融合蛋白標(biāo)簽

1、在蛋白質(zhì)功能及結(jié)構(gòu)爭辯過程中，爭辯的首要任務(wù)就是利用多種方法獲得純化的具有完整結(jié)構(gòu)及生物學(xué)功能并能夠正確折疊的高度純化蛋白質(zhì)。除了蛋白質(zhì)的爭辯，具有特定生物活性的高價值蛋白質(zhì)的生產(chǎn)也需要對蛋白質(zhì)產(chǎn)品進行純化。因此，科研人員和工業(yè)生產(chǎn)往往大量接受多種多樣的表達系統(tǒng)來獲得高表達的蛋白質(zhì)，對其純化后進行爭辯或加工，這些表達系統(tǒng)包括原核表達系統(tǒng)、酵母菌表達系統(tǒng)、昆蟲動物細(xì)胞表達系統(tǒng)、真核細(xì)胞表達系統(tǒng)等。  如何將系統(tǒng)中表達的目標(biāo)蛋白質(zhì)與其他蛋白分別，始終是表達純化中的一個重點。為了克聽從簡單樣品中純化單一蛋白質(zhì)這種困難，科學(xué)家利用生物物質(zhì)，特殊是酶和抗體等蛋白質(zhì)，具有識別某種特定物

2、質(zhì)并與該物質(zhì)分子特異性結(jié)合的力量，利用生物分子間的這種特異性結(jié)合力量而形成的親和純化技術(shù)。親和標(biāo)簽純化技術(shù)已廣泛應(yīng)用于蛋白質(zhì)，特殊是重組蛋白的分別純化中。在重組蛋白的親和純化中，利用基因工程技術(shù)，將經(jīng)過改造優(yōu)化的親和標(biāo)簽與目標(biāo)蛋白融合表達，通過一步簡潔快速的親和層析，直接獲得純度較高的重組融合蛋白，已成為重組蛋白純化的一個通用方法，具有結(jié)合特異性高、純化步驟簡便、純化條件溫存、適用性廣泛等優(yōu)點，為蛋白質(zhì)的有效純化供應(yīng)了一條解決的途徑，廣泛應(yīng)用于蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)與功能的爭辯及重組蛋白純化工藝的開發(fā)中。自從20世紀(jì)70年月中期融合標(biāo)簽技術(shù)消滅以來， 親和標(biāo)簽已成為一種重組蛋白純化格外有效的工具，具有結(jié)合

3、特異性高、純化條件溫存、純化步驟簡便、適用性廣泛等顯著優(yōu)勢。通常，親和標(biāo)簽定義為對特定的生物或化學(xué)配基具有高度親和力的一段氨基酸序列。到目前為止，已經(jīng)消滅了種類眾多、功能各異、用途多樣的親和標(biāo)簽，極大地促進了對重組蛋白的有效純化。依據(jù)自身分子量大小的不同，親和標(biāo)簽可以分為兩大類：一類是結(jié)合固定化配基的短肽標(biāo)簽，如His-tag、FLAG-tag、Strep-tag等；另一類是識別小分子配基的蛋白標(biāo)簽，如GST、MBP等。短肽標(biāo)簽：His-tag：His標(biāo)簽是目前高通量蛋白純化最普遍使用的親和標(biāo)簽，廣泛用于多種重組蛋白在各種表達系統(tǒng)的表達與純化中。His標(biāo)簽一般為515個組氨酸，被認(rèn)為是重組蛋白

4、純化的首選標(biāo)簽，具有以下優(yōu)點：（1）位于目標(biāo)蛋白端的His標(biāo)簽與細(xì)菌的轉(zhuǎn)錄翻譯機制相互兼容，利于蛋白的表達；（2）His標(biāo)簽幾乎不影響目標(biāo)蛋白的理化性質(zhì)；（3）His標(biāo)簽很小，不會轉(zhuǎn)變目標(biāo)蛋白的可溶性；（4）His標(biāo)簽在目標(biāo)蛋白結(jié)晶后對蛋白結(jié)構(gòu)幾乎沒有影響；（5）接受固定化金屬離子親和層析純化His標(biāo)簽融合蛋白時，其操作格外簡便?；谏鲜鰞?yōu)點，幾乎全部的大型結(jié)構(gòu)基因組爭辯中心都把純化His標(biāo)簽融合蛋白的固定化金屬離子親和層析（immobilized metal-ion affinity chromatography，IMAC）作為主要的蛋白純化方法。  然而，并不是全部的蛋

5、白質(zhì)都可以與His標(biāo)簽融合后，接受固定化金屬離子親和層析分別純化。宿主蛋白中含有半胱氨酸及自然發(fā)生的組氨酸豐富區(qū)域，在固定化金屬離子親和層析時可能會導(dǎo)致其他蛋白的非特異性結(jié)合；目標(biāo)蛋白含有金屬離子，一般也不接受His標(biāo)簽與固定化金屬離子親和層析。 FLAG-tag：除了His標(biāo)簽外，另一個廣泛使用的小分子短肽標(biāo)簽是FLAG標(biāo)簽。FLAG標(biāo)簽是由8個氨基酸（DYKDDDDK）組成的一個短肽，分子量很小，因而不會遮蓋融合蛋白中其他的蛋白表位與結(jié)構(gòu)域，也不會轉(zhuǎn)變?nèi)诤系鞍椎墓δ?、分泌或運輸。該標(biāo)簽具有自然的親水特性，很簡潔定位于融合蛋白的表面，便于利用抗體檢測；同時含有一個腸激酶切割位點（D

6、DDK），可以利用腸激酶切除標(biāo)簽。FLAG標(biāo)簽有3個特異性的單克隆抗體，分別為M1單抗、M2單抗、M5單抗。FLAG短肽合成成本較高，不適用于大規(guī)模純化，且需要額外步驟除去結(jié)合在層析介質(zhì)上的短肽。Strep-tag ：與His-tag、FLAG-tag相像，Strep-tag 也是一個小分子的短肽標(biāo)簽，廣泛用于多種目標(biāo)蛋白在原核表達系統(tǒng)、哺乳動物細(xì)胞表達系統(tǒng)等的表達與純化中。在自然界中，鏈霉親和素（streptavidin）與生物素（biotin）之間存在著格外猛烈的非共價相互作用，其生物學(xué)上的解離常數(shù)極低；即使生物素與其他蛋白質(zhì)共價結(jié)合之后，兩者仍可以相互作用?；谶@兩者之間的猛烈相互作用，

7、運用一系列蛋白質(zhì)工程手段，通過對短肽文庫的篩選，第一個鏈霉親和素結(jié)合肽應(yīng)運而生，即Strep-tag，極大地便利了重組蛋白的一步快速親和純化。然而，Strep-tag與鏈霉親和素結(jié)合時需要一個自由的羧基末端，因而該標(biāo)簽只能位于目標(biāo)蛋白的C端，限制了它的應(yīng)用范圍。在Strep-tag的基礎(chǔ)上，通過對合成短肽的篩選，獲得了一個與其相像、由個氨基酸（WSHPQFEK）組成的鏈霉親和素結(jié)合肽，即Strep-tag，可以位于融合蛋白的任意位置，從而彌補了Strep-tag的不足。同時，通過對鏈霉親和素特定氨基酸的定向突變，獲得了與Strep-tag具有更高親和力的親和介質(zhì)Strep-tactin，在St

8、rep-tag融合蛋白的親和純化中表現(xiàn)出良好的純化效果，且蛋白質(zhì)產(chǎn)量較高，所需成本適中。Strep-tag系統(tǒng)的純化條件比較寬泛，在一般緩沖液下就可與strep-Tactin層析介質(zhì)結(jié)合，使用2.5mmol/L的脫硫生物素就可將Strep-tag融合蛋白洗脫下來，螯合劑、去污劑、還原劑 及高達1mol/L的鹽均可加入到緩沖液中。此外，Strep-tag 在純化過程中不依靠金屬離子，格外適合含金屬離子蛋白質(zhì)的純化。蛋白標(biāo)簽：GST：GST標(biāo)簽由211個氨基酸組成，大小約為26kDa，是目前廣泛用于重組蛋白融合表達與親和純化的一種蛋白標(biāo)簽。大量的表達試驗發(fā)覺，外源蛋白在大腸桿菌表達系統(tǒng)中過量表達時

9、，常會以包涵體的形式形成不溶性的聚合體，大大降低了可溶性重組蛋白的產(chǎn)量，增加了后續(xù)蛋白分別純化的難度。 然而，在融合GST標(biāo)簽進行原核表達的過程中發(fā)覺，原 本用于親和純化的GST標(biāo)簽?zāi)茉诳隙ǔ潭壬显龃笕诤系鞍椎目扇苄裕谷诤系鞍滓钥扇苄问酱嬖谟诩?xì)胞質(zhì)中，不僅促進了目標(biāo)蛋白的正確折疊，提高了蛋白產(chǎn)量，而且有助于后續(xù)的蛋白純化。除了增大融合蛋白的可溶性之外，GST標(biāo)簽還具有高效的翻譯起始、純化條件溫存、親和樹脂成本相對低廉等顯著優(yōu)點，成為重組蛋白融合表達經(jīng)常使用的親和標(biāo)簽。 MBP：MBP標(biāo)簽由大腸桿菌K12的malE基因編碼的396個氨基酸組成，大小約為40kDa，是除了GST標(biāo)簽之外

10、又一個很好的增大融合蛋白可溶性的蛋白標(biāo)簽。MBP標(biāo)簽?zāi)軌蛟龃笤谠吮磉_系統(tǒng)中過量表 達的融合蛋白的可溶性，提高其表達量，已在多個表達試驗中得到確認(rèn)。爭辯發(fā)覺，當(dāng)轉(zhuǎn)變MBP“開放”與“關(guān)閉”構(gòu)象之間的平衡時，MBP增大融合蛋白可溶性的力量將受到明顯影響，表明 MBP增大融合蛋白可溶性的特性是由其“開放”構(gòu)象所介導(dǎo)；同時，對MBP配基結(jié)合間隙中保守的疏水性氨基酸殘基進行定向突變，MBP表現(xiàn)出相像的表型，表明這個配基結(jié)合間隙在MBP增大融合蛋白可溶性的機制中具有肯定的作用。然而，從蛋白純化的角度來看，MBP標(biāo)簽并不是一個最有效的親和標(biāo)簽；在某些狀況下，MBP標(biāo)簽并不能特異性地與親和樹脂有效結(jié)合，親和

11、層析后融合蛋白的純度也并不合適。  自從上世紀(jì)70年月中期親和標(biāo)簽融合技術(shù)消滅以來，多種多樣的短肽或蛋白親和標(biāo)簽極大地便利了外源表達重組蛋白的分別與蛋白質(zhì)復(fù)合體的純化，已成為蛋白質(zhì)爭辯領(lǐng)域不行或缺的工具。一般而言，一個完善的親和標(biāo)簽應(yīng)當(dāng)具備以下特性：（1）能夠用于純 化任何表達宿主或表達系統(tǒng)所表達的重組蛋白；（2）可以位于目標(biāo)蛋白的任意位置而不影響其結(jié)構(gòu)；（3）增大目標(biāo)蛋白的可溶性，促進其正確折疊，提高蛋白表達量；（4）便于重組蛋白的檢測。目前，商品化的親和標(biāo) 簽已具備其中諸多特性，但性能更加優(yōu)越、純化效果更加顯著的親和標(biāo)簽仍需不斷查找與開發(fā)。 重組蛋白表達技術(shù)現(xiàn)

12、已經(jīng)廣泛應(yīng)用于生物學(xué)各個具體領(lǐng)域。特殊是體內(nèi)功能爭辯和蛋白質(zhì)的大規(guī)模生產(chǎn)都需要應(yīng)用重組蛋白表達載體。美國GeneCopoeia的蛋白表達載體依據(jù)表達宿主的不同新推出3類，分別為表達宿主為大腸桿菌，哺乳動物細(xì)胞的，以及慢病毒載體，宿主可以為哺乳動物細(xì)胞和原代細(xì)胞。除了必要的復(fù)制和篩選的元件，幫忙表達和翻譯的元件外，本文將各類載體分別依據(jù)功能標(biāo)簽的不同確定種類并將個標(biāo)簽的功能初步介紹如下：His6：His6是指六個組氨酸殘基組成的融合標(biāo)簽，可插入在目的蛋白的C末端或N末端。當(dāng)某一個標(biāo)簽的使用，一是能構(gòu)成表位利于純化和檢測；二是構(gòu)成獨特的結(jié)構(gòu)特征（結(jié)合配體）利于純化。組氨酸殘基側(cè)鏈與固態(tài)的鎳有猛烈的

13、吸引力，可用于固定化金屬螯合層析(IMAC)，對重組蛋白進行分別純化。使用His-tag有下面優(yōu)點：1.標(biāo)簽的分子量小，只有0.84KD，而GST和蛋白A分別為26KD和30KD，一般不影響目標(biāo)蛋白的功能；2.His標(biāo)簽融合蛋白可以在非離子型表面活性劑存在的條件下或變性條件下純化，前者在純化疏水性強的蛋白得到應(yīng)用，后者在純化包涵體蛋白時特殊有用，用高濃度的變性劑溶解后通過金屬螯和親和層析去除雜蛋白，使復(fù)性不受其它蛋白的干擾，或進行金屬螯和親和層析復(fù)性；3.His標(biāo)簽融合蛋白也被用于蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)、蛋白質(zhì)-DNA相互作用爭辯；4.His標(biāo)簽免疫原性相對較低，可將純化的蛋白直接注射動物進行免疫制備

14、抗體；5.可應(yīng)用于多種表達系統(tǒng)，純化的條件溫存；6.可以和其它的親和標(biāo)簽一起構(gòu)建雙親和標(biāo)簽。Flag:Flag標(biāo)簽蛋白為編碼8個氨基酸的親水性多肽（DYKDDDDK），同時載體中構(gòu)建的Kozak序列使得帶有FLAG的融合蛋白在真核表達系統(tǒng)中表達效率更高。FLAG作為標(biāo)簽蛋白，其融合表達目的蛋白后具有以下優(yōu)點：1.FLAG作為融合表達標(biāo)簽，其通常不會與目的蛋白相互作用并且通常不會影響目的蛋白的功能、性質(zhì)，這樣就有利用爭辯人員對融合蛋白進行下游爭辯。2.融合FLAG的目的蛋白，可以直接通過FLAG進行親和層析，此層析為非變性純化，可以純化有活性的融合蛋白，并且純化效率高。3.FLAG作為標(biāo)簽蛋白，

15、其可以被抗FLAG的抗體識別，這樣就便利通過Western Blot、ELISA等方法對含有FLAG的融合蛋白進行檢測、鑒定。4.融合在N端的FLAG，其可以被腸激酶切除（DDDK），從而得到特異的目的蛋白。因此現(xiàn)FLAG標(biāo)簽已廣泛的應(yīng)用于蛋白表達、純化、鑒定、功能爭辯及其蛋白相互作用等相關(guān)領(lǐng)域。MBP:MBP（麥芽糖結(jié)合蛋白）標(biāo)簽蛋白大小為40kDa，由大腸桿菌K12的malE基因編碼。MBP可增加在細(xì)菌中過量表達的融合蛋白的溶解性，尤其是真核蛋白。MBP標(biāo)簽可通過免疫分析很便利地檢測。有必要用位點專一的蛋白酶切割標(biāo)簽。假如蛋白在細(xì)菌中表達，MBP可以融合在蛋白的N端或C端。純化：融合蛋白可

16、通過交聯(lián)淀粉親和層析一步純化。結(jié)合的融合蛋白可用10mM麥芽糖在生理緩沖液中進行洗脫。結(jié)合親和力在微摩爾范圍。一些融合蛋白在0.2% Triton X-100或0.25% Tween 20存在下不能有效結(jié)合，而其他融合蛋白則不受影響。 緩沖條件為pH7.0到8.5，鹽濃度可高達1M，但不能使用變性劑。假如要去除MBP融合部分，可用位點特異性蛋白酶切除。檢測：可用MBP抗體或表達的目的蛋白特異性抗體檢測。GST:GST(谷胱甘肽巰基轉(zhuǎn)移酶) 標(biāo)簽蛋白本身是一個在解毒過程中起到重要作用的轉(zhuǎn)移酶，它的自然大小為26KD。將它應(yīng)用在原核表達的緣由大致有兩個，一個是由于它是一個高度可溶的蛋白，期望可以利

17、用它增加外源蛋白的可溶性；另一個是它可以在大腸桿菌中大量表達，起到提高表達量的作用。GST融合表達系統(tǒng)廣泛應(yīng)用于各種融合蛋白的表達，可以在大腸桿菌和酵母菌等宿主細(xì)胞中表達。結(jié)合的融合蛋白在非變性條件下用10mM 還原型谷胱甘肽洗脫。在大多數(shù)狀況下，融合蛋白在水溶液中是可溶的，并形成二體。GST標(biāo)簽可用酶學(xué)分析或免疫分析很便利的檢測。標(biāo)簽有助于愛護重組蛋白免受胞外蛋白酶的降解并提高其穩(wěn)定性。在大多數(shù)狀況下GST融合蛋白是完全或部分可溶的。純化：該表達系統(tǒng)表達的GST標(biāo)簽蛋白可直接從細(xì)菌裂解液中利用含有還原型谷胱甘肽瓊脂糖凝膠(Glutathionesepharose)親和樹脂進行純化。GST標(biāo)簽

18、蛋白可在溫存、非變性條件下洗脫，因此保留了蛋白的抗原性和生物活性。GST在變性條件下會失去對谷胱甘肽樹脂的結(jié)合力量，因此不能在純化緩沖液中加入強變性劑如：鹽酸胍或尿素等。假如要去除GST融合部分，可用位點特異性蛋白酶切除。檢測：可用GST抗體或表達的目的蛋白特異性抗體檢測。HAHA標(biāo)簽蛋白，標(biāo)簽序列YPYDVPDYA，源于流感病毒的紅細(xì)胞凝集素表面抗原打算簇，9個氨基酸，對外源靶蛋白的空間結(jié)構(gòu)影響小, 簡潔構(gòu)建成標(biāo)簽蛋白融合到N端或者C端。易于用AntiHA抗體檢測和ELISA檢測。c-MycC-Myc標(biāo)簽蛋白，是一個含11個氨基酸的小標(biāo)簽，標(biāo)簽序列Glu-Gln-Lys-Leu-Ile-Se

19、r-Glu-Glu-Asp-Leu，這11個氨基酸作為抗原表位表達在不同的蛋白質(zhì)框架中仍可識別其相應(yīng)抗體。C-Myc tag已成功應(yīng)用在 Western-blot雜交技術(shù)、免疫沉淀和流式細(xì)胞計量術(shù)中, 可用于檢測重組蛋白質(zhì)在靶細(xì)胞中的表達。eGFP/eCFP/eYFP/mCherry分別是增加型綠色熒光蛋白/增加型黃綠色熒光蛋白/增加型黃綠色熒光蛋白/單體紅色熒光蛋白,具有不同的激發(fā)波長放射波長為，均由野生型熒光蛋白通過氨基酸突變和密碼子優(yōu)化而來。就eGFP而言，相對于GFP，其熒光強度更強、熒光性質(zhì)更穩(wěn)定。同時載體中構(gòu)建的Kozak序列使得含有eGFP的融合蛋白在真核表達系統(tǒng)中表達效率更高。

20、mCherry是從DsRed演化來的性能最好的一個單體紅色熒光蛋白，可以和GFP系列熒光蛋白共用，實現(xiàn)多色標(biāo)記體內(nèi)、外試驗表明，mCherry在N端和C端融合外源蛋白時，熒光蛋白活性和被融合的目標(biāo)蛋白功能相互沒有明顯影響。 這些熒光標(biāo)簽蛋白，其融合表達目的蛋白后具有以下優(yōu)點：1.不用裂開組織細(xì)胞和不加任何底物，直接通過熒光顯微鏡就能在活細(xì)胞中發(fā)出綠色熒光，實時顯示目的基因的表達狀況，而且熒光性質(zhì)穩(wěn)定，被譽為活細(xì)胞探針。2.其自發(fā)熒光，不需用目的基因的抗體或原位雜交技術(shù)就可推知目的基因在細(xì)胞中的定位等狀況。3.同時細(xì)胞內(nèi)的其它產(chǎn)物不會干擾標(biāo)簽蛋白檢測，從而使其檢測更顯得快速、簡便、靈敏度高而且重

21、現(xiàn)性。4.其低消耗、高靈敏度檢測，格外適用于高通量的藥物篩選。因此現(xiàn)eGFP 表達標(biāo)簽被廣泛地應(yīng)用于基團表達調(diào)控、轉(zhuǎn)基因功能爭辯、蛋白在細(xì)胞中的功能定位、遷移變化及藥物篩選等方面。5.mCherry紅色熒光蛋白在標(biāo)記病毒顆粒，爭辯病毒和宿主細(xì)胞之間更有得天獨厚的優(yōu)勢。如用mRFP或mCherry標(biāo)記HIV病毒顆粒，爭辯H1V和宿主細(xì)胞問的相互作用以及HIV侵染宿主細(xì)胞的過程用mRFP標(biāo)記慢病毒顆粒，爭辯慢病毒在小鼠體內(nèi)的復(fù)制過程等。熒光素酶來源于生物體內(nèi)的熒光素，常見的有螢火蟲熒光素酶、海腎熒光素酶和Guassia熒光素酶。這些熒光素酶作為“報告蛋白”被用于分子生物學(xué)爭辯中，這種技術(shù)被稱為報告

22、基因檢測法或螢光素酶檢測法（Luciferase Assay）。跟一般融合蛋白標(biāo)簽不同，使用熒光素酶構(gòu)建的報告基因可用作目的基因的定量分析。因此常用于爭辯啟動子、miRNA 3'UTR克隆的功能與調(diào)控，由于它們對目的基因的調(diào)控可以是漸變的，而不是簡潔的開和關(guān)兩種狀態(tài)。優(yōu)點：靈敏度高，檢測幅度寬；不是哺乳動物細(xì)胞內(nèi)源性基因；重復(fù)性好；與HTS兼容等。螢火蟲和海腎熒光素酶已經(jīng)被廣泛應(yīng)用于協(xié)同報告并進行均一化爭辯。由于它們都是快速，簡潔和高靈敏的監(jiān)測方法。而且螢火蟲和海腎熒光素酶是抱負(fù)的雙基因報告系統(tǒng)，由于它們來源于不同的生物進化方向，蛋白結(jié)構(gòu)和底物差異都很大，在試驗中不會產(chǎn)生相互影響?；?/p>

23、熒光素酶的特性，我司研發(fā)供應(yīng)的Secrete-Pair? Dual Luminescence Assay Kit可用于分析雙報告系統(tǒng)中Gaussia熒光素酶（GLuc）和分泌型堿性磷酸酶(SEAP)活性。GLuc 和SEAP均為分泌型報告蛋白，無需裂解細(xì)胞即可便捷的從細(xì)胞培育液中取得樣本，并對試驗結(jié)果進行精準(zhǔn)的實時分析。Avi TagAviTag標(biāo)簽蛋白是一個15 個氨基酸的短肽，具有一個單生物素化賴氨酸位點，與已知自然可生物素化序列完全不同，可以加在目標(biāo)蛋白的N端和C端。融合表達后，可被生物素連接酶生物素化，為了純化重組蛋白選用低親和性的單體抗生物素蛋白或抗生物素蛋白衍生物，除了用于蛋白質(zhì)分

24、別純化，還用于蛋白質(zhì)相互作用爭辯。Avi Tag標(biāo)簽系統(tǒng)具有以下幾大優(yōu)點:1.無論在體外或者體內(nèi)，幾乎全部的蛋白都可以在一個獨特的Avi Tag位點輕易且有效地被生物素化；2.生物素化是通過酶和底物的反應(yīng)來實現(xiàn)，反應(yīng)條件相當(dāng)溫存而且標(biāo)記的專一性極高；3.生物素AviTag只有15個氨基酸，對蛋白空間結(jié)構(gòu)的影響格外小。SNAP-TagSNAP-Tag是新一代的蛋白標(biāo)簽技術(shù)，不僅專一性極高而且穩(wěn)定，最大的優(yōu)點是適用于多種環(huán)境下的蛋白質(zhì)檢測與純化，如活細(xì)胞內(nèi)、溶液中、或固態(tài)相(如SDS-PAGE gels)等。SNAP-Tag是從人的O6-甲基鳥嘌呤-DNA甲基轉(zhuǎn)移（O6-alkylguanine-DNA-alkyltransferase）獲得。無論體內(nèi)還是體外，SNAP-Tag都能與底物高特異性地共價結(jié)合，使蛋白標(biāo)記上生物素或熒光基團（如熒光素和若丹明）。SNAP所帶的活性巰基位點接受了苯甲基鳥嘌呤所攜帶的側(cè)鏈苯甲基基團，釋放出了鳥嘌呤。這種新的硫醚鍵共價結(jié)合使SNAP所帶的目的蛋白攜帶上了苯甲基基團所帶的標(biāo)記物。苯甲基鳥嘌呤在生化條件下穩(wěn)定，并且沒有其他蛋白會和這類物質(zhì)作用，所以SNAP標(biāo)簽反應(yīng)是高特異的。檢測：生物素或各種顏色熒光的底物（如熒光素、若丹明）可滲透進入細(xì)胞，便利快捷地進行活細(xì)胞內(nèi)SNAP-Tag