動物實(shí)驗(yàn)技術(shù)與方法

動物實(shí)驗(yàn)技術(shù)與方法第1頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月在醫(yī)學(xué)教學(xué)、科研和醫(yī)療工作中，不論是從事基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)還是臨床醫(yī)學(xué)或預(yù)防醫(yī)學(xué)，都需要用實(shí)驗(yàn)動物來進(jìn)行各種實(shí)驗(yàn)。通過對動物實(shí)驗(yàn)的觀察、分析，來研究需要解決的問題，動物實(shí)驗(yàn)方法已成為研究工作中必不可少的重要手段。動物實(shí)驗(yàn)第2頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月動物實(shí)驗(yàn)前的準(zhǔn)備實(shí)驗(yàn)動物的抓取和固定實(shí)驗(yàn)動物的麻醉實(shí)驗(yàn)動物給藥方法各種檢驗(yàn)標(biāo)本的采集方法實(shí)驗(yàn)動物的安樂死及無害化處理第3頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月動物的購入動物外觀健康檢查動物編號標(biāo)記動物被毛的去除動物實(shí)驗(yàn)前的準(zhǔn)備第4頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月動物的購入購入或領(lǐng)取實(shí)驗(yàn)動物時，應(yīng)向供應(yīng)部門索取所用動物相應(yīng)等級的質(zhì)量合格證書，若是購入或領(lǐng)取清潔級以上實(shí)驗(yàn)動物，應(yīng)采用帶有空氣過濾膜的無菌運(yùn)輸罐或帶過濾帽的籠盒運(yùn)輸，并嚴(yán)格檢查其密封狀況。第5頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月皮毛：有無光澤、出血、干燥；眼：有無眼屎、流淚、白內(nèi)障、角膜損傷等；耳：有無外傷、耳殼曲折、中耳炎等；四肢：有無彎曲、脫臼、外傷、關(guān)節(jié)炎；肛門：有無下痢、血便、脫肛等。動物外觀健康檢查第6頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月編號標(biāo)記

目的：為了分組要求：清晰、耐久、簡便、適用顏料標(biāo)記顏料標(biāo)記適應(yīng)于較大量的大、小鼠等小動物的編號。常用的顏料有5%苦味酸溶液(黃色)、2%硝酸銀溶液(咖啡色)、0.5%中性品紅溶液(紅色)、煤焦油的酒精溶液(黑色)。顏料號的原則是先左后右，從上而下。第7頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月小鼠和大鼠標(biāo)號示圖第8頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月烙印

用號碼烙印鉗在兔、豚鼠的耳朵烙號，然后在烙印部位涂上溶在酒精中的黑墨或煤粉。豬等大動物也可用此法在臀部皮膚烙號標(biāo)記。也有將實(shí)驗(yàn)分組編號烙在狗脖套的皮帶頸圈上。紋身

用刺數(shù)鉗在局部皮膚(兔多在耳朵內(nèi)側(cè)，猴多在前胸皮膚)刺上號碼，再用棉簽蘸上墨汁酒精涂沫刺號，多用于猴、兔的編號。第9頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月號牌

將不銹鋼或鋁質(zhì)號牌固定在狗或猴的鏈條或頸圈上。兔號牌則固定在耳朵上。少量動物時也可將號牌掛在籠具上，但應(yīng)防止抓取操作后將動物放錯籠具而混淆編號。第10頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月毛色利用動物的毛色將其編號，用于少量的狗、馬、貓、猴等大動物的編號。剪毛

用剪刀在狗背上剪出號碼，此方法簡單，字跡清楚、可靠，便于觀察。打孔用打孔器在兔耳上打孔或剪口。第11頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月為了排除動物被毛對實(shí)驗(yàn)操作和觀察結(jié)果的影響，實(shí)驗(yàn)中需要去除或剪短動物的被毛。動物被毛的去除第12頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月脫毛劑1)8%NaSNaS8g+水至100ml；也可用硫化鈉8克、淀粉7克、甘油4克、硼砂1克，用自來水加至100ml。常用于兔及小鼠等小型動物的脫毛。上述配制好的溶液5～7ml可用于15×12cm2皮膚的脫毛。2)10%NaS硫化鈉10克、氧化鈣15克，自來水加至100ml。常用于狗、豬等較大動物的皮膚第13頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月動物的抓取與固定方法

目的：限制動物的活動，持安靜狀態(tài)以便正確操作和記錄要求：不損傷實(shí)驗(yàn)動物不影響觀察指標(biāo)實(shí)驗(yàn)者不被動物咬傷保證實(shí)驗(yàn)順利進(jìn)行小心細(xì)致、大膽敏捷，切忌粗暴。第14頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月一、小鼠

用右手提起小鼠尾巴將其放在鼠籠蓋或其它粗糙表面上，在小鼠向前掙扎爬行時，用左手拇指和食指捏住其雙耳及頸部皮膚，將小鼠置于左手掌心、無名指和小指夾其背部皮膚和尾部，即可將小鼠完全固定。第15頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月

小鼠的抓取與固定第16頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月小鼠的抓取第17頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月二、大鼠

大鼠的門齒很長。實(shí)驗(yàn)者應(yīng)戴上棉紗手套，右手輕輕抓住大鼠的尾巴向后拉，但要避免抓其尖端，以防尾巴尖端皮膚脫落，左手抓緊鼠兩耳和頭頸部的皮膚，并將大鼠固定在左手中，右手即可進(jìn)行操作。

第18頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月大鼠的抓取第19頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月三、豚鼠抓取幼小的豚鼠時，可用雙手捧起來；抓取較大的豚鼠時，可先用手掌摳住豚鼠的背部，抓住其肩胛上方，將右手張開，用手指抓住頸部再慢慢將其提起第20頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月豚鼠的抓取第21頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月四、家兔

一只手抓住兔的頸部皮毛，將兔提起，用另一只手托其臀，或用手抓住背部皮膚提起來。因家兔耳大，故人們常誤認(rèn)為抓其耳可以提起，或有人用手挾住其腰背部提起均為不正確的操作。

第22頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月兔的抓取方法第23頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月貓的抓取與固定方法第24頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月

布制豬固定帶第25頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月豬的懸吊式固定第26頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月為了觀察藥物對機(jī)體功能、代謝、形態(tài)的影響，需要將藥物注入實(shí)驗(yàn)動物體內(nèi)。由于實(shí)驗(yàn)?zāi)康?、動物種類、藥物劑型不同，給藥途徑和方法也多種多樣。實(shí)驗(yàn)動物給藥方法第27頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月實(shí)驗(yàn)動物的給藥劑量D2=D1×K2/K1×3W1/W2

D:藥物劑量(μg?kg-1?d-1)W:動物體重(kg)K:常數(shù)第28頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月不同種類動物的K值名稱K值名稱K值人10.6家兔10.1猴11.8大鼠9.1狗11.2豚鼠9.8貓9.8小鼠9.1第29頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月

實(shí)驗(yàn)動物的給藥途徑和方法第30頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月（一）口服給藥

經(jīng)口給藥劑量準(zhǔn)確，對動物安全，是動物實(shí)驗(yàn)中常用的給藥方法，尤其是移植實(shí)驗(yàn)中受體動物的腸道滅菌處理，必須口服腸道不吸收的抗生素。第31頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月1．灌胃法是借灌胃器將藥物直接灌到動物胃內(nèi)的一種常用給藥方法，此法給藥劑量準(zhǔn)確。但是每天強(qiáng)制性操作和定時給藥會給動物造成一定程度的機(jī)械性損傷和心理上的影響。因此必須充分掌握灌胃技術(shù)。第32頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月

（1）鼠類：鼠類的灌胃器由注射器和特殊的灌胃針構(gòu)成。左手固定鼠，右手持灌胃器，將灌胃針從鼠的右口角插入口中，沿咽后壁慢慢插入食道，使其前端到達(dá)膈肌位置。灌胃針插入時應(yīng)無阻力，如有阻力或動物掙扎則應(yīng)退針或?qū)⑨槹纬?，以免損傷、穿破食道或誤入氣管。第33頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月小白鼠灌胃方法第34頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月大白鼠灌胃方法第35頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月（2）兔、犬等：灌胃一般要借助于開口器、灌胃管進(jìn)行。先將動物固定，再將開口器固定于上下門齒之間，然后將灌胃管（常用導(dǎo)尿管代潛）從開口器的小孔插入動物口中，沿咽后壁而進(jìn)入食道。插入后應(yīng)檢查灌胃管是否確實(shí)插入食道?？蓪⒐辔腹芡忾_口放入盛水的燒杯中，若無氣泡產(chǎn)生，表明灌胃管被正確插入胃中，未誤入氣管。第36頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月兔灌胃方法第37頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月狗灌胃方法第38頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月動物種類插入深度，每次灌胃量：小白鼠3cm1ml大白鼠、豚鼠5cm1-4ml兔15cm80-100ml犬約20cm200-250ml第39頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月（二）注射給藥法

注射給藥劑量準(zhǔn)確、作用快，是動物實(shí)驗(yàn)中常用的給藥方法，給藥時應(yīng)注意針頭的選擇（鼠類用4#針頭，兔、貓、犬、豬、猴用6—8#針頭）。

第40頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月1．皮下注射皮下注射時用左手拇指和食指輕輕提起運(yùn)動皮膚，右手持注射器，使針頭水平刺入皮下，推送藥液使注射部位隆起。拔針時，以手指捏住針刺部位，可防止藥液外漏。皮下注射劑量為0.1-0.3ml/10g.第41頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月

皮下注射一般選取皮下組織疏松的部位，大鼠、小鼠和豚鼠可在頸后肩胛間、腹部兩側(cè)作皮下注射；家兔可在背部或耳根部作皮下注射：貓、犬則在大腿外側(cè)作皮下注射。第42頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月皮下注射第43頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月2．皮內(nèi)注射將注射部位脫毛、消毒，用左手拇指和食指壓住皮膚并使之繃緊，在兩指之間，用皮試針頭緊貼皮膚表層刺入皮內(nèi)，然后向上挑起并再稍刺入。隨之慢慢注入一定量的藥液,會感到有很大阻力.

第44頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月緩慢注射，皮膚表面出現(xiàn)白色桔皮樣隆起，若隆起可維持一定時間，則證明確實(shí)注射在皮內(nèi).如很快消失,就可能注入皮下,應(yīng)重?fù)Q部位再注射,如果注射完畢后馬上拔針,藥液會從針孔漏出,所以需注射后5min再拔出.第45頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月皮內(nèi)注射第46頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月3．肌肉注射

肌肉注射一般選肌肉發(fā)達(dá)，無大血管通過的部位。注射時針頭宜垂直迅速刺入肌肉，回抽針?biāo)ㄈ鐭o回血，即可注射。大鼠、小鼠、豚鼠可注射大腿外側(cè)肌肉；家兔可在腰椎旁的肌肉、臀部或股部肌肉注射：犬、猴等大型動物選臂部注射。第47頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月4．腹腔注射腹部向上，應(yīng)盡量使動物頭處于低位，使內(nèi)臟移向上腹，將針頭在下腹部腹白線稍向左的位置,注射器沿45℃角斜向穿過腹肌進(jìn)入腹腔，此時有落空感，回抽無回血或尿液，即可注入藥液。第48頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月小鼠的一次注射劑量為0.1-0.2ml/10g(體重)大鼠一次注射劑量為1-2ml/100g(體重).家兔：下腹部近腹白線左右兩側(cè)1cm處犬：臍后腹白線兩側(cè)邊1—2cm處進(jìn)行腹腔注射第49頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月小鼠腹腔注射方法第50頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月5．靜脈注射

將藥液直接注射于靜脈管內(nèi)，使其隨著血液分布全身,迅速奏效。但排泄較快，作用時間較短。（1）小鼠和大鼠：常采用尾靜脈注射。鼠尾靜脈共有3根，左右兩側(cè)和背側(cè)各1根，兩側(cè)尾靜脈比較容易固定，故常被采用。注射時，先將動物固定在暴露尾部的固定器內(nèi)，尾部用45—50℃的溫水浸潤幾分鐘或用75%酒精棉球反復(fù)擦拭使血管擴(kuò)張，并使表皮角質(zhì)軟化。第51頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月小鼠尾靜脈注射方法第52頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月小鼠尾靜脈注射方法第53頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月狗前肢內(nèi)側(cè)皮下靜脈注射方法第54頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月狗后肢靜脈注射方法第55頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月豬灌胃方法第56頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月各種動物一次給藥能耐受的最大容量(ml) 動物灌胃皮內(nèi)注射皮下注射肌肉注射腹腔注射靜脈注射小鼠0.90.11.50.21.00.8大鼠5.00.15.00.52.04.0兔2000.2102.05.010貓1500.2102.05.010猴3000.3503.01020狗5000.31004.0__100 第57頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月實(shí)驗(yàn)動物樣本的采集

及時、準(zhǔn)確地采集實(shí)驗(yàn)動物的血樣或排泄(分泌)物等實(shí)驗(yàn)標(biāo)本，是保證動物實(shí)驗(yàn)結(jié)果準(zhǔn)確性的重要條件。采集不當(dāng)時可嚴(yán)重影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果，如狗或猴在實(shí)驗(yàn)臺上較長時間劇烈掙扎后可使外周血白細(xì)胞明顯升高；如抽血不順利且時間較長，則血樣中血小板計(jì)數(shù)可明顯降低。第58頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月血樣的采集

根據(jù)不同的實(shí)驗(yàn)要求及不同種類的實(shí)驗(yàn)動物而采取不同的采血方法。如：心臟、胸主動脈、股動脈、靜脈、剪(割、刺)尾、眼眶、斷頭第59頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月1．小鼠和大鼠（1）剪尾采血：需血量較少時常用此法。先將動物固定，將鼠尾浸在45℃左右溫水中幾分鐘或用酒精棉球涂擦鼠尾,使尾部血管充盈,剪去尾尖1—2mm(小鼠)或3—5mm(大鼠),使血液順血管壁自由流入試管或用血紅蛋白吸管吸取。采血結(jié)束時,傷口消毒并壓迫止血。此法每只鼠一般可采血10次以上，小鼠每次可取血0.1ml左右，大鼠可取血0.3—0.5ml。第60頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月鼠尾靜脈取血方法第61頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月（2）眼眶后靜脈叢采血：操作者一手固定小鼠或大鼠，食指和拇指輕輕壓迫頸部兩側(cè)，使眶后靜脈叢充血，另一只手持毛細(xì)采血管，以45℃從內(nèi)眼角刺入，并向下旋轉(zhuǎn)，感覺刺入靜脈叢后，再向外邊退邊吸，當(dāng)?shù)玫剿柩亢螅潘杉佑陬i部的壓力，并拔出采血器，以防穿刺孔出血。若技術(shù)熟練，此方法在短期內(nèi)可重復(fù)采血，小鼠一次可采0.2-0.3ml，大鼠可采血約0.5ml。如只進(jìn)行一次取血，可采用摘眼球法。

第62頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月小白鼠后眼眶靜脈叢取血方法第63頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月大白鼠后眼眶靜脈叢取血方法第64頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月（3）股動脈采血：大量取血時常用此法。需手術(shù)分離股動脈。小鼠的一次采血量可達(dá)0.5ml，大鼠可達(dá)2.0ml。（4）斷頭采血（5）心臟采血第65頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月狗股動脈取血方法第66頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月獼猴后肢靜脈取血方法第67頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月小白鼠斷頭取血方法第68頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月大白鼠頸靜脈取血方法第69頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月兔耳緣靜脈取血方法第70頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月狗頸靜脈取血方法第71頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月（6）心臟采血：將動物麻醉并仰臥固定置實(shí)驗(yàn)臺上。心前區(qū)皮膚脫毛，常規(guī)消毒。于左側(cè)第3、4肋間心尖博動最強(qiáng)處將針頭垂直刺入心臟，由于心臟的搏動，血液可自動進(jìn)入注射器。如無血液流出，拔出針頭后重新穿刺，不能左右來回斜穿，以免造成氣胸而導(dǎo)致動物很快死亡。經(jīng)6—7天后可重復(fù)穿刺采血。第72頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月（二）尿液采集1.大、小鼠：代謝籠2.兔、犬：導(dǎo)尿管（三）腦脊液采集（四）胸腔積液（五）腹腔液（六）其他：胃液、膽汁、關(guān)節(jié)液第73頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月消化液采集(一)胃液的采集通過刺激，使胃液分泌增加，再用插胃管的辦法抽取胃液。(二)膽汁的采集采集膽汁需要施行手術(shù)。(三)胰液的采集胰液的采集基本同膽汁的采集。第74頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月

尿液采集

(一)代謝籠動物排便時，可通過籠子底部的大小便分離漏斗，將尿液與糞便分開，達(dá)到采集尿液的目的。(二)壓迫膀胱(強(qiáng)制排尿)將動物固定，按壓骶骨兩側(cè)的腰背部或輕輕壓迫膀胱的體表部位，使其排尿。第75頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月目的：防止動物掙扎，保持安靜防止意外損傷，便于操作

實(shí)驗(yàn)動物的麻醉第76頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月全身麻醉1%硫噴妥鈉:15mg/kg，iv/ip2%戊巴比妥:40mg/kg，iv/ip鹽酸氯胺酮:40mg/kg，sc/im復(fù)方氯胺酮:0.01ml/kg，sc/im第77頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月速眠新(846)注射液每Kg體重:雜種犬：0.1---0.15ml純種犬：0.04—0.08ml貓、兔：0.2—0.3ml羊、猴：0.1—0.15ml鼠：0.3—0.8ml第78頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月麻醉方法1．吸入法乙醚、氯仿等揮發(fā)性麻醉劑用吸入法麻醉，適用于各種實(shí)驗(yàn)動物。大鼠、小鼠可將頭部放入蘸有乙醚棉球的廣口瓶或干燥器內(nèi)，4—6分鐘后即處于麻醉狀態(tài)。如實(shí)驗(yàn)過程較長，可在其鼻部放棉花或紗布，不時滴加乙醚維持，也可用乙醚先麻醉后再用非揮發(fā)性麻醉劑維持麻醉。第79頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月在給藥過程中，如果發(fā)現(xiàn)動物的角膜反射消失，瞳孔突然放大，應(yīng)立即停止麻醉。如果呼吸停止，可進(jìn)行人工呼吸，并配以咖啡因、可拉明等蘇醒劑，待恢復(fù)自主呼吸后再進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。因乙醚易引起上呼吸道分泌物增多，導(dǎo)致窒息，可先注射阿托品預(yù)防。第80頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月2．腹腔和靜脈給藥麻醉法非揮發(fā)性麻醉劑如戊巴比妥鈉、硫噴妥鈉等巴比妥類藥物及水合氯醛、氨基甲酸乙酯等，可用腹腔或靜脈注射麻醉。大鼠、小鼠、豚鼠常用腹腔給藥麻醉；兔、犬、猴等多用靜脈給藥麻醉。此法主要用于需麻醉2小時以上的實(shí)驗(yàn)，麻醉過程平穩(wěn)，但麻醉深度和使用劑量較難掌握和控制，一旦過量可引起血壓下降和呼吸抑制，可用戊四氮、可拉明等急救。第81頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月局部麻醉1%鹽酸普魯卡因，局部注射2%鹽酸可卡因，粘膜表面麻醉第82頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月局部麻醉方法很多，有表面麻醉，浸潤麻醉和阻斷麻醉等，使用最多的是浸潤麻醉。浸潤麻醉是將藥物注射于皮內(nèi)、皮下組織或手術(shù)野深部組織，以阻斷用藥局部的神經(jīng)傳導(dǎo)，使痛覺消失。常用的浸潤麻醉藥是1%鹽酸普魯卡因，此藥安全有效、吸收快、顯效快，但失效也快。第83頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月施行浸潤麻醉時，用皮試針頭先皮內(nèi)注射，然后換局麻長針頭，由皮點(diǎn)進(jìn)針，放射到皮點(diǎn)四周，繼續(xù)注射，直至要求麻醉區(qū)域的皮膚都被浸潤為止。根據(jù)實(shí)驗(yàn)操作要求的深度，可按皮下、筋膜、肌肉、腹膜或骨膜的順序，依次分別注入麻藥，以達(dá)到浸潤神經(jīng)未梢的目的。每次注藥前，應(yīng)回抽，以防藥液誤注于血管內(nèi)。第84頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月麻醉注意事項(xiàng)所有麻醉藥使用過量均可引起中毒，應(yīng)特別注意各種麻醉藥的劑量和用藥途徑。注射時，一般要求緩慢，并隨時觀察動物的肌肉緊張性、角膜反射、去痛反射等指標(biāo)。動物麻醉后體溫下降，要注意保暖。萬一麻醉過量，應(yīng)根據(jù)不同情況，積極采取措施，如給予蘇醒劑，或注射強(qiáng)心劑。第85頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月急救與處死原因：麻醉過量、大失血、窒息措施：人工呼吸強(qiáng)心劑：0.1%腎上腺素呼吸興奮劑：尼可沙米山梗菜堿快速輸血、輸液處死：安樂死(時間短、痛苦少)第86頁，課件共95頁，創(chuàng)作于2023年2月空氣栓塞：免40ml,狗100ml急性失血：大動物麻醉

股動脈放血

實(shí)驗(yàn)動物的處死方法化學(xué)藥物：二氧化碳，三氯甲烷

乙醚，氯化鉀，乙醇

脫臼斷髓：頸椎脫