MCAO模型的制備

1、實(shí)驗(yàn)前準(zhǔn)備實(shí)驗(yàn)器材：干棉球、酒精棉球、75%酒精、生理鹽水、注射器(1ml、2ml)、黑 色記號筆、固定大鼠用粗線繩、大鼠板、 染色小燒杯、標(biāo)本瓶 手術(shù)器械：備皮剪子 1、眼科剪 1、大直鑷 1 只、小彎鑷 1 對、(動脈夾 2)、 止血鉗 2-3、縫合線、縫合針、持針器 麻醉劑： 10%水合氯醛( 400mg/kg)保溫：60W白熾燈，于37cm高處直接照射能使肛溫保持在 37C栓線：直徑0.24mm,頭端光滑圓鈍；在栓線18mm的位置用黑色記號筆標(biāo)記； 75%酒精清潔后置 1: 2500 單位肝素化生理鹽水中備用。體重與栓線直徑：直徑0.24mm的栓線適用于體重220-280g的SD大鼠。

2、TTC的配制：用0.2mol/L磷酸緩沖液(PBS)配成2%TTC溶液(pH7.4),避 光保存。藥物配制：無論生理鹽水還是受試藥物標(biāo)簽均采用代號， 給藥及評分均采用單盲。儀器激光多普勒血流儀(Laser Doppler Flowmetry, LDF)系統(tǒng)，包括：PeriFlux 5001 Ma in Unit，PF5010 LDPM Unit (激光多普勒微血流灌注量檢測單元)，LD Probe407-1 ( Perimed Co., Jarfalla, Sweden ;大鼠腦立體定位儀(深圳市瑞沃德生命 科技有限公司)；牙科手鉆(Stron g 90#, Korea);大鼠腦切片模具；熒光

3、正置 顯微鏡(NIKON ECLIPSE 80i, X400)及成像系統(tǒng)( ACT-2U NIKON Imaging System)。大腦中動脈栓塞( MCAO )模型的制備參照Zea Lon ga等2建立的大鼠大腦中動脈內(nèi)栓線阻斷方法，作適當(dāng)改進(jìn)。10 %水合氯醛溶液400mg/kg，腹腔注射麻醉動物。大鼠仰臥位固定，頸部正 中切開皮膚，鈍性分離各層組織，暴露右側(cè)頸總動脈 (CCA) 。分離至頸內(nèi)動脈(internal carotid artery， ICA)、頸外動脈(external carotid artery，ECA)分叉 后一段，仔細(xì)分離避免損傷迷走神經(jīng)和氣管，置線備用。于頸內(nèi)、

4、頸總動脈處用動脈夾夾閉， 頸外動脈近心端及遠(yuǎn)心端結(jié)扎， 中間剪 斷。將頸外動脈游離端拉至與頸內(nèi)動脈成一條直線，將尼龍線由頸外動脈插入， 插入后用 0號絲線結(jié)扎，以防止出血，打開頸內(nèi)動脈處動脈夾，將尼龍線插入頸 內(nèi)動脈，繼續(xù)插入至顱內(nèi)，插入深度約18.5 ±.5mm至微感阻力，使尼龍線頭端通 過MCA起始處，到達(dá)較細(xì)的大腦前動脈，此時(shí)即實(shí)現(xiàn)右側(cè)大腦中動脈的血流阻 塞，結(jié)扎ICA以固定尼龍線和防止出血，逐層縫合，尼龍線殘端留I cm長于皮外。假手術(shù)組只進(jìn)行術(shù)前麻醉和血管分離術(shù)， 不結(jié)扎及導(dǎo)入線栓。 手術(shù)過程中室 溫保持在24-25C，生物機(jī)能實(shí)驗(yàn)系統(tǒng)進(jìn)行動物呼吸及心電監(jiān)測。3局部腦血流量

5、測定大鼠俯臥位固定于立體定位儀上， 開顱窗并清理手術(shù)視野， 以前囟為坐標(biāo)原 點(diǎn)，選取前囟后1-2mm、右側(cè)2-4mm為測定點(diǎn)9，周圍直徑約2-3mm區(qū)域用牙科 鉆打薄，保持硬腦膜的完整并避開較大的血管，定位并固定好探頭座。將動物從定位儀取下并使其仰臥位于手術(shù)臺上，進(jìn)行 MCAO 手術(shù)，當(dāng)線插 入 ICA 后先不插入顱內(nèi)，穩(wěn)定 LDF 讀數(shù)后，記錄 5min 內(nèi)血流值，以其平均值 作為腦血流的基礎(chǔ)值（baseline value。把線插入顱內(nèi)，當(dāng)血流值突然下降至基 礎(chǔ)值的 10%-20 % 時(shí)，提示中腦動脈血流已被阻斷。每組 MCAO 前的血流值為 本組的基礎(chǔ)值（ 100），手術(shù)后血流值均以此基

6、礎(chǔ)值的百分率表示。4神經(jīng)行為學(xué)檢查Bederson '評分動物于給藥前及處死前進(jìn)行神經(jīng)行為學(xué)觀察，參照 Zea Longa的方法，提鼠 尾離開地面約 1 尺，觀察兩前肢狀況；將大鼠置于水平地面，推動其雙肩，觀察 兩側(cè)抵抗力有無差異；大鼠置于地面，觀察其行走情況。采用四級評分法（ 0-5 分），分?jǐn)?shù)越高，說明其神經(jīng)行為損傷越嚴(yán)重。（1）行為完全正常者，記 0分；（2）提起鼠尾離開地面，手術(shù)對側(cè)前肢內(nèi)旋、內(nèi)收者，記 1分；（3） 大鼠至地面，用手?jǐn)D壓兩側(cè)檢查其抗力，手術(shù)對側(cè)抗力下降者，記2分； （ 4）大鼠至地面，觀察其行走，圍繞手術(shù)對側(cè)轉(zhuǎn)圈者，記 3分；（ 5）損傷極其嚴(yán)重，已無法自主活動者，記 4分。5腦梗死體積的測定：評分后大鼠斷頭處死，迅速將取出的腦組織置于 -20 °C冰箱，10mi n后置室 溫環(huán)境，將腦置于大鼠腦切片模具中， 切除嗅球、 小腦和低位腦干后按圖譜所示 間隔2mm冠狀切五刀，切成6個(gè)大腦連續(xù)冠狀粗切片。然后迅速將腦片置于 5ml 含2%TTC的溶液中，37C恒溫、避光孵育30min,期間每隔5min將腦片翻動一次。 經(jīng) TTC 染色后，正常組織呈玫瑰紅色，梗死組織未被染色而呈白色。將每組腦片 排列整齊， 拍照保