動物肝臟中DNA的提取和檢測實驗報告

1、.wd動物肝臟中DNA的提取及檢測一、前言脫氧核糖核酸脫氧核糖核酸DNA，為英文Deoxyribonucleic acid的縮寫，又稱去氧核糖核酸，是脫氧核糖核酸染色體的主要化學成分，同時也是組成基因的材料。有時也被稱為“遺傳微粒，原因是在繁殖過程中，父代會把它們自己DNA的一局部復制傳遞到子代中，從而完成性狀的傳播。DNA是高分子聚合物，DNA溶液為高分子溶液，具有很高的粘度，可被甲基綠染成綠色。DNA對紫外線260nm有吸收作用，利用這一特性，可以對DNA進展含量測定。當核酸變性時，吸光度升高，稱為增色效應；當變性核酸重新復性時，吸光度又會恢復到原來的水平。較高溫度、有機溶劑、酸

2、堿試劑、尿素、酰胺等都可以引起DNA分子變性，即DNA雙鏈堿基間的氫鍵斷裂，雙螺旋構造解開也稱為DNA的解螺旋。在細胞內，DNA能與蛋白質結合形成染色體，整組染色體那么統(tǒng)稱為染色體組。對于人類而言，正常的體細中含有46條染色體。染色體在細胞分裂之前會先在分裂間期完成復制，細胞分裂間期又可劃分為：G1期-DNA合成前期、S期-DNA合成期、G2-DNA合成后期。對于真核生物，如動物、植物及真菌而言，染色體主要存在于細胞核內；而對于原核生物，如細菌而言，那么主要存在于細胞質中的擬核內。染色體上的染色質蛋白，如組織蛋白，能夠將DNA進展組織并壓縮，以幫助DNA與其他蛋白質進展交互作用，進而調節(jié)基因的

3、轉錄。脫氧核糖核酸的構造DNA的構造： DNA的構造一般可劃分為一級構造、二級構造、三級構造和四級構造四個水平。DNA是一種長鏈聚合物，組成單位為四種脫氧核苷酸，即腺嘌呤脫氧核苷酸dAMP 脫氧腺苷、胸腺嘧啶脫氧核苷酸dTMP 脫氧胸苷、胞嘧啶脫氧核苷酸dCMP 脫氧胞苷、鳥嘌呤脫氧核苷酸dGMP 脫氧鳥苷。而脫氧核糖五碳糖與磷酸分子借由酯鍵相連，組成其長鏈骨架，排列在外側，四種堿基排列在內側。每個糖分子都與四種堿基里的其中一種相連，這些堿基沿著DNA長鏈所排列而成的序列，可組成遺傳密碼，指導蛋白質的合成。讀取密碼的過程稱為轉錄，是以DNA雙鏈中的一條單鏈為模板轉錄出一段稱為mRNA信使RNA

4、的核酸分子。DNA是由許多脫氧核苷酸按一定堿基順序彼此用3， 5-磷酸二酯鍵相連構成的長鏈。大多數(shù)DNA含有兩條這樣的長鏈，也有的DNA為單鏈，如大腸桿菌噬菌體X174、G4、M13等。DNA有環(huán)形DNA和鏈狀DNA之分。在某些類型的DNA中，5-甲基胞嘧啶可在一定限度內取代胞嘧啶，其中小麥胚DNA的5-甲基胞嘧啶特別豐富。在某些噬菌體中，5-羥甲基胞嘧啶取代了胞嘧啶。40年代后期，查加夫E.Chargaff發(fā)現(xiàn)不同物種DNA的堿基組成不同，但其中的腺嘌呤數(shù)等于其胸腺嘧啶數(shù)A=T，鳥嘌呤數(shù)等于胞嘧啶數(shù)G=C，因而嘌呤數(shù)之和等于嘧啶數(shù)之和，一般用幾個層次描繪DNA的構造。濃鹽法從動物組織中提取D

5、NA核酸和蛋白質在生物體中常以核蛋白DNP/RNP的形式存在，其中DNP能溶于水及高濃度鹽溶液，但在0.14 M的鹽溶液中溶解度很低，而RNP那么可溶于低鹽溶液，因此可利用不同濃度的NaCl溶液將其從樣品中分別抽提出來。將抽提得到的DNP用SDS處理可將其別離DNA和蛋白質，用氯仿-異戊醇將蛋白質沉淀除去可得DNA上清，參加冷乙醇即可將其呈纖維狀析出。肝臟細胞肝臟是由肝細胞組成，肝細胞極小，肉眼看不到，必須通過顯微鏡才能看到。人肝約有25億個肝細胞，5000個肝細胞組成一個肝小葉，因此人肝的肝小葉總數(shù)約有50萬個。肝細胞為多角形，直徑約為20-30/加(微米)，有6-8個面，不同的生理條件下大

6、小有差異，如饑餓時肝細胞體積變大。每個肝細胞外表可分為竇狀隙面、肝細胞面和膽小管面三種。肝細胞里面含有許許多多復雜的細微構造:如肝細胞核、肝細胞質、線粒體、內質網、溶酶體、高爾基氏體、微粒體及飲液泡等組成。二、實驗目的1.掌握濃鹽法從動物組織中提取DNA的原理與技術三、實驗原理核酸和蛋白質在生物體中常以核蛋白DNP/RNP的形式存在，其中DNP能溶于水及高濃度鹽溶液，但在0.14 M的鹽溶液中溶解度很低，而RNP那么可溶于低鹽溶液，因此可利用不同濃度的NaCl溶液將其從樣品中分別抽提出來。將抽提得到的DNP用SDS處理可將其別離DNA和蛋白質，用氯仿-異戊醇將蛋白質沉淀除去可得DNA上清，參加

7、冷乙醇即可將其呈纖維狀析出。四、實驗器材和材料試劑實驗器材：勻漿器量筒離心機離心管試管吸管恒溫水浴鍋實驗材料：豬肝實驗試劑：0.1mol/L NaCl-0.05mol/L 檸檬酸鈉溶液pH6.895%乙醇A.R.NaCl固體A.R.5%SDS溶液5g SDS 定容至100mlV(氯仿)：V異戊醇20：1的混合液五、實驗操作1.稱量稱取一定質量的豬肝，參加2倍肝重的0.1mol/L NaCl-0.05mol/L檸檬酸鈉緩沖液并用勻漿器磨碎已完成。2.提取DNA量取肝糜4 ml 于10毫升離心管，在4000r/min下離心10min ，沉淀中再參加8 ml緩沖液于4000r/min離心5 min；

8、棄上清，取沉淀；將沉淀用10 ml檸檬酸鈉緩沖液完全洗入干凈的小燒杯、參加5 ml 氯仿-異戊醇混合液、1 ml SDS，振蕩30min保鮮膜封口；緩慢參加固體NaCl約0.9g，使其最終濃度為1mol/L；將溶液分裝到2個10毫升離心管中，在4000r/min離心5 min，取上清水相；在上述水相溶液中分別加等體積冷95%乙醇，邊加邊用玻棒慢慢朝一個方向攪動，將纏繞在玻棒上的凝膠狀物用濾紙吸去多余的乙醇，即得DNA粗品；用8ml蒸餾水溶解DNA粗品于10ml離心管中。3.標準曲線的繪制按下表參加各種 試劑，混勻，于60恒溫水浴鍋45min，冷卻后，在595nm波長下于分光光度計比色測定，以吸

9、光度對DNA濃度作圖，制作標準曲線。012345標準DNA溶液/ml0.00.40.81.21.62.0蒸餾水/ml2.01.61.20.80.40二苯胺試劑/ml4.04.04.04.04.04.0A595nm4.樣品的測定將DNA粗品定容至25ml容量瓶，再取DNA樣液1.0ml，參加蒸餾水1.0ml，混勻。然后準確參加二苯胺試劑4.0ml，混勻，于60恒溫水浴鍋45min，冷卻后，595nm波長下于分光光度計比色測定，根據(jù)所測的吸光度對照標準曲線求得DNA的質量ug。5.計算100g豬肝中DNA含量w=m1/m2×100%w：DNA的質量分數(shù)%m1：樣液中測得的DNA的質量ug

10、m2：樣液中所含樣品的質量ug六、實驗數(shù)據(jù)處理1.標準曲線012345標準DNA溶液/ml0.00.40.81.21.62.0蒸餾水/ml2.01.61.20.80.40二苯胺試劑/ml4.04.04.04.04.04.0A595nm00.0390.090.1460.1970.249DNA含量/ug0801602403204002.實驗結果處理豬肝質量為2.04gDNA提取液體積為12.53ml序號123A595nm0.1020.1020.101平均A595nm0.102樣液中DNA含量/ug171.4樣液中樣品質量/g0.1628根據(jù)公式w=m1/m2×100%得：w=0.1053

11、那么100g豬肝中DNA含量為：w×100=0.1053g七、思考題1.實驗中的乙醇、SDS、氯仿-異戊醇、NaCl、檸檬酸鈉分別有什么作用？答：檸檬酸的鈉鹽在實驗中既充當DNA酶的抑制劑，也是pH緩沖溶液；SDS是外表活性劑，可以讓蛋白質與DNA分開；氯仿是有機溶劑，可以使蛋白質聚集沉淀，便于別離出去；異戊醇是消泡劑，可以減少泡沫的發(fā)生；氯仿-異戊醇的作用是使蛋白質變性、膜溶解；NaCl固體溶解使得試液成為高濃度的鹽溶液，在這樣的環(huán)境中DNA核蛋白能溶解，RNA核蛋白那么溶解度很低，可以利用這一性質別離兩種核酸。八、實驗考前須知1.DNA主要集中在細胞核中，因此，通常選用細胞核含量

12、比例大的生活組織作為提取制備DNA的材料，小牛胸腺組織中細胞核比例較大，因而DNA含量豐富，同時其脫氧核苷酸酶活性較低，制備過程中DNA被降解的可能性相對較低，所以是制備DNA的良好材料，但其來源較困難，脾臟或肝臟易獲得，也是實驗室制備DNA常用的材料，本實驗用新鮮肝臟作為實驗材料。2.為了防止大分子核酸在提取過程中被降解，須采取以下措施：整個過程必須在低溫下進展，可參加某些物質抑制核酸酶的活性，如檸檬酸鈉、EDTA、SDS等，EDTA是抑制核酸酶的活性最好的抑制劑。3.從核蛋白中脫去蛋白質的方法很多，經常采用的有：氯仿-異丙醇法、苯酚法、去垢劑法等，他們均能使蛋白質變性和核蛋白解聚，并釋放出

13、核酸。4.使用離心機時，對稱放置的離心管必須用天平調平衡。5.防止劇烈振蕩，如研磨過程、攪拌過程等。九、實驗結果誤差分析及討論經過對本次實驗結果進展分析，得出100g豬肝中DNA含量大約為0.1053g的結論，在上網查閱相關資料后發(fā)現(xiàn)：豬肝中DNA含量與本次試驗實際操作測量得出的結果大致相互吻合。由此可知，本次試驗結果是相比照擬成功的，較為粗略地測量出豬肝中DNA的含量，并且較為熟練地掌握了濃鹽法從動物組織中提取DNA的原理與技術，根本到達了本次實驗的目的。但是本次實驗結果只是粗略測量，并未到達準確測量豬肝中DNA的含量，且實驗數(shù)據(jù)較理論值偏低，這是由于某些誤差導致，在實驗過程中些許因素可能會

14、導致實驗結果數(shù)據(jù)有偏差，經分析得出以下幾點：在稱取豬肝后參加檸檬酸鈉緩沖液進展研磨的過程中，由于豬肝組織外表較滑不易磨碎，且研磨至最后依舊有小局部豬肝組織塊殘留，因此可能導致豬肝中DNA提取不充分，致使實驗數(shù)據(jù)較理論值偏低；研磨過程中，可能由于操作不當，導致局部液體濺出，因此可能使得提取液中局部DNA損失，導致實驗數(shù)據(jù)偏低；在粗提取DNA操作中，頻繁地將DNA提取液轉移至各個儀器內，可能有極小局部DNA提取液未倒凈，殘留在儀器壁上損耗掉，導致實驗誤差；在使用移液槍的過程中，可能因為操作不當或移液槍經常錯誤使用，出現(xiàn)儀器誤差，導致吸取的DNA樣液不準確，出現(xiàn)實驗誤差；在水相中參加乙醇析出DNA時，不是所