/ml鏈霉素(Gibco-BRL)、無Ca2+、Mg2+,無血清的MEM。.用無菌的細胞刮棒刮氣管內壁,將所得溶液離心后得到游離細胞。.離心后立即用新鮮的上述MEM溶液(含10%胎牛血清)清洗3次,以中和胰蛋白酶,再用含5%胎牛血清、100U/ml青霉素和100ug/ml鏈霉素的LHC-8medium(Biofluids)沖洗一次。.沖洗過后,將得到的細胞懸液用臺盼蘭測定活力,若存活率大于90%,則將細胞以106/cm2密度接種于可通透的多聚碳濾膜上(12mmSNAPWELL,Costar),以37°C5%CO2-95%空氣含5%胎牛血清(Gibco-BRL)and100U/ml青霉素and1
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