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文檔簡(jiǎn)介
1、宏基因組測(cè)序技術(shù)檢測(cè)標(biāo)準(zhǔn)簡(jiǎn)介:宏基因組測(cè)序介紹宏基因組學(xué)是以環(huán)境樣品中的微生物群體基因組為研究對(duì)象,通過(guò)現(xiàn)代基 因組技術(shù)手段包括功能基因的篩選和測(cè)序分析,對(duì)環(huán)境中微生物多樣性、種群結(jié) 構(gòu)、進(jìn)化關(guān)系、功能活性、相互協(xié)作關(guān)系以及環(huán)境之間的關(guān)系進(jìn)行研究的新的微 生物研究方法。隨著高通量測(cè)序技術(shù)的發(fā)展,為宏基因組學(xué)研究提供了新的理想 研究方法。高通量測(cè)序的方法無(wú)需分離環(huán)境中各種微生物, 也無(wú)需構(gòu)建克隆文庫(kù) 就可以直接對(duì)環(huán)境中所有微生物進(jìn)行測(cè)序。 可以真實(shí)客觀的反映環(huán)境中微生物的 多樣性、種群結(jié)構(gòu)、進(jìn)化關(guān)系等。目前乂可以分為針對(duì)16s DNA/18sDNA/ITS測(cè)序和針對(duì)宏基因組全序列的測(cè)序研究。下面
2、就是對(duì)這兩者的具體介紹。一、16s DNA/18s DNA/ITS 測(cè)序16sDNA是最常用的微生物物種分子鑒定的標(biāo)簽,通過(guò)對(duì)樣品中16sDNA 測(cè)序可以鑒定其中微生物物種的豐度和分布情況。目前,普遍使用 Roche 454 平臺(tái)來(lái)對(duì)環(huán)境樣品進(jìn)行16s DNA測(cè)序。因?yàn)?6s DNA序列比較相似,讀長(zhǎng)短的 話,難以進(jìn)行有效的比對(duì),而 454平臺(tái)的平均讀長(zhǎng)在400bp左右,可以很好的 避免此類問(wèn)題。二、宏基因組全測(cè)序在這種測(cè)序方式中,我們可以假定一個(gè)環(huán)境中的所有微生物就是一個(gè)整體, 然后對(duì)其中所有的微生物進(jìn)行測(cè)序。這樣我們就可以研究樣品中的功能基因以及 其在環(huán)境中所起的作用而不用關(guān)心其來(lái)自哪個(gè)微
3、生物??梢园l(fā)現(xiàn)新的基因,可以進(jìn)行基因的預(yù)測(cè),甚至有可能得到某個(gè)細(xì)菌基因組的全序列。 此外,該項(xiàng)測(cè)序不 單可以針對(duì)DNA水平,也可以針對(duì)全RNA進(jìn)行基因表達(dá)水平的研究。樣品處理:宏基因組樣品收集主要有口腔,下呼吸道痰液,下呼吸道灌洗液,皮膚和糞便。 樣品采集遵照樣品采集規(guī)范(人)所規(guī)定的操作來(lái)進(jìn)行。盡量留足備份樣品。核酸提?。汉昊蚪M核酸提取主要有兩種方法: 膜過(guò)濾法和直接裂解提取。對(duì)于液體樣品如痰液,灌洗液兩種方法都適用,對(duì)丁固體樣品如糞便宜采用直接裂解的方法。核 酸提取后用 NanoDrop ND-1000測(cè)定,260/280 = 1.8-2.0, 260/230 = 1.8-2.0,電 泳
4、檢測(cè)DNA應(yīng)是完整的一條帶。測(cè)序 Sequencing1) 16S/18S 測(cè)序:Sanger 測(cè)序:用丁低通量的16S/18S DNA測(cè)序,提取宏基因組后,首先通過(guò)PCR將16S/18S 序列擴(kuò)增出來(lái),再將其連接到克隆載體上,導(dǎo)入感受態(tài)細(xì)胞,涂平板做藍(lán)白斑篩 選,選出陽(yáng)性克隆提質(zhì)粒,對(duì)質(zhì)粒進(jìn)行測(cè)序反應(yīng),測(cè)序反應(yīng)后純化后用ABI 3130或ABI 3730進(jìn)行毛細(xì)管電泳測(cè)序。由丁其測(cè)序準(zhǔn)確率比較高,而通量非常低,現(xiàn)通常用做二代測(cè)序結(jié)果的驗(yàn)證。454 Platform:454 平臺(tái)主要包括兩種測(cè)序系統(tǒng):454 GS FLX+ Systeft 454 GS Junior SysteE54 GS F
5、LX+ Systems序讀長(zhǎng)可以達(dá)到 600-1000bp,通量 450-700M , GS Junior System 測(cè)序讀長(zhǎng)在400bp左右,通量在35M。Library PrAparationnboiQirnai RNA tungau froni MmpiQg usingrusfitim primers.$»qu&ncing Am>rHNA Amphcanadwwl址 inijan-rriPCR and 同時(shí)m 日 mving thv GS FLJC+ CXLR79 Ssiqiivngiing Mil wiiyj er JuniarDala Atwlysit U
6、ullirt o vanely of friw end ccwmimvrcifit wTtwaris wirnlcrdbiHil pdpulJlIon d訶目andmalkA ±«mipans;an9. GS Ampli|»is-n WnriAnt A.iFi-alyTQr (AVAJ sanwore* GE Riltrin>E4 MnpptF uflwira Public n>QLfl|4HQinqlC in«|i)r»li< EqqI Figure1 2: WcpirkHI dl a ribasd>hial rfiM
7、A AmfHlie>anequenung experivnenL LFmry piBpaiabDn using a dirBoUo- nai pMiiier com<wi to # spocies miigiroion uf nws Speths im a !j«qLM<icmg ami. For detailed irriorriarL maiccom.文庫(kù)構(gòu)建:用fusion Primer擴(kuò)增核糖體RNA將已擴(kuò)增的rRNA直接做乳液PCR在GSFLX+和GS Junior系統(tǒng)上進(jìn)行測(cè)序。測(cè)序深度:數(shù)據(jù)分析:使用免費(fèi)的軟件包對(duì)微生物的種群多樣性進(jìn)行鑒定,并進(jìn)行比較
8、1. MEGAN 一個(gè)宏基因組分析工具,可以在大量的測(cè)序數(shù)據(jù)中對(duì)測(cè)序結(jié)果進(jìn)行 聚類分析。2. MG-RAST用丁注釋宏基因組樣品的全自動(dòng)軟件。3. IMG/M :基丁宏基因組序列微生物群體的功能性。4. CAMERA致力丁微生物生態(tài)學(xué)研究。5. CARMA可以通過(guò)未拼接的序列來(lái)進(jìn)行物種組成和微生物的遺傳潛力的研究。6. GALAXY用丁高等真核生物的研究,例如昆蟲等。7. Greengenes 16S rRNA的數(shù)據(jù)庫(kù),可以用來(lái)做16S rRNA的比對(duì)。8. QIIME:針對(duì)454測(cè)序數(shù)據(jù)的宏基因組分析。9. The Ribosome Database Project RDP :針對(duì)焦磷酸測(cè)序
9、的分析方法。Miseq Platform:Miseq平臺(tái)讀長(zhǎng)可以是 2X250bp或2X300b使用Miseq Reagent Kit V2可以 產(chǎn)出7.5-8.5Gb的數(shù)據(jù),使用 Miseq Reagent Kit V3可以產(chǎn)出13.2-15Gb的數(shù)據(jù)。Rgur&1:16S Amplicon Sequencing WorkflowDesign and order region of inhrest spocific pfimerawith Qvarharig adaptera白 Mmpia帕 Hbrary by PCRt>y PCRNonnalize and pool hbra
10、msPertDrm autonialed cluster generation and sequencing on the MiSeq systemVie# data 如ng the MotaganomW 1BS rRNAWwkflcw in MiSeq Reporter w A/npiiconVtewfrr In HaseSpaca16S uniplcon gqwxuig 的 u utarnw舊。皿心 yokx心 kr 0噂 Ml wq 日 V鳴 indiiring 呻沖 pnmrinn.urrl 劇心月 小腳畝with ooimhumerri: sctwaB far reviaving r
11、HBijite文庫(kù)構(gòu)建:根據(jù)感興趣的片段設(shè)計(jì)引物,通過(guò)PCRT增出片段做為模板構(gòu)建文庫(kù)。使用 Nextera XT Sample Prep Kit構(gòu)建文庫(kù),按照試劑盒說(shuō)明書操作。將建好的文庫(kù)歸 一化處理并將其混到一起。在 Miseq系統(tǒng)里自動(dòng)進(jìn)行成簇反應(yīng),進(jìn)而完成測(cè)序。 文庫(kù)檢驗(yàn):用Agilent 2100檢測(cè)文庫(kù)大小片段是否與預(yù)期一致。文庫(kù)片段是否集中。 測(cè)序深度:16S rRNA測(cè)序深度應(yīng)至少在50,000條reads以上,以保證較好的覆蓋度。 數(shù)據(jù)分析:對(duì)微生物生態(tài)進(jìn)行定量觀察Greengenes 16S rRNAS因數(shù)據(jù)庫(kù)和分析工具; 宏基因組分析工具:MEGAN 核糖體數(shù)據(jù)庫(kù)計(jì)劃(R
12、DP)Ion Torrent Platform:Ion Torrent平臺(tái)主要有兩個(gè)測(cè)序系統(tǒng):Ion PGM SystemB Ion Proton System Ion PGM有兩種讀長(zhǎng),200bp和400bp,Ion PGM主要應(yīng)用三種芯片,Ion 314 Chip, Ion 316 Chip和Ion 318 Chip,最多數(shù)據(jù)產(chǎn)出可以達(dá)到 2Gb。Ion Proton讀長(zhǎng)為200bp, 最多數(shù)據(jù)產(chǎn)出可達(dá)到10Gb。文庫(kù)構(gòu)建:使用 Ion Plus Fragment LibraryKi的 16S rRNA增產(chǎn)物加上 barcode 標(biāo)簽,一 共有96個(gè)barcode可以選擇。加上標(biāo)簽后使用I
13、on PGM? Template OT2 200 Kit 在Ion OneTouch? DLSystem±進(jìn)行乳液PCR完成文庫(kù)構(gòu)建。測(cè)序時(shí)根據(jù)需要不 同的讀長(zhǎng)選擇不同的測(cè)序試劑盒。測(cè)序深度:對(duì)于人體腸道微生物16S rRNA測(cè)序,對(duì)于檢測(cè)高豐度的樣品,每個(gè)樣品至 少要測(cè)10000條reads,而對(duì)于檢測(cè)低豐度的樣品,則需要1,000,000以上的reads 數(shù)。2)全宏基因組測(cè)序 Whole-metagenomics SequencingRoche 454 platform:文庫(kù)構(gòu)建:提取宏基因組DNA,總量不低丁 10ug,且樣品DNA應(yīng)相對(duì)完整。使用GS FLX Titaniu
14、m Rapid Library Preparation Kit構(gòu)建文庫(kù),按照說(shuō)明書進(jìn)行相應(yīng)操作。文庫(kù)檢驗(yàn):DNA reads數(shù)與微球的比例在8%左右,可以達(dá)到比較理想的測(cè)序結(jié)果。 測(cè)序深度:每個(gè)樣品應(yīng)至少保證10,000條以上的reads數(shù)。Hiseq platform:Hiseq平臺(tái)主要有Hiseq 2000和Hiseq 2500兩個(gè)測(cè)序系統(tǒng)。Hiseq 2000測(cè)序 讀長(zhǎng)是2X100bp Paired-end測(cè)序,一次運(yùn)行通量可達(dá) 600Gb以上,Hiseq 2500有 兩種運(yùn)行模式:快速運(yùn)行和高通量,快速運(yùn)行可以達(dá)到2X150bp,產(chǎn)生最多180Gb 的數(shù)據(jù),高通量讀長(zhǎng)在2X125bp,數(shù)據(jù)產(chǎn)出在600Gb以上。文庫(kù)構(gòu)建:將提取的宏基因組 DNA用Covaris M220片段化后,使用 Truseq DNA XT/LT Sample Prep Kit (illumina)按照protocol進(jìn)行文庫(kù)構(gòu)建,DNA起始投入量應(yīng)在1ug 以上。文庫(kù)檢驗(yàn):將建好的宏基因組文庫(kù)使用
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