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文檔簡介

1、干細(xì)胞因子及其應(yīng)用     自1990年美國3個研究組幾乎同時報道干細(xì)胞因子以來,世界各地進(jìn)行了廣泛深入的研究?,F(xiàn)將干細(xì)胞因子(SCF)的研究現(xiàn)狀作一綜述。    1SCF的結(jié)構(gòu)和理化性質(zhì)    干細(xì)胞因子又稱肥大細(xì)胞生長因子(MGF),Kit配體(KL)及Steel因子(SLF)。它是由骨髓微環(huán)境中的基質(zhì)細(xì)胞產(chǎn)生的一種酸性糖蛋白。其糖基連在肽鍵的N和O基團(tuán)上,相對分子質(zhì)量31 00036 000,由非共價結(jié)合的兩個相同亞基組成。等電點(diǎn)PI=3.8。SCF共有273個氨基酸。

2、從-25-1為信號肽, 1 189為膜外功能區(qū), 190 216為跨膜區(qū), 217 248為胞漿功能區(qū)。鼠與人的SCF有83%的同源性1。    SCF在小鼠由10號染色體Steel位點(diǎn)編碼。在人位于12 q2224。SCF有2種存在形式:可溶性和膜結(jié)合型。在人,編碼248個氨基酸的mRNA(SCF248),其第6個外顯子中有一蛋白切割位點(diǎn)。由此mRNA表達(dá)165個氨基酸的可溶性SCF。編碼220個氨基酸的mRNA(SCF220),其第6個外顯子中無蛋白切割位點(diǎn)。由此mRNA表達(dá)膜結(jié)合型SCF。在鼠,可溶性SCF可由SCF248在第6外顯子切割或SCF2

3、48和SCF220的第7外顯子切割而成。膜結(jié)合型SCF由SCF220表達(dá)。2種形式SCF均有生物學(xué)活性2。鼠和人SCF對人造血細(xì)胞幾乎有相等的生物學(xué)活性,但對鼠細(xì)胞,鼠SCF比人SCF生物效應(yīng)強(qiáng)800倍3。    2SCF的生物學(xué)活性    基因重組SCF和天然SCF有著相同生物學(xué)活性。2種形式SCF對造血都起重要作用。但Dolci等4發(fā)現(xiàn)結(jié)合型SCF比可溶性SCF支持造血長幾個星期,對原始胚細(xì)胞存活刺激作用以結(jié)合型SCF為強(qiáng)??扇苄許CF激活c-kit受體短暫,誘導(dǎo)細(xì)胞表面c-kit受體下調(diào)更迅速。 &

4、#160;  SCF和其他細(xì)胞因子一起誘導(dǎo)干和祖細(xì)胞增生、延長其存活期及引起干和祖細(xì)胞動員。雖然SCF的受體在祖細(xì)胞無顯著不同,但SCF誘導(dǎo)紅系祖細(xì)胞增生比粒-單祖細(xì)胞強(qiáng),可能是其他特異性因素影響祖細(xì)胞對SCF的反應(yīng)性5。給小鼠應(yīng)用SCF和粒細(xì)胞集落刺激因子(G-CSF),外周血干細(xì)胞和祖細(xì)胞第1天即達(dá)高峰,6周后正常。骨髓中干和祖細(xì)胞第1天下降,第14天升高達(dá)10倍,6周后正常。表明最初外周血干和祖細(xì)胞升高是由骨髓中動員到外周血6。Mauch等7報道SCF和IL-11合用增加長期骨髓增殖細(xì)胞(LTMRC)從骨髓動員到未切脾鼠的脾和切脾鼠的血液。Yonemura等8認(rèn)為SC

5、F單獨(dú)在體外不能維持干細(xì)胞數(shù)量,體內(nèi)作用是SCF和其他細(xì)胞因子相互作用的結(jié)果。    在體外SCF和IL-7協(xié)同促進(jìn)前體B細(xì)胞增生。Takeda等9認(rèn)為體內(nèi)B細(xì)胞發(fā)育不是受體c-kit和SCF相互作用,而另一受體型酪氨酸激酶(FLK2)對B細(xì)胞發(fā)育比c-kit更重要。    SCF在肥大細(xì)胞發(fā)育和存活中起關(guān)鍵作用。小鼠SCF的基因缺失導(dǎo)致結(jié)締組織和粘膜表面肥大細(xì)胞缺乏。由于SCF引起肥大細(xì)胞脫粒,應(yīng)用時一般以減少劑量為代價。Nocka等10發(fā)現(xiàn)二硫化物相聯(lián)系的二聚體SCF比普通SCF刺激細(xì)胞增生強(qiáng)1020倍。但對肥

6、大細(xì)胞脫粒并不比普通SCF強(qiáng)。    SCF既有化學(xué)激動性,也有化學(xué)趨化性。膜結(jié)合型SCF促進(jìn)造血祖細(xì)胞回到骨髓。靜脈輸注kit 造血祖細(xì)胞后其沿著SCF的梯度移動到骨髓。這是由kit粘附到骨髓基質(zhì)細(xì)胞表面的SCF引起11。Kim等12認(rèn)為基質(zhì)細(xì)胞源因子-1(SDF-1)只有化學(xué)趨化性,它作為生理抗移動因子抑制造血祖細(xì)胞移出骨髓。    應(yīng)用SCF、促血小板生長因子(TPO)、IL-12、IL-3處理冷凍骨髓細(xì)胞移植給鼠,其恢復(fù)血小板和中性粒細(xì)胞比用未處理的骨髓移植早36 d13。在鼠模型中,受者在應(yīng)用5-FU前和

7、后給予SCF注射,可以使干細(xì)胞從靜止期進(jìn)入細(xì)胞周期。這樣干細(xì)胞對5-FU敏感,易于殺 死,為供者骨髓移入受者提供了穩(wěn)定的內(nèi)環(huán)境,有利于骨髓移植的成功14。    將蟲熒光素酶基因連在質(zhì)粒上,該基因以聚賴氨酸(PL)與抗生蛋白鏈菌素(SA)共價連接,生物素?;腟CF以生物素與SA連接,腺病毒與PL共價連接,用此載體轉(zhuǎn)染人MBO2和MO-7e細(xì)胞(兩者均表達(dá)c-kit),孵育2 h通過SCF與c-kit結(jié)合轉(zhuǎn)染效率可達(dá)90%15。但Fielding等16報道逆轉(zhuǎn)錄病毒載體通過連接SCF使SCF與造血細(xì)胞表面c-kit粘附,則病毒不能轉(zhuǎn)染造血細(xì)胞,對不表達(dá)

8、c-kit的非造血細(xì)胞卻能轉(zhuǎn)染。    3臨床應(yīng)用    曾經(jīng)將血清SCF低下作為引起造血功能障礙的原因。據(jù)報道在再障、骨髓增生異常綜合征,骨髓移植后患者血清SCF水平低下。Abkowitz等17檢測了34例純紅系再障患者血清SCF與正常人比較,無顯著統(tǒng)計學(xué)意義。認(rèn)為血清SCF水平可能與臨床無相關(guān)性。但血清SCF是可溶性SCF,至于膜結(jié)合型SCF尚無法檢測。    Weaver等18將48例上皮卵巢癌患者第1天給予3 g?(m2)-1環(huán)磷酰胺輸注,4 h輸完,美司鈉6 g?(

9、m2)-1輸注12 h。然后48例隨機(jī)分成4組,每人均注射5 g?kg?d-1G-CSF,每組中有9例加用重組人的SCF。按組別分別給予5 g?kg-1.d-1、10 g?kg-1.d-1、15 g?kg-1.d-1、20 g?kg-1.d-1。化療后48 h開始應(yīng)用,直到外周血WBC4.0×109 L-1。這時進(jìn)行外周血單成分采集。結(jié)果發(fā)現(xiàn)長期培養(yǎng)起始細(xì)胞(LTC-IC)在SCF 20 g?kg-1.d-1組比單用G-CSF組增加5.8倍,CD34 細(xì)胞增加3倍,CD34 CD33-細(xì)胞增加64倍。Glaspy等19將215例高危期乳癌患者化療后隨機(jī)分組,單用G-CSF 10 mg

10、?kg-1.d-1達(dá)7 d,G-CSF 10 g?kg-1.d-1和重組人SCF 5、10、15、20、25、30 g?kg-1.d-1聯(lián)合用藥達(dá)7、10、13 d。每種療法的最后3 d進(jìn)行外周血白細(xì)胞單成分采集,結(jié)果發(fā)現(xiàn)應(yīng)用20 g?kg-1.d-1SCF和10 g?kg-1.d-1G-CSF后,第5天開始進(jìn)行外周血單采是動員外周血祖細(xì)胞的最適劑量和最佳方案。Begley等20將62例早期乳癌患者化療前隨機(jī)分組接受12 g?kg-1.d-1G-CSF和同劑量G-CSF加rhSCF 5、10、15 g?kg-1.d-1達(dá)7 d,以及用10 d 10 g?kg-1.d-1SCF且第4天加用G-C

11、SF達(dá)7 d。結(jié)果發(fā)現(xiàn)先用SCF 3 d作預(yù)治療,再用二者聯(lián)合治療組,外周血造血祖細(xì)胞升高更加明顯。SCF一般為皮下注射。最普遍的副反應(yīng)是注射局部皮膚有輕度水腫,外有一圈紅腫。一般在注射后4 h開始,持續(xù)2448 h,以后恢復(fù)正常。偶有過敏反應(yīng)報道,應(yīng)用前可給予抗過敏預(yù)防19。    雖然干細(xì)胞因子的研究已經(jīng)深入,但仍有尚未解決的問題。(1)SCF和其受體c-kit相互作用觸發(fā)細(xì)胞內(nèi)變化的具體機(jī)制有待繼續(xù)闡明;(2)SCF的基礎(chǔ)研究較多,臨床應(yīng)用不夠廣泛,對再障治療效果尚不確定;(3)SCF在體外能引導(dǎo)載體轉(zhuǎn)染,體內(nèi)尚缺乏證據(jù)。  &

12、#160; 參考文獻(xiàn)    1Lyman SD,Williams DE.Biological activity of mast cell growth factor,a ligand for the c-kit proto-oncogene and product of the murine ;SL locus. Exp Hematol,1992,20(1):132    2Huang EJ,Nocka KH,Buck J,et al.Differential expression and process

13、ing of twocell associated forms of the kit ligand:KL-1 and KL-2.Mol Biol Cell,1992,3:349    3Martin FH,Suggs SV,Langley KE,et al.Primary structure and functional expression of rat and human stem cell factor DNAs.Cell,1990,63(1):203    4Dolci S,Williams DE,Erns

14、t MK,et al.Requirement for mast cell growth factor for primordial germ cell survival in culture.Nature,1991,352(6338):809    5Olweus J,Terstapen LWMM,Thompson PA,et al.Expression and function of receptors for stem cell factor and erythropoietin during lineage commitment of human

15、hematopoietic progenitor cells.Blood,1996(5),88:1594    6Bodine DM,Seidel NE,Orlic D.Bone marrow collected 14 days after in vivo administration of granulocyte colony stimulating factor to mice has 10 fold more repopulating ability than untreated bone marrows.Blood,1996,88(1):89&#

16、160;   7Mauch P,Lamont C,Neben TY,et al.Hematopoitetic stem cells in the blood after stem cell factor and interleukin-11 administration:evidence for different machanisms of mobilization.Blood,1995,86(12):4674    8Yonemura Y,Ku H,Lyman SD,et al.In vitro expansio n o

17、f hematopoitic progenitors and maintenance of stem cells:comparison between flt3/flt2 ligand and kit ligand.Blood,1997,89(6):1915    9Takeda S,Shimizu T,Rodewald HR.Interaction between c-kit and stem cell factor are not required for B cell development in vitro.Blood, 1997,89(2):5

18、18    10Nocka KH,Levine BA,Ko JL,et al.Increased growth promoting but not mast cell degranulation potential of a covalent dimer of c-kit ligand.Blood, 1997,90(10):3874    11Okumura N,Tsuji K,Ebihara Y,et al.Chemotactic and chemokinetic activities of stem cell

19、factor on murine hematopoietic progenitor cells.Blood, 1996,87(10):4100    12Kim CH,Broxmeyer HE.In vitro behavior of hematopoietic progenitor cells under the influnce of chemoattractants:stromal cell derived factor-1,steel factor,and the bone marrow environment.Blood, 1998,91(1)

20、:100    13Ratajczak MZ,Ratajczak J,Machalinski B,et al.In vitro and in vivo evidence that ex vivo cytokine priming of donor marrow cells may ameliorate posttransplant thrombocytepenia.Blood, 1998,91(1):353    14Van os R,Dawes D,Mislow JMK,et al.Host conditioni

21、ng with 5-fluorouracil and kit-ligand to provide for long term bone marrow engraftment.Blood, 1997,89(7):2376    15Schwarzenberger P,Spence SE,Gooya JM,et al.Targeted gene transfer to human hematopoietic progenitor cell lines through the c-kit receptor.Blood, 1996,87(2):472 

22、   16Fielding AK,Maurice M,Morling FJ,et al.Inverse targeting of retroviral vectors:selective gene transfer in a mixed population of hematopoietic and nonhematopoietic cells.Blood, 1998,91(5):1802    17Abkowitz JL,Hume H,Yancik SA,et al.Stem cell factor serum levels may not be clinically relevant letter.Blood, 1996,87(9):4017    18Weaver A,Ryder D,Crowther D,et al.Increased numbe

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