實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)概述課件_第1頁(yè)
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實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)暨南大學(xué)醫(yī)學(xué)院中心實(shí)驗(yàn)室廖繼東實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)暨南大學(xué)醫(yī)學(xué)院中心實(shí)驗(yàn)室廖繼東主要內(nèi)容實(shí)時(shí)熒光定量PCR的基本原理Chromo4介紹實(shí)時(shí)熒光定量PCR實(shí)驗(yàn)程序的建立實(shí)時(shí)熒光定量PCR的應(yīng)用主要內(nèi)容實(shí)時(shí)熒光定量PCR的基本原理主要內(nèi)容實(shí)時(shí)熒光定量PCR的基本原理Chromo4介紹實(shí)時(shí)熒光定量PCR實(shí)驗(yàn)程序的建立實(shí)時(shí)熒光定量PCR的應(yīng)用主要內(nèi)容實(shí)時(shí)熒光定量PCR的基本原理PCR技術(shù)簡(jiǎn)介PCR:polymerasechainreaction多聚酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)英文詞首字母的縮寫(xiě),是一種體外選擇性擴(kuò)增DNA或RNA片段的方法。其基本原理是依據(jù)DNA雙螺旋結(jié)構(gòu)及其半保留復(fù)制特性,用人工合成的小片段PCR技術(shù)簡(jiǎn)介PCR技術(shù)簡(jiǎn)介寡核甘酸引物與經(jīng)高溫(變性溫度)變性形成的單鏈DNA模板,在特定溫度(復(fù)性溫度)下產(chǎn)生序列特異性互補(bǔ)結(jié)合,在適當(dāng)溫度(延伸溫度)條件下,由DNA多聚酶催化使已經(jīng)結(jié)合的寡核甘酸引物沿模板序列延伸產(chǎn)生與模板序列PCR技術(shù)簡(jiǎn)介常規(guī)PCR完全互補(bǔ)的新的DNA單鏈。PCR技術(shù)自1985年由美國(guó)PE公司的Mullis等發(fā)明并推出市場(chǎng)應(yīng)用以來(lái),實(shí)現(xiàn)了小片段DNA的體外快速擴(kuò)增,為各種因DNA序列的變異、缺失以及由此導(dǎo)致的遺傳缺陷和相關(guān)疾病的研究和臨床診斷提供了強(qiáng)有常規(guī)PCR常規(guī)PCR力的手段,為各種病原體包括微生物、細(xì)菌、病毒等所致疾病的快速確診提供了技術(shù)條件,極大地促進(jìn)和加速了整個(gè)生命科學(xué)研究的進(jìn)程。常規(guī)PCR常規(guī)PCR的定量在PCR反應(yīng)中,理論上擴(kuò)增產(chǎn)物的量與起始樣本中模板的含量成正比。但受多種因素的影響,其精確定量模板的可信度明顯不足。為克服上述不足,人們?cè)O(shè)計(jì)出包括內(nèi)標(biāo)、競(jìng)爭(zhēng)、酶聯(lián)、尿苷酶降解等多種定量方法。常規(guī)PCR的定量?jī)?nèi)標(biāo)法在不同的PCR反應(yīng)管中加入已知量的內(nèi)標(biāo)模板和引物,內(nèi)標(biāo)模板可由基因工程合成或采用已知量的標(biāo)準(zhǔn)品。在樣品模板擴(kuò)增的同時(shí),內(nèi)標(biāo)模板也被擴(kuò)增。二者的擴(kuò)增產(chǎn)物可通過(guò)電泳或其它方法分離,以內(nèi)標(biāo)為對(duì)照進(jìn)行樣本模板定量。內(nèi)標(biāo)法競(jìng)爭(zhēng)法將含有一個(gè)新內(nèi)切酶位點(diǎn)的外源性模板加入PCR反應(yīng)管中,待測(cè)樣品模板與外源性模板用同一對(duì)引物進(jìn)行擴(kuò)增,經(jīng)內(nèi)切酶消化競(jìng)爭(zhēng)性模板的產(chǎn)物成為兩個(gè)片段,通過(guò)電泳等分離檢測(cè),根據(jù)已知模板的量推測(cè)未知模板的起始拷貝數(shù)。競(jìng)爭(zhēng)法酶聯(lián)免疫利用地高辛或生物素等標(biāo)記引物,擴(kuò)增產(chǎn)物被固定在固相板上特異的探針?biāo)Y(jié)合,再加入抗地高辛或生物素抗體-辣根過(guò)氧化物酶結(jié)合物,檢測(cè)酶底物顯色情況,通過(guò)內(nèi)標(biāo)-標(biāo)準(zhǔn)曲線實(shí)現(xiàn)定量檢測(cè)的目的。酶聯(lián)免疫參照物在PCR定量中的作用作為擴(kuò)增系統(tǒng)的陽(yáng)性對(duì)照;作為未知樣本定量的參比標(biāo)準(zhǔn);通過(guò)競(jìng)爭(zhēng)性作為矯正擴(kuò)增系統(tǒng)內(nèi)部的擴(kuò)增效率,使其具有可比性。(參照物按其性質(zhì)不同可分為內(nèi)標(biāo)和外標(biāo))參照物在PCR定量中的作用內(nèi)標(biāo)基因的選擇原則:內(nèi)標(biāo)基因在不同組織或者處理前后表達(dá)量不變內(nèi)標(biāo)基因的選擇一般選取GAPDH、β-actin等看家基因(GAPDH:Glyceraldehyde3-phosphatedehydrogenase,3-磷酸甘油醛脫氫酶)內(nèi)標(biāo)基因的選擇原則:內(nèi)標(biāo)基因在不同組織或者處理前后表達(dá)量不變傳統(tǒng)PCR定量方法的特點(diǎn)和不足1.定量的準(zhǔn)確度:傳統(tǒng)PCR定量方法的共同特點(diǎn)是針對(duì)PCR擴(kuò)增的最終產(chǎn)物進(jìn)行分析。因受酶活性、擴(kuò)增效率、尤其是平臺(tái)效應(yīng)等諸多因素的影響,檢測(cè)重現(xiàn)性極差,無(wú)法直接從終產(chǎn)物量推算出起始模板的精確含量。傳統(tǒng)PCR定量方法的特點(diǎn)和不足傳統(tǒng)PCR定量方法的特點(diǎn)和不足2.假陽(yáng)性污染:傳統(tǒng)PCR定量方法均依賴于各種不同類(lèi)型的PCR后處理過(guò)程,這些過(guò)程極易使數(shù)量巨大的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物飛散到實(shí)驗(yàn)室的環(huán)境中,造成待檢樣本的污染,導(dǎo)致假陽(yáng)性結(jié)果的上升。傳統(tǒng)PCR定量方法的特點(diǎn)和不足實(shí)時(shí)熒光定量PCR在PCR反應(yīng)體系中引入DNA結(jié)合熒光染料或熒光探針,對(duì)每一循環(huán)擴(kuò)增反應(yīng)產(chǎn)物DNA片段的累積情況進(jìn)行實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)記錄,通過(guò)數(shù)學(xué)模型實(shí)現(xiàn)對(duì)起始模板的定量及定性的分析。其特點(diǎn)為全封閉(污染少)、高精確、高靈敏。實(shí)時(shí)熒光定量PCR實(shí)時(shí)熒光定量與常規(guī)PCR的區(qū)別常規(guī)PCR:

通過(guò)電泳、酶聯(lián)等后處理技術(shù),對(duì)PCR擴(kuò)增反應(yīng)的終末產(chǎn)物進(jìn)行定量及定性分析。實(shí)時(shí)熒光定量PCR:通過(guò)引入DNA結(jié)合熒光染料或熒光探針,對(duì)PCR擴(kuò)增反應(yīng)過(guò)程中每一輪循環(huán)產(chǎn)物的累積進(jìn)行實(shí)時(shí)檢測(cè),從而實(shí)現(xiàn)對(duì)起始模板的定量及定性分析。三個(gè)關(guān)鍵詞:實(shí)時(shí),熒光,定量實(shí)時(shí)熒光定量與常規(guī)PCR的區(qū)別常規(guī)PCR:PCRRealtimePCRS1S2M實(shí)時(shí)熒光定量與常規(guī)PCR的區(qū)別PCRRealtimePCRS1在實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)中常用的概念熒光共振能量轉(zhuǎn)移(fluorescenceresonanceenergytransfer,FRET):在兩個(gè)不同的熒光基團(tuán)中,如果一個(gè)熒光基團(tuán)(供體)的發(fā)射光譜與另一基團(tuán)(受體)的激發(fā)光譜有一定的重疊,當(dāng)兩個(gè)基團(tuán)之間的距離足夠近(小于100?)時(shí),以供體基團(tuán)的激發(fā)波長(zhǎng)進(jìn)行激發(fā),可獲得由受體基團(tuán)發(fā)射的熒光。在實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)中常用的概念熒光共振能量轉(zhuǎn)移即:在供體基團(tuán)的激發(fā)狀態(tài)下由一對(duì)偶極子介導(dǎo)的能量直接轉(zhuǎn)移給了受體。在此過(guò)程中沒(méi)有光子的參與,是非輻射性的能量轉(zhuǎn)移過(guò)程,轉(zhuǎn)移效率與供-受體兩個(gè)基團(tuán)之間距離的6次冪倒數(shù)成正比例。在實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)中常用的概念熒光共振能量轉(zhuǎn)移在實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)中常用的概念FRET產(chǎn)生條件1.存在熒光供體和受體,而且供體的發(fā)色光譜與受體的激發(fā)光譜有重疊常用的FRET組合:CFP-YFP/CFP-dsRED/BFP-GFP/GFP-dsRED/YFP-dsRED/Cy3-Cy5/Alexa488-Alexa555/Alexa488-Cy3/FITC-TRITC/YFP-TRITC/YFP-Cy3

FRET產(chǎn)生條件1.存在熒光供體和受體,

2供體和受體的距 離足夠近:1-10nm(1-10nm為分子內(nèi)/ 間互作的距離:如蛋白質(zhì)構(gòu)象轉(zhuǎn)變、酶催 化反應(yīng)等。)——超顯微觀察3合適偶極方向

4足夠熒光壽命 無(wú)FRETFRETFRET產(chǎn)生條件2供體和受體的距 離足夠近:1-10nm無(wú)F熒光域值線(fluorescencethresholdline):背景熒光與熒光信號(hào)的分界值,可以通過(guò)標(biāo)準(zhǔn)曲線或經(jīng)驗(yàn)來(lái)設(shè)定,常設(shè)定為初始3-7個(gè)循環(huán)熒光值標(biāo)準(zhǔn)差的10倍。在實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)中常用的概念熒光域值線(fluorescencethresholdlThresholdlineC(t)valueCt值:是在PCR擴(kuò)增過(guò)程中,各反應(yīng)管的熒光信號(hào)與熒光域值線的交叉點(diǎn)所對(duì)應(yīng)的循環(huán)次數(shù)(指數(shù)擴(kuò)增的開(kāi)始階段)。在實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)中常用的概念ThresholdlineC(t)valueCt值:每個(gè)模板的Ct值與該模板的起始拷貝數(shù)的對(duì)數(shù)值存在線性關(guān)系。起始拷貝數(shù)越多,Ct值越小。用已知起始拷貝數(shù)的標(biāo)準(zhǔn)品可作出標(biāo)準(zhǔn)曲線,由此可對(duì)樣本中目標(biāo)基因的含量進(jìn)行精確計(jì)算。初始模板濃度的確定每個(gè)模板的Ct值與該模板的起始拷貝數(shù)的對(duì)數(shù)值存在線性關(guān)系。起DetermineC(t)valueforunknownInterpolatequantityofunknownusingthestandardcurveunknown104103Unknowncontains3108copiesDetermineC(t)valueforunkno用Ct值定量的意義實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法利用循環(huán)閾值(Ct)的概念,在指數(shù)擴(kuò)增的開(kāi)始階段進(jìn)行檢測(cè),此時(shí)樣品間的細(xì)小誤差尚未放大,因此該Ct值具有極好的重復(fù)性。用Ct值定量的意義相同模板在同一臺(tái)PCR儀上相同條件下重復(fù)96次擴(kuò)增的擴(kuò)增曲線圖終點(diǎn)處檢測(cè)產(chǎn)物量不恒定;Ct值則極具重現(xiàn)性

相同模板在同一臺(tái)PCR儀上相同條件下重復(fù)96次擴(kuò)增的擴(kuò)增絕對(duì)定量成為可能靈敏度高可檢測(cè)10–100個(gè)細(xì)胞中1個(gè)拷貝數(shù)量的基因低拷貝基因的檢測(cè)細(xì)小倍數(shù)差異樣品的檢測(cè)實(shí)時(shí)熒光定量PCR的優(yōu)勢(shì)絕對(duì)定量成為可能實(shí)時(shí)熒光定量PCR的優(yōu)勢(shì)線性范圍寬(6-9個(gè)數(shù)量級(jí)),無(wú)需稀釋高濃度樣品可以在一次實(shí)驗(yàn)中同時(shí)檢測(cè)定量高表達(dá)和低表達(dá)基因熒光探針使PCR產(chǎn)物檢測(cè)特異性進(jìn)一步提高全封閉無(wú)PCR后處理*幾乎沒(méi)有污染機(jī)會(huì)實(shí)時(shí)熒光定量PCR的優(yōu)勢(shì)線性范圍寬(6-9個(gè)數(shù)量級(jí)),無(wú)需稀釋高濃度樣品可以在一次相對(duì)定量和絕對(duì)定量:相對(duì)定量指的是確定樣本中靶序列相對(duì)于另一參照樣本中靶序列量的變化值,絕對(duì)定量指的是確定樣本中靶序列的拷貝數(shù)。實(shí)時(shí)熒光定量PCR的定量方法相對(duì)定量和絕對(duì)定量:相對(duì)定量指的是確定樣本中靶相對(duì)定量的方法:標(biāo)準(zhǔn)曲線法比較Ct值法絕對(duì)定量的方法:標(biāo)準(zhǔn)曲線法實(shí)時(shí)熒光定量PCR的定量方法相對(duì)定量的方法:實(shí)時(shí)熒光定量PCR的定量方法標(biāo)準(zhǔn)曲線法:制作標(biāo)準(zhǔn)曲線的標(biāo)準(zhǔn)序列的絕對(duì)量是未知的,將標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行相對(duì)稀釋制成曲線,用以計(jì)算樣本靶序列的含量,結(jié)果為樣本靶序列與標(biāo)準(zhǔn)序列的比值。相對(duì)定量方法標(biāo)準(zhǔn)曲線法:制作標(biāo)準(zhǔn)曲線的標(biāo)準(zhǔn)序列的絕對(duì)量是未知的,將標(biāo)準(zhǔn)品比較Ct法:運(yùn)用數(shù)學(xué)公式計(jì)算相對(duì)量,前提是假設(shè)每個(gè)循環(huán)增加一倍的產(chǎn)物量,在PCR反應(yīng)的指數(shù)期得到Ct值來(lái)計(jì)算起始模板的量。前提:靶基因和內(nèi)源控制物的擴(kuò)增效率基本一致。相對(duì)定量方法比較Ct法:運(yùn)用數(shù)學(xué)公式計(jì)算相對(duì)量,前提是假設(shè)每個(gè)循環(huán)增加標(biāo)準(zhǔn)曲線法:制作標(biāo)準(zhǔn)曲線的標(biāo)準(zhǔn)序列的絕對(duì)量是已知的,將標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行相對(duì)稀釋制成曲線,用以計(jì)算樣本靶序列的含量,結(jié)果為樣本靶序列的絕對(duì)含量。質(zhì)粒DNA和體外轉(zhuǎn)入的RNA常用作絕對(duì)定量標(biāo)準(zhǔn)品。標(biāo)準(zhǔn)品的量可根據(jù)260nm的吸光度值并用DNA或RNA的分子量來(lái)?yè)Q算成其拷貝數(shù)。絕對(duì)定量方法標(biāo)準(zhǔn)曲線法:制作標(biāo)準(zhǔn)曲線的標(biāo)準(zhǔn)序列的絕對(duì)量是已知的,將標(biāo)準(zhǔn)品DNA結(jié)合染色:SYBRGreen1水解探針:TaqManMolecularBeacons熒光標(biāo)記引物雜交探針實(shí)時(shí)熒光定量PCR使用的熒光化學(xué)方法DNA結(jié)合染色:SYBRGreen1實(shí)時(shí)熒光定量PCR使SYBRGreen1TaqMan

MolecularBeacons熒光化學(xué)試劑SYBRGreen1TaqManMolecular熒SYBRGreenISYBRGreen1SYBRGreenISYBRGreen1SYBRGreenI工作原理SYBRGreen1

結(jié)合到雙鏈DNA的小溝部位SYBRGreen1

染料只有和雙鏈DNA結(jié)合后才發(fā)熒光。GTTTGGCCCCCCCAAAGGGACTTGATAGCATCGTAASYBRGreenI工作原理SYBRGreen1BoundSYBRGreenIUnboundSYBRGreenIPCRSYBRGreenIfluorescenceincreasesuponbindingdsDNAPost-amplificationmeltingcurveanalysisSYBRGreenI工作原理BoundSYBRGreenIUnboundSYBRSYBRGreenI工作原理SYBRGreenI工作原理熒光強(qiáng)度Vs溫度熒光強(qiáng)度的變化是由于溫度不斷升高雙鏈DNA解離,SGI重新游離到溶液中Tm是熔解曲線的特征值TemperatureincreasesFluorescencedecreasesTmSYBRGreenI熔解曲線分析熒光強(qiáng)度Vs溫度TemperatureincreasesF以熒光值隨溫度變化作負(fù)導(dǎo)-dIdTTmSYBRGreenI熔解曲線分析以熒光值隨溫度變化作負(fù)導(dǎo)-dIdTTmSYBRGreen優(yōu)化的讀板溫度-高于非特異產(chǎn)物的Tm值-低于目標(biāo)產(chǎn)物的Tm值A(chǔ)mpliconNon-specificproducts熔解曲線分析的應(yīng)用優(yōu)化的讀板溫度AmpliconNon-specific熔解曲不同讀板溫度對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果的影響:80℃不同讀板溫度對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果的影響:80℃不同讀板溫度對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果的影響:86℃不同讀板溫度對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果的影響:86℃SYBRGreenI反應(yīng)體系的設(shè)計(jì)反應(yīng)體系的組成:傳統(tǒng)PCR反應(yīng)體系+SYBRGreenI1.SG濃度:終濃度1:5,000-1:100,000,一般為1:10,000—1:70,000SYBRGreenI反應(yīng)體系的設(shè)計(jì)

2.Primer濃度:設(shè)計(jì)原則同普通PCR終濃度50nM-300nM固定摸板濃度的梯度實(shí)驗(yàn)不加摸板的對(duì)照實(shí)驗(yàn)(NTC)——有無(wú)非特異信號(hào)SYBRGreenI反應(yīng)體系的設(shè)計(jì)

2.Primer濃度:SYBRGreenI反應(yīng)體系

熔解曲線的分析——是否單峰

建議使用HPLC純化的引物3.MgCl2濃度

降低MgCl2濃度以減少非特異性產(chǎn)物

最低可至1.5nM同時(shí)做梯度實(shí)驗(yàn)和NTC對(duì)照SYBRGreenI反應(yīng)體系的設(shè)計(jì)

熔解曲線的分析——是否單峰SYBRGreenI反應(yīng)

4.反應(yīng)溫度和時(shí)間參數(shù):

反應(yīng)溫度參考所用酶的種類(lèi);

退火溫度使用溫度梯度功能優(yōu)化;反應(yīng)時(shí)間與常規(guī)PCR類(lèi)似;擴(kuò)增片斷一般為200-300bp。SYBRGreenI反應(yīng)體系的設(shè)計(jì)

4.反應(yīng)溫度和時(shí)間參數(shù):SYBRGreenI反應(yīng)

SYBRGreenI的特點(diǎn)和不足不涉及特異的探針,方法設(shè)計(jì)簡(jiǎn)單,特異性差;熒光強(qiáng)度依賴于體系中所有的dsDNA分子,不能區(qū)分引物二聚體、非特異性擴(kuò)增片斷等;通過(guò)繪制溶解曲線可較好地保證特異性。

SYBRGreenI的特點(diǎn)和不足TaqMan探針熒光素淬滅劑TaqMan水解型雜交探針TaqMan探針熒光素淬滅劑TaqMan水解型雜交探針TaqMan目標(biāo)特異性探針5’為熒光素,3’為淬滅劑5’熒光素3’淬滅劑與目標(biāo)序列互補(bǔ)TaqMan目標(biāo)特異性探針5’熒光素3’淬滅劑與目標(biāo)序列互RQReporterQuencherRQIntactprobe-reporterquenchedbyFRETFRRQDuringPCR,probehybridizestotargetsequenceRQProbeispartiallydisplacedduringextensionRQProbecleavedby5’-3’nucleaseactivityofpolymeraseRQFreereporterexhibitsunquenchedfluorescenceTaqMan工作原理RQReporterQuencherRQIntactproTaqman探針?lè)磻?yīng)體系的設(shè)計(jì)引物、探針設(shè)計(jì)原則:優(yōu)先選擇探針的序列;Tm值應(yīng)比引物的Tm值高8-10度(68-70);GC含量:30-80%;長(zhǎng)度不應(yīng)超過(guò)30堿基,18-30bp,optimal20;5’端不應(yīng)是G,G有可能會(huì)淬滅熒光素。

Taqman探針?lè)磻?yīng)體系的設(shè)計(jì)引物、探針設(shè)計(jì)原則:Taqman探針?lè)磻?yīng)體系的設(shè)計(jì)選擇合適的模板鏈,使探針的Cs>Gs;擴(kuò)增片斷不超過(guò)400bp,通常為80-150bp。避免相同堿基連續(xù)出現(xiàn),特別是四個(gè)或四個(gè)以上Gs連續(xù)出現(xiàn);引物應(yīng)盡量靠近探針;引物的Tm值為59-60度,長(zhǎng)度約20堿基;避免引物、探針之間的二級(jí)結(jié)構(gòu)。Taqman探針?lè)磻?yīng)體系的設(shè)計(jì)選擇合適的模板鏈,使探針的Cs引物、探針濃度的優(yōu)化

目標(biāo):最高的信號(hào)/背景比,最小的Ct值

引物濃度:50nM-900nM

探針濃度:50nM-250nM

通過(guò)多次實(shí)驗(yàn)確定各自的濃度和比例Taqman探針?lè)磻?yīng)體系的設(shè)計(jì)引物、探針濃度的優(yōu)化Taqman探針?lè)磻?yīng)體系的設(shè)計(jì)Taqman探針的不足采用熒光淬滅及雙末端標(biāo)記,淬滅難以徹底,本底較高;采用酶外切活性,受酶性能影響;探針標(biāo)記成本較高。改進(jìn):用不發(fā)光的淬滅熒光分子取代TAMRATaqman探針的不足Molecular

BeaconsMolecularBeacons發(fā)夾型雜交探針Molecular

BeaconsMolecularMolecularBeacons莖由互補(bǔ)配對(duì)的序列組成環(huán)與目標(biāo)序列完全配對(duì)莖熒光素淬滅劑環(huán)MolecularBeacons莖由互補(bǔ)配對(duì)的序列組成環(huán)與Target-loopinteractionmorestablethanstem-stemTACCGGGGGTTACGAACGGTAATTTTTGCCCCCAAAAQRTargetDuringtheannealingstep:ProbebindstargetReporterandquencherseparatedTarget-specificfluorescenceMolecularBeacons

Target-loopinteractionmoresMolecularBeacons特點(diǎn)和不足對(duì)目標(biāo)序列有很高的特異性;是用于SNP檢測(cè)的最靈敏的試劑之一;采用非熒光染料作為淬滅分子,熒光本底低;不能完全與模板結(jié)合,穩(wěn)定性差;探針合成標(biāo)記較復(fù)雜。MolecularBeacons特點(diǎn)和不足引物/探針設(shè)計(jì)和評(píng)估相關(guān)的免費(fèi)網(wǎng)站

1.引物/探針的設(shè)計(jì)

?

Primer3(WhiteheadInstitute,MIT)

/cgi-bin/primer3/primer3_www.cgi

?

GeneFisher(BielefeldUniversity)

http://bibiserv.techfak.uni-bielefeld.de/cgi-bin/gf_submit?mode=STARTUP&qid=na&sample=dna

?

引物/探針設(shè)計(jì)和評(píng)估相關(guān)的免費(fèi)網(wǎng)站

1.引物/探針的設(shè)計(jì)

?

FastPCR(Biocenter,UniversityofHelsinki)

http://www.biocenter.helsinki.fi/bi/bare-1_html/oligos.htm

?

PerlPrimer(OwenMarshall)

/

?

PrimerDesignAssistant(DivisionofBiostatisticsandBioinformatics,NationalHealthResearchInstitutes)

.tw/primer/

引物/探針設(shè)計(jì)和評(píng)估相關(guān)的免費(fèi)網(wǎng)站

引物/探針設(shè)計(jì)和評(píng)估相關(guān)的免費(fèi)網(wǎng)站.2.反轉(zhuǎn)錄(RT)PCR引物設(shè)計(jì)

?

ExonPrimer(TechnischeUniversit?t,München)

http://ihg.gsf.de/ihg/ExonPrimer.html

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AutoPrimer(DeutschesKrebsforschungszentrum)

http://www.autoprime.de/

3.引物特異性的驗(yàn)證

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Blast(NCBI) /BLAST/引物/探針設(shè)計(jì)和評(píng)估相關(guān)的免費(fèi)網(wǎng)站.2.反轉(zhuǎn)錄(RT)PCR引物設(shè)計(jì)引物/探針設(shè)計(jì)和評(píng)估4.引物/探針特性的評(píng)估

?

OligoAnalyzer(IDT)

/Analyzer/

?

OligoAnalysis&PlottingTool(Operon/Qiagen)

/oligos/toolkit.php

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NetPrimer(PremierBiosoft)

/netprimer/netprlaunch/netprlaunch.html引物/探針設(shè)計(jì)和評(píng)估相關(guān)的免費(fèi)網(wǎng)站4.引物/探針特性的評(píng)估引物/探針設(shè)計(jì)和評(píng)估相關(guān)的免費(fèi)網(wǎng)站

?

GeneWalker(Cybergene)

http://www.cybergene.se/primerdesign/genewalker/genewalker11.html

?

OligonucleotideAnalyzer(RNAture)

/oligonucleotide.html

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OligonucleotidePropertiesCalculator(NorthwesternUniversity)

/biotools/oligocalc.html

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mfold(MichaelZuker,RensselaerPolytechnicInstitute)

/applications/mfold/old/dna/

引物/探針設(shè)計(jì)和評(píng)估相關(guān)的免費(fèi)網(wǎng)站

引物/探針設(shè)計(jì)和評(píng)估相關(guān)的免費(fèi)網(wǎng)站5.?dāng)U增子二級(jí)結(jié)構(gòu)的評(píng)估

?

mfold(MichaelZuker,RensselaerPolytechnicInstitute)

/applications/mfold/old/dna/

引物/探針設(shè)計(jì)和評(píng)估相關(guān)的免費(fèi)網(wǎng)站5.?dāng)U增子二級(jí)結(jié)構(gòu)的評(píng)估引物/探針設(shè)計(jì)和評(píng)估相關(guān)的免費(fèi)網(wǎng)站實(shí)時(shí)熒光定量PCR的原理實(shí)時(shí)熒光定量PCR的應(yīng)用Chromo4介紹實(shí)時(shí)熒光定量PCR的原理實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)的應(yīng)用

病原體檢測(cè);腫瘤研究;基因表達(dá)研究;免疫組份分析;基因突變及多態(tài)性的研究實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)的應(yīng)用病原體檢測(cè);實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)的應(yīng)用

病原體檢測(cè):檢測(cè)患者血清中肝炎病毒濃度為臨床藥物治療和療效觀察提供依據(jù);檢測(cè)HIV的量預(yù)測(cè)發(fā)病時(shí)間;選擇治療藥物:干擾素對(duì)肝炎病毒高拷貝者不敏感,對(duì)低拷貝者敏感。實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)的應(yīng)用病原體檢測(cè):實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)的應(yīng)用

腫瘤研究:癌基因及其相關(guān)基因的定量檢測(cè)可進(jìn)行腫瘤的早期診斷、分型、分期和預(yù)后判斷;檢測(cè)治療中和治療后微量殘余惡性細(xì)胞存在的數(shù)量,作為治療效果和估計(jì)復(fù)發(fā)危險(xiǎn)性的依據(jù)。實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)的應(yīng)用腫瘤研究:基因差異表達(dá)研究標(biāo)準(zhǔn)曲線法

使用標(biāo)準(zhǔn)曲線來(lái)確定基因表達(dá)上的差異相對(duì)定量法(2-△△Ct法)

不使用標(biāo)準(zhǔn)曲線,直接分析得到基因差異表達(dá)的倍數(shù)關(guān)系基因差異表達(dá)研究標(biāo)準(zhǔn)曲線法標(biāo)準(zhǔn)曲線法步驟:1.通過(guò)標(biāo)準(zhǔn)曲線分別測(cè)出目標(biāo)基因和內(nèi)標(biāo)基因的量2.均一化校正(Normalization)3.比較不同樣品間目標(biāo)基因表達(dá)差異標(biāo)準(zhǔn)曲線法步驟:相對(duì)定量法前提目標(biāo)基因和看家基因的擴(kuò)增效率一致,且接近100%。步驟通過(guò)實(shí)時(shí)熒光曲線得到目標(biāo)基因和看家基因的Ct值均一化校準(zhǔn)△Ct=Ct目標(biāo)基因-Ct看家基因△△Ctn=△Ctn-△Ct0(不同時(shí)間、不同組織)基因差異表達(dá)的倍數(shù)=2-△△Ct相對(duì)定量法前提基因突變及多態(tài)性-SNP檢測(cè)基因突變及多態(tài)性-SNP檢測(cè)基因分型方法

使用TaqMan探針

(雙色法)溶解曲線

(單色法)序列特異PCR(單色法)基因分型方法FRFQGVQTCSNPG/AFQGVQTForwardprimerReverseprimerAllele-specificprobeAllele-specificprobe用TaqMan探針進(jìn)行基因型分析SNP檢測(cè)-基因型分析FRFQGVQTCSNPG/AFQGVQTForwardQF5’GCQ5’3’CGFQV5’3’CTQ5’3’HybridizationofTaqManProbeDigestionofprobe-fluorescenceNOdigestionofprobe-NOfluorescenceTVQGFQMatchforAllele1ReducedEfficiencyofProbeHybridizationMismatchforAllele1Polymerase多色雙通道技術(shù)應(yīng)用-基因型分析QF5’GCQ5’3’CGFQV5’3’CTQ5’3’Hyb從病人血液樣品中提取DNA基因型分類(lèi):A/A(Allele1)G/G(Allele2)G/A(Heterozygote)CFQTVQ多色雙通道技術(shù)應(yīng)用-基因型分析從病人血液樣品中提取DNACFQTVQ多色雙通道技術(shù)應(yīng)用Allele1controlVICFAM多色雙通道技術(shù)應(yīng)用-基因型分析Allele1controlVICFAM多色雙通道技術(shù)應(yīng)Allele2controlVICFAM多色雙通道技術(shù)應(yīng)用-基因型分析Allele2controlVICFAM多色雙通道技術(shù)應(yīng)HeterozygotecontrolFAMVIC多色雙通道技術(shù)應(yīng)用-基因型分析HeterozygotecontrolFAMVIC多色雙通多色雙通道技術(shù)應(yīng)用-基因型分析多色雙通道技術(shù)應(yīng)用-基因型分析SYBRGreenI進(jìn)行SNP分析T5’PCRprimerswithSNPsiteat3’endC5’

末端不匹配會(huì)導(dǎo)致PCR效率上有大約1000倍的差異,由此導(dǎo)致產(chǎn)物積累會(huì)有10個(gè)cycles延遲

末端匹配與否,與反應(yīng)終產(chǎn)物量的多少?zèng)]有必然聯(lián)系

PCR#1PCR#2SYBRGreenI進(jìn)行SNP分析T5’PCRprimSYBRGreenI進(jìn)行SNP分析MatchMismatchSYBRGreenI進(jìn)行SNP分析MatchMismatSYBRGreenI進(jìn)行基因分型Amplicon1Amplicon2GCHigherTm…distinctthermalprofileLowerTm…distinctthermalprofileSYBRGreenI進(jìn)行基因分型Amplicon1AmSYBRGreenI進(jìn)行基因分型Intensity-dI/dTSYBRGreenI進(jìn)行基因分型Intensity-dITaqMan?MicroRNA分析方法

加長(zhǎng)靶基因的反轉(zhuǎn)錄熒光定量PCRTaqMan?MicroRNA分析方法

加長(zhǎng)靶基因的反轉(zhuǎn)miRNAs的研究

MicroRNAs是一種內(nèi)源性長(zhǎng)度在22個(gè)堿基左右的RNA分子,它在動(dòng)植物中具有重要的基因調(diào)控作用,它們通過(guò)與mRNAs結(jié)合抑制翻譯或造成mRNAs被酶解切割而起作用目前在各種生命體中發(fā)現(xiàn)的miRNAs類(lèi)型共有約700種以上,通過(guò)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證或經(jīng)數(shù)據(jù)庫(kù)和軟件推測(cè)其中人源的約有200種高豐度存在:平均每個(gè)細(xì)胞中約有50,000個(gè)拷貝miRNAs的研究MicroRNAs是一種內(nèi)源性長(zhǎng)度在2為什么miRNAs非常重要?MicroRNAs是一類(lèi)新的基因調(diào)控因子某些miRNAs控制了動(dòng)植物的發(fā)育理解miRNA的功能將幫助現(xiàn)在流行的siRNA實(shí)驗(yàn)結(jié)果:RNA干擾/基因沉默MicroRNAs有可能成為新型的疾病標(biāo)志物MicroRNAs可能具有重要臨床應(yīng)用價(jià)值為什么miRNAs非常重要?MicroRNAs是一類(lèi)新的現(xiàn)有的miRNA檢測(cè)方法克隆法Cloning雜交法NorthernBlotRibonucleaseProtection-basedPAGE電泳法基因芯片法Microarray-basedmiRNAprofiling

上列各種方法均未被證實(shí)是有效,準(zhǔn)確并且是高度重現(xiàn)的:不少小RNA間只有一個(gè)堿基的不同現(xiàn)有的miRNA檢測(cè)方法克隆法CloningmiRNA

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