動物實驗的基本技術(shù)操作方法

動物實驗的基本技術(shù)操作方法演示(Shi)文稿第一頁，共八十七頁。動(Dong)物實驗的基本技術(shù)操作方法第二頁，共八十七頁。主(Zhu)要內(nèi)容動物實驗基本技術(shù)和操作方法

一、動物實驗的常用方法

二、實驗動物的抓取固定方法

三、實驗動物編號標(biāo)記方法

四、實驗動物的隨機(jī)分組方法

五、實驗動物被毛的去除方法第三頁，共八十七頁。主要(Yao)內(nèi)容

六、實驗動物給藥途徑和方法七、實驗動物用藥量的確定及計算方法八、實驗動物的麻醉九、實驗動物采血方法十、急性動物實驗中常用的手術(shù)方法十一、實驗動物的急救措施十二、實驗動物的處死方法第四頁，共八十七頁。一、動物實驗(Yan)的常用方法

動物實驗方法是多種多樣的，在醫(yī)學(xué)的各個領(lǐng)域內(nèi)都有其不同的應(yīng)用，其中一些基本方法都是共同性的，如動物的選擇、抓取、固定、麻醉、脫毛、給藥、采血、采尿、急救、處死、尸檢等，不管是從事何種課題的醫(yī)學(xué)研究都要用這套基本方法，因此，動物實驗基本方法，已成為醫(yī)學(xué)科技工作者必須掌握的一項基本功。第五頁，共八十七頁。一、動物實驗的常(Chang)用方法

無損傷整體實驗整體實驗有損傷整體實驗動物實驗亞細(xì)胞實驗

(按機(jī)體水離體實驗細(xì)胞實驗平不同分)組織實驗器官實驗急性實驗（2天以內(nèi)）動物實驗亞急性實驗（1～4周）

(按實驗時慢性實驗（2～6個月或更長時間間長短分)甚至整個生命期）第六頁，共八十七頁。一、動物實驗的常(Chang)用方法

生理學(xué)的動物實驗方法病理生理學(xué)的動物實驗方法動物實驗藥理學(xué)的動物實驗方法(按不同病理解剖、組織學(xué)動物實驗方法學(xué)科分)微生物、免疫學(xué)的動物實驗方法下面舉一些動物實驗的常用方法：第七頁，共八十七頁。一、動(Dong)物實驗的常用方法1．復(fù)制動物模型法此法是動物實驗最基本的方法，是采用人工的方法使動物在一定致病因素（機(jī)械、化學(xué)、生物和物理）作用下，造成動物的組織，器官或全身的一定損傷，復(fù)制成與人類疾病相似的動物疾病模型，來研究各種疾病的發(fā)生、發(fā)展規(guī)律及防治方法。第八頁，共八十七頁。一、動物實驗的常用(Yong)方法2．切開、分離法此法是以活體動物為對象的整體實驗常用方法。習(xí)慣上把在麻醉情況下，制備一些實驗條件（如活體解剖、分離暴露器官、組織或進(jìn)行一些手術(shù)制備等措施）進(jìn)行研究者稱“急性動物實驗”。其優(yōu)點是比較簡便，操作后可以立即進(jìn)行觀察，實驗條件相對地較易控制，對要研究的器官，有可能直接觀察。第九頁，共八十七頁。一、動物實驗的常用(Yong)方法3．切除和注入提取液法常用于研究內(nèi)分泌器官的生理和病理病變，如研究切除某一腺體后看輻射對機(jī)體的影響，切除某一腺體后看出現(xiàn)什么癥狀而推論這種腺體的功能；如蝌蚪無甲狀腺素，如注入甲狀腺素，蝌蚪很快變成了蛙。第十頁，共八十七頁。一、動物實驗的(De)常用方法4．離體組織器官法它是利用動物的離體組織、器官或生物性致病因子（微生物、寄生蟲等），置于一定的存活條件下（如溫度、營養(yǎng)成分、氧氣、水、pH等）進(jìn)行觀察的一種實驗方法。第十一頁，共八十七頁。一、動物實驗的常用(Yong)方法

動物組織、細(xì)胞的培養(yǎng)也常用此種方法。離體實驗的優(yōu)點是方法比較簡單，一般不需要很復(fù)雜的儀器設(shè)備。實驗條件比較容易控制，牽涉的人力較少，因此常被列為分析性研究的一種手段。不足之處是模擬的存活條件畢竟與整體的實際情況有較大的出入，其結(jié)果也往往與體內(nèi)的變化有一定距離，因此可以作為整體研究的補充和參考。第十二頁，共八十七頁。一、動物實(Shi)驗的常用方法5．瘺管法用無菌手術(shù)方法給動物造成不同的人造瘺管如胃腸道瘺管、膀胱瘺管、唾液腺瘺管、食道瘺管、膽囊瘺管等。這些瘺管可以收集內(nèi)臟液體，是生理學(xué)消化研究的主要方法。此種方法是慢性動物實驗所常用的方法。慢性動物實驗一般是先在無菌操作下制備好實驗?zāi)Ｐ停ǒ浌芊ㄊ瞧渲幸环N），待動物恢復(fù)健康后進(jìn)行研究。第十三頁，共八十七頁。一、動物實驗的常用(Yong)方法

這類研究方法的優(yōu)點在于被研究的對象，其機(jī)體內(nèi)外環(huán)境已處于較自然的相對平衡狀態(tài)，條件比較穩(wěn)定，所得的結(jié)果接近生理情況。但需要事先制備，術(shù)后護(hù)理，等動物恢復(fù)健康后才能從事實驗，花費時間較長，工作量較大，因而在選用上受到一定限制。除了用手術(shù)制備的動物實驗外，運用藥物或食鉺等措施制備病理模型，如誘發(fā)各種實驗性動物疾病模型的方法也可歸為慢性動物實驗。第十四頁，共八十七頁。一(Yi)、動物實驗的常用方法6．移植法一般是將動物的器官、組織或細(xì)胞進(jìn)行相互移植的一種方法。如骨髓移植時，將小鼠A（供體）的骨髓注入到小鼠B的血液中（受體），很快可見脾結(jié)節(jié)化（脾造血）。脾結(jié)節(jié)的數(shù)量反應(yīng)了造血干細(xì)胞的多少，由此可以觀察干細(xì)胞的變化。動物各種組織、器官的移植也是實驗研究中常用的方法。第十五頁，共八十七頁。一(Yi)、動物實驗的常用方法7．生物電、活性觀察法對動物體各種生物電用電生理記錄儀進(jìn)行觀察記錄，如心電、肌電、腦電等；對動物組織中各種活動物質(zhì)用生物化學(xué)法測定，如各種酶，激素等。第十六頁，共八十七頁。一、動物實驗(Yan)的常用方法8．病理解剖學(xué)、組織學(xué)觀察法采用肉眼觀察、光鏡和電鏡檢查，來觀察、分析動物各種疾病時病理組織學(xué)改變?？蓮慕M織學(xué)的角度來探討疾病防治機(jī)理，例如通過闌尾組織切片和肉眼觀察，分析口服中藥、針刺或局部敷藥對有炎癥闌尾的影響，闡明不同證型時闌尾變化的病理學(xué)特點以及某些病人用中西醫(yī)結(jié)合非手術(shù)治療后復(fù)發(fā)的原因。第十七頁，共八十七頁。一、動物實驗的(De)常用方法

近年來由于電子顯微技術(shù)的進(jìn)展，不僅可以觀察到病變時細(xì)胞內(nèi)細(xì)胞器等亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)的變化，而且也可以運用電子掃描方法對動物器官的微小結(jié)構(gòu)進(jìn)行完整的表層觀察。第十八頁，共八十七頁。一、動物實驗的(De)常用方法9．免疫學(xué)觀察法注入抗原使動物致敏，制備各種抗血清，如常選用新西蘭或大白耳家兔制備病原體免疫血清、間接免疫血清、抗補體抗體血清、抗組織免疫血清等。采用免疫熒光技術(shù)、酶標(biāo)記免疫技術(shù)、放射免疫測定技術(shù)、免疫電鏡技術(shù)等對動物免疫后各種免疫變化進(jìn)行檢查。第十九頁，共八十七頁。一、動物實驗的常用方(Fang)法10．其它方法如聯(lián)體動物法，條件反射法、生物遺傳法、放射生物法、藥物化學(xué)法等等。動物實驗的基本操作技術(shù)方法，根據(jù)實驗順序分述如下：第二十頁，共八十七頁。二(Er)、實驗動物的抓取固定方法

正確的抓取固定動物，是為了不損害動物健康，不影響觀察指標(biāo)，并防止被動物咬傷，保證實驗順利進(jìn)行。抓取固定動物的方法依實驗內(nèi)容和動物類而定。第二十一頁，共八十七頁。二、實(Shi)驗動物的抓取固定方法（一）小鼠抓取固定方法（二）大鼠的抓取固定方法（三）蛙類的抓取固定方法（四）豚鼠的抓取固定方法（五）兔的抓取固定方法（六）狗的抓取固定方法可見實驗錄像中相關(guān)內(nèi)容。第二十二頁，共八十七頁。三、實(Shi)驗動物編號標(biāo)記方法

動物在實驗前常常需要作適當(dāng)?shù)姆纸M，那么就要將其標(biāo)記，使各組加以區(qū)別。標(biāo)記的方法很多，良好的標(biāo)記方法應(yīng)滿足標(biāo)號清晰、耐久、簡便、適用的要求。常用的標(biāo)記法有染色、耳緣剪孔、烙印、號牌等方法。第二十三頁，共八十七頁。三、實驗動物(Wu)編號標(biāo)記方法（一）顏料涂染這種標(biāo)記方法在實驗室最常使用，也很方便。使用的顏料一般有3-5%苦味酸（黃），2%硝酸銀（咖啡色）溶液和0.5%中性品紅（紅色）等。標(biāo)記時用毛筆或棉簽蘸取上述溶液，在動物體的不同部位涂上斑點，以示不同號碼。第二十四頁，共八十七頁。三、實驗動物(Wu)編號標(biāo)記方法

編號的原則是：先左后右，從上到下。一般把涂在左前腿上的計為1號，左側(cè)腹部計為2號，左后腿為3號，頭頂部計為4號，腰背部為5號，尾基部為6號，右前腿為7號，右側(cè)腰部為8號，右后腿計為9號。若動物編號超過10或更大數(shù)字時，可使用上述兩種不同顏色的溶液，即把一種顏色作為個位數(shù)，另一種顏色作為十位數(shù)，這種交互使用可編到99號，假使把紅的記為十位數(shù)，黃色記為個位數(shù)，那么右后腿黃斑，頭頂紅斑，則表示是49號鼠（見圖示），其余類推。第二十五頁，共八十七頁。顏色被毛涂擦標(biāo)記(Ji)法

第二十六頁，共八十七頁。三、實驗動物編號標(biāo)(Biao)記方法（二）烙印法用刺數(shù)鉗在動物耳上刺上號碼，然后用棉簽蘸著溶在酒精中的黑墨在刺號上加以涂抹，烙印前最好對烙印部位預(yù)先用酒精消毒。第二十七頁，共八十七頁。三、實驗動物編(Bian)號標(biāo)記方法（三）號牌法用金屬制的牌號固定于實驗動物的耳上，大動物可系于頸上。對猴、狗、貓等大動物有時可不做特別標(biāo)記，只記錄它們的外表和毛色即可。第二十八頁，共八十七頁。四、實驗動物的隨機(jī)分組(Zu)方法

動物實驗時，常常需要將選擇好的實驗動物，按研究需要分成若干個組，分組時為了避免人為的因素影響，常應(yīng)用隨機(jī)數(shù)字表進(jìn)行完全隨機(jī)化的分組。第二十九頁，共八十七頁。四、實驗動物的隨(Sui)機(jī)分組方法將實驗單位隨機(jī)分成兩組設(shè)有小鼠14只，試用隨機(jī)數(shù)字表將其分成兩組。先將小鼠依次編為1、2、3……14號，然后任意從隨機(jī)數(shù)字表的某一行某一數(shù)字開始抄錄14個數(shù)，編排如下（見下表），現(xiàn)令單數(shù)代表A組，雙數(shù)代表B組。第三十頁，共八十七頁。動物編號1234567891011121314隨機(jī)數(shù)目1622779439495443548217379323歸組BBABAABABBAAAA第三十一頁，共八十七頁。四、實驗動物(Wu)的隨機(jī)分組方法

結(jié)果列入A組的動物有8只，列入B組的動物有6只。如要使兩組相等，須將A組減少一只，劃入B組。應(yīng)把哪一只小鼠劃入B組，仍可用隨機(jī)數(shù)字表，在上述抄錄的14個數(shù)后面再抄錄一個數(shù)字為78，此數(shù)以8除之，因為歸入A組的小鼠有8只，故以8除，得余數(shù)6。于是把第6個A（即編寫為第12號的小鼠）劃給B組。第三十二頁，共八十七頁。A組3568111314B組124127910經(jīng)過這(Zhe)樣調(diào)整，兩組小鼠的分配如下：

第三十三頁，共八十七頁。五、實驗(Yan)動物被毛的去除方法

動物的被毛常能影響實驗操作和結(jié)果的觀察，因此實驗中常需去除或剪短動物的被毛。除毛的方法有剪毛、拔毛和脫毛三種。剪毛固定動物后，用粗剪刀剪去所需部位的被毛。剪毛時需注意以下幾點：第三十四頁，共八十七頁。五(Wu)、實驗動物被毛的去除方法⑴把剪刀貼緊皮膚剪，不可用手提起被毛，以免剪破皮膚；⑵依次剪毛，不要亂剪；⑶剪下的毛集中放在一個容器內(nèi)，勿遺留在手術(shù)野和兔臺周圍，以保證手術(shù)野的清潔和防止注射器等夾毛。第三十五頁，共八十七頁。五、實驗(Yan)動物被毛的去除方法拔毛：兔耳緣靜脈注射或取血時以及給大、小白鼠作尾靜脈注射時，需用拇指、食指將局部被毛拔去，以利操作。脫毛：脫毛系指用化學(xué)藥品脫去動物的被毛，適用于無菌手術(shù)野的準(zhǔn)備以及觀察動物局部皮膚血液循環(huán)和病理變化。第三十六頁，共八十七頁。五、實驗動物被毛的(De)去除方法常用脫毛劑的配方：⑴硫化鈉3g、肥皂粉1g，淀粉7g，加水適量調(diào)成糊狀。⑵硫化鈉8g、淀粉7g、糖4g、甘油5g、硼砂1g，加水75ml。⑶硫化鈉8g，溶于100ml水中。以上脫毛劑配方適用于家兔、大白鼠、小白鼠等小動物的脫毛。⑷硫化鈉10g、生石灰15g，溶于100ml水內(nèi)，此配方適用于狗等大動物的脫毛。第三十七頁，共八十七頁。五、實驗動物被毛的去除(Chu)方法

使用以上各種脫毛劑，都應(yīng)事先剪短被毛，以節(jié)省脫毛劑，并減少對皮膚的刺激反應(yīng)，應(yīng)用時用棉球蘸脫毛劑，在所需局部涂一薄層，2-3分鐘后，用溫水洗去脫落的被毛，以紗布擦干局部，涂一層油脂即可。第三十八頁，共八十七頁。六、實驗動物給藥途徑(Jing)和方法

給藥的途徑和方法是多種多樣的，可根據(jù)實驗?zāi)康?、實驗動物種類和藥物劑型等情況確定。

第三十九頁，共八十七頁。六、實驗(Yan)動物給藥途徑和方法（一）皮下注射（二）皮內(nèi)注射可見皮膚表面鼓起一小皮丘。（三）肌肉注射（四）腹腔注射（五）靜脈注射（六）淋巴囊注射第四十頁，共八十七頁。皮下(Xia)注射第四十一頁，共八十七頁。腹腔(Qiang)注射第四十二頁，共八十七頁。靜(Jing)脈注射第四十三頁，共八十七頁。六、實驗動物給藥途徑和(He)方法（七）經(jīng)口給藥（八）其它途徑給藥1．呼吸道給藥2．皮膚給藥3．脊髓腔內(nèi)給藥4．小腦延髓池給藥5．腦內(nèi)給藥6．直腸內(nèi)給藥7．關(guān)節(jié)腔內(nèi)給藥第四十四頁，共八十七頁。小鼠的灌胃給(Gei)藥第四十五頁，共八十七頁。注射途徑小鼠大鼠豚鼠兔狗腹腔0.2-1.01-32-55-105-15肌肉0.1-0.20.2-0.50.2-0.50.5-1.02-5靜脈0.2-0.51-21-53-105-15皮下0.1-0.50.5-1.00.5-21-33-10幾種動物不同給藥途徑的常用注(Zhu)射量（毫升）第四十六頁，共八十七頁。動物名稱項目灌胃皮下注射肌肉注射腹腔注射靜脈注射小白鼠最大給藥量使用針頭1ml9(鈍頭)0.4ml5(1/2)0.4ml5(1/2)1ml5(1/2)0.8ml4大白鼠最大給藥量使用針頭1ml靜脈切開針1ml60.4ml62ml64ml5豚鼠最大給藥量使用針頭3ml靜脈切開針1ml6(1/2)0.5ml6(1/2)4ml75ml5兔最大給藥量使用針頭20ml10號導(dǎo)尿管2ml6(1/2)2ml6(1/2)5ml710ml6貓最大給藥量使用針頭20ml10號導(dǎo)尿管20ml72ml75ml710ml6蛙淋巴囊注射最大注射量1ml/只常用實驗動物的最大給(Gei)藥量和使用針頭規(guī)格

第四十七頁，共八十七頁。七、實驗(Yan)動物用藥量的確定及計算方法

（一）動物給藥量的確定在觀察一個藥物的作用時，應(yīng)該給動物多大的劑量是實驗開始時應(yīng)確定的一個重要問題。劑量太小，作用不明顯，劑量太大，又可能引起動物中毒致死，可以按下述方法確定動物的給藥劑量：第四十八頁，共八十七頁。七、實驗動物用(Yong)藥量的確定及計算方法

1．先用小鼠粗略地探索中毒劑量或致死劑量，然后用小于中毒量的劑量，或取致死量的若干分之一為應(yīng)用劑量，一般可取1/10-1/5。

第四十九頁，共八十七頁。七、實驗動物用藥量的確定及(Ji)計算方法

2．植物藥粗制劑的劑量多按生藥折算。3．化學(xué)藥品可參考化學(xué)結(jié)構(gòu)相似的已知藥物，特別是化學(xué)結(jié)構(gòu)和作用都相似的藥物的劑量。第五十頁，共八十七頁。七、實驗動物用藥量的確定及計(Ji)算方法

4．確定劑量后，如第一次實驗的作用不明顯，動物也沒有中毒的表現(xiàn)（體重下降、精神不振、活動減少或其他癥狀），可以加大劑量再次實驗。如出現(xiàn)中毒現(xiàn)象，作用也明顯，則應(yīng)降低劑量再次實驗。第五十一頁，共八十七頁。七、實驗動物用藥量的(De)確定及計算方法

在一般情況下，在適宜的劑量范圍內(nèi)，藥物的作用常隨劑量的加大而增強。所以有條件時，最好同時用幾個劑量作實驗，以便迅速獲得關(guān)于藥物作用的較完整的資料。如實驗結(jié)果出現(xiàn)劑量與作用強度之間毫無規(guī)律時，則更應(yīng)慎重分析。第五十二頁，共八十七頁。七、實驗動物用藥量的確定及計(Ji)算方法

5．用大動物進(jìn)行實驗時，開始的劑量可采用給鼠類劑量的十五分之一～二分之一，以后可根據(jù)動物的反應(yīng)調(diào)整劑量。第五十三頁，共八十七頁。七、實驗動物用藥量的確定及計算(Suan)方法

6．確定動物給藥劑量時，要考慮給藥動物的年齡大小和體質(zhì)強弱。一般說確定的給藥劑量是指成年動物的，如是幼小動物，劑量應(yīng)減少。如以狗為例：6個月以上的狗給藥量為1份時，3-6個月的給1/2份，45-89日1/4份，20-44日的給1/8份，10-19日的給1/16份。第五十四頁，共八十七頁。七、實驗動(Dong)物用藥量的確定及計算方法

7．確定動物給藥劑量時，要考慮因給藥途徑不同，所用劑量也不同，以口服量為100時，灌腸量應(yīng)為100-200，皮下注射量30-50，肌肉注射量為25-30，靜脈注射量為25。第五十五頁，共八十七頁。七、實驗動物用藥量的確定及(Ji)計算方法

（二）實驗動物用藥量的計算方法動物實驗所用的藥物劑量，一般按mg/kg體重或g/kg體重計算，應(yīng)用時須從已知藥液的濃度換算出相當(dāng)于每kg體重應(yīng)注射的藥液量（ml數(shù)），以便給藥。第五十六頁，共八十七頁。七、實驗動物用藥量的確定(Ding)及計算方法

例1：計算給體重1.8kg的家兔靜脈注射20%氨基甲酸乙酯溶液麻醉，按1g/kg的劑量注射，應(yīng)注射多少ml？計算方法：兔劑量1g/kg，注射液為20％，則氨基甲酸乙酯溶液的注射量應(yīng)為5ml/kg，現(xiàn)在兔體重為1.8kg，應(yīng)注射20%氨基甲酸乙酯溶液用量=5×1.8=9ml。第五十七頁，共八十七頁。七、實驗動物用藥量的確定及計算(Suan)方法

例2：計算給體重23g的小白鼠，注射鹽酸嗎啡15mg/kg，溶液濃度為0.1%，應(yīng)注射多少ml？計算方法：小白鼠需嗎啡量為15mg/kg，則0.1%鹽酸嗎啡溶液的注射量應(yīng)為15ml/kg，現(xiàn)小白鼠體重為23g，應(yīng)注射0.1%鹽酸嗎啡溶液的用量=15×0.023=0.345ml。第五十八頁，共八十七頁。七、實驗動物用藥量的(De)確定及計算方法

（三）人與動物及各類動物間藥物劑量的換算方法1．人與動物用藥量換算

人與動物對同一藥物的耐受性相差很大。一般說來，動物的耐受性要比人大，也就是單位體重的用藥量動物比人大。人的各種藥物的用量在很多書上可以查得，但動物用藥量可查的書較少，而且動物用的藥物種類遠(yuǎn)不如人用的那么多。第五十九頁，共八十七頁。七、實驗(Yan)動物用藥量的確定及計算方法

因此，必須將人的用藥量換算成動物的用藥量。一般可按下列比例換算：人用藥量為1，小白鼠、大白鼠為25-50，兔、豚鼠為15-20，狗、貓為5-10。此外，可以采用人與動物的體表面積計算法來換算。第六十頁，共八十七頁。七、實驗動物用藥量的(De)確定及計算方法

2．人及不同種類動物之間藥物劑量的換算（1）直接計算法

即按：

第六十一頁，共八十七頁。七(Qi)、實驗動物用藥量的確定及計算方法

例：某利尿藥大白鼠灌給藥時的劑量為250mg/kg，試粗略估計狗灌胃給藥時可以試用的劑量。解：實驗用大白鼠的體重一般在200g左右，其體表面積（A）為：

第六十二頁，共八十七頁。七、實驗(Yan)動物用藥量的確定及計算方法

250mg/kg的劑量如改以mg/m2表示，即為：第六十三頁，共八十七頁。七、實驗動物(Wu)用藥量的確定及計算方法

實驗用狗的體重一般在10kg左右，其體表面積（A）為：第六十四頁，共八十七頁。七、實驗動(Dong)物用藥量的確定及計算方法

(2)按人與各種動物以及各種動物之間用藥劑量換算已知A種動物每kg體重用藥量，欲估算B種動物每kg體重用藥劑量時，可先查表找出折算系數(shù)(W)，再按下式計算：

B種動物的劑量(mg/kg)=W×A種動物的劑量(mg/kg)第六十五頁，共八十七頁。七、實驗動物用(Yong)藥量的確定及計算方法

例如：已知某藥對小鼠的最大耐受量為20mg/kg（20g小鼠用0.4mg），需折算為家兔的用藥量。查A種動物為小鼠，B種動物為兔，交叉點為折算系數(shù)W=0.37，故家兔用藥量為0.37×20mg/kg=7.4mg/kg，1.5kg家兔用藥量為11.1mg。第六十六頁，共八十七頁。折算系數(shù)WA組動物或成人小白鼠(20g)大白鼠0.2Kg豚鼠0.4Kg家兔1.5kg貓2.0kg狗12kg人60kgB種動物或成人小白鼠20g1.01.61.62.73.24.89.01大白鼠0.2Kg0.71.01.141.882.33.66.25豚鼠0.4Kg0.610.871.01.652.053.05.55家兔1.5kg0.370.520.61.01.231.762.30貓2.0kg0.300.420.480.811.01.442.70狗12kg0.210.280.340.560.681.01.88人60kg0.110.160.180.3040.3710.5311.0動物與人體的每公(Gong)斤體重劑量折算系數(shù)表

第六十七頁，共八十七頁。八、實驗動物(Wu)的麻醉(一)常用的麻醉劑1.揮發(fā)性麻醉劑2．非揮發(fā)性麻醉劑3．中藥麻醉劑（二）動物的麻醉方法1．全身麻醉2．局部麻醉第六十八頁，共八十七頁。麻醉劑動物給藥方法劑量(mg/kg)常用濃度%維持時間戊巴比妥鈉狗、兔靜脈3032-4小時中途加上1/5量，可維持1小時以上，麻醉力強，易抑制呼吸。腹腔40-503大小鼠、豚鼠腹腔40-502硫噴妥鈉狗、兔靜脈15-20215-30分鐘，麻醉力強，宜緩慢注射。大白鼠腹腔401小白鼠腹腔15-201氯醛糖兔靜脈80-10023-4小時，誘導(dǎo)期不明顯大白鼠腹腔502烏拉坦兔靜脈750-1000302-4小時，毒性小，主要適用小動物的麻醉。大小鼠皮下或肌肉800-100020蛙淋巴囊注射0.1ml/100g20-25蟾蜍淋巴囊注射1ml/100g10常用麻(Ma)醉劑的用法及劑量

第六十九頁，共八十七頁。九、實驗動物(Wu)采血方法采血方法的選擇主要決定于實驗?zāi)康乃柩恳约皠游锓N類。凡用血量較少的檢驗如紅、白細(xì)胞計數(shù)、血紅蛋白的測定，血液涂片以及酶活性微量分析法等，可刺破組織取毛細(xì)血管的血。當(dāng)需血量較多時可作靜脈采血。第七十頁，共八十七頁。九、實驗動(Dong)物采血方法采血時要注意：⑴采血場應(yīng)有充足的光線；室溫夏季最好保持在25-28℃，冬季，15-20℃為宜；⑵采血用具及采血部位一般需要進(jìn)行消毒；⑶采血用的注射器和試管必須保持清潔干燥；⑷若需抗凝全血，在注射器或試管內(nèi)需預(yù)先加入抗凝劑。第七十一頁，共八十七頁。動物品種最大安全采血量(ml)最小致死采血量(ml)小鼠0.20.3大鼠12豚鼠510兔1040狼狗100500獵狗50200猴1560常用實驗(Yan)動物的最大安全采血量與最小的致死采血量

第七十二頁，共八十七頁。九、實驗動物采(Cai)血方法(一)小鼠、大鼠采血法1.割(剪)尾采血2.鼠尾刺血法3.眼眶靜脈叢采血4.斷頭取血5.心臟采血6.頸動、靜脈采血7.腹主動脈采血8.股動（靜）脈采血第七十三頁，共八十七頁。九、實驗(Yan)動物采血方法（二）豚鼠采血法1.耳緣剪口采血2.心臟采血3.股動脈采血4.背中足靜脈取血第七十四頁，共八十七頁。九、實驗動物采血方(Fang)法（三）兔采血法1.耳靜脈采血2.耳中央動脈采血3.心臟取血4.后肢脛部皮下靜脈取血第七十五頁，共八十七頁。十、急性動物(Wu)實驗中常用的手術(shù)方法

急性動物實驗中常以血壓、呼吸等為指標(biāo)，以靜脈注射、放血等為實驗方法。需要暴露氣管、頸總動脈，頸外靜脈，股動脈，股靜脈，并做相應(yīng)的插管，以及分離迷走神經(jīng)，減壓神經(jīng)及股神經(jīng)等。因此手術(shù)主要在頸部及股部進(jìn)行，第七十六頁，共八十七頁。十、急性動物實驗中常用的手術(shù)方(Fang)法（一）兔、狗頸部手術(shù)動物麻醉動物固定氣管及頸部血管神經(jīng)分離術(shù)⑴氣管暴露術(shù)⑵頸總動脈分離術(shù)⑶頸部迷走、交感、減壓神經(jīng)分離術(shù)⑷頸外靜脈暴露術(shù)第七十七頁，共八十七頁。十、急性動物(Wu)實驗中常用的手術(shù)方法4.氣管及頸部血管插管術(shù)⑴氣管插管術(shù)⑵頸總動脈插管術(shù)⑶頸外靜脈插管術(shù)（二）兔、狗股部手術(shù)股動脈插管術(shù)股靜脈插管術(shù)第七十八頁，共八十七頁。十一、實(Shi)驗動物的急救措施

當(dāng)實驗進(jìn)行中因麻醉過量、大失血、過強的創(chuàng)傷、窒息等各種原因，而使動物血壓急劇下降甚至測不到。呼吸極慢而不規(guī)則甚至呼吸停止、角膜反射消失等臨床死亡癥狀時，應(yīng)立即進(jìn)行急救。急救的方法可根據(jù)動物情況而定。第七十九頁，共八十七頁。十一、實驗動物的(De)急救措施對狗、兔、貓常用的急