2024年動物實驗報告

試驗壹大、小鼠的基本試驗操作壹、試驗目的:通過實際操作，掌握大、小鼠的壹般操作措施，包括大、小鼠的抓取和固定、性別鑒定、給藥、采血。二、試驗動物：昆明小鼠4只（2雌2雄）、大鼠4只（2雌2雄）、灌胃器2個、注射器4個、酒精、棉球、生理鹽水、小鼠固定器1個、大鼠固定器1個。三、試驗環(huán)節(jié)1、抓取和固定1.1抓?。鹤笫肿バ∈蟮奈哺?.2固定：左手抓住小鼠的尾根部，讓小鼠在粗糙平面上爬行，後拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠兩耳及其間的頸部皮膚，小指和無名指將尾巴固定在手掌面。1.3同樣操作將大鼠抓取和固定2、性別鑒定：2.1抓取和固定小鼠2.2觀測肛門與生殖器間的距離和兩者之間的毛發(fā)。雄性：距離長，毛發(fā)密（和其他部位同樣）；雌性：距離短，毛發(fā)稀疏。2.3同樣鑒別措施，反復鑒別大鼠。3.給藥3.1灌胃法3.1.1按對的措施用左手抓取和固定小鼠，使腹部朝上，頸部拉直。3.1.2固定後，右手持持接灌胃針的注射器吸取藥液（或事先將藥液吸好），將針頭從口角插入口腔內(nèi)，然後用灌胃針頭壓其頭部，使口腔與食管成壹直線，再將灌胃針頭沿上腭壁輕輕進入，轉(zhuǎn)動針頭刺激動物吞咽，然後沿咽後壁慢慢插入食道。3.1.3當感覺有落空感時表明灌胃針也許進入胃內(nèi)，向外抽動注射器活塞，感覺有負壓，此時可將藥液灌入。3.1.3用大鼠反復同樣操作3.2注射給藥3.2.1皮下注射3.2.1.1用左手拇指和食指輕輕提起動物頸後肩胛間皮膚，3.2.1.2右手持注射器，使針頭水平刺入皮下，針頭能自由撥動無牽阻，推送藥液時注射部位隆起。撥針時，以手指捏住針刺部位3.2.1.3用大鼠反復同樣操作3.2.2腹腔注射3.2.2.1以左手固定小鼠，使腹部向上，3.2.2.2右手持注射器從下腹兩側(cè)向頭方刺入皮下，針頭稍向前，再將注射器沿45角斜向穿過腹肌進入腹腔，此時有落空感，回抽無回血或尿液，即可注入藥液。3.2.2.3用大鼠反復同樣操作3.2.3尾靜脈注射3.2.3.1先將動物固定在暴露尾部的固定器內(nèi)，3.2.3.2用75％酒精棉球反復擦拭尾部使血管擴張，3.2.3.3以左手拇指和食指捏住鼠尾兩側(cè)，用中指從下面托起鼠，右手持注射器，使針頭盡量采用與尾部平行的角度進針，從尾末端處刺入。3.2.3.4注入藥液，無阻力，表達針頭已進入靜脈，注射後把尾部向注射側(cè)彎曲，或拔針後隨即以干棉球按住注射部位以止血。3.2.3.4用大鼠反復同樣操作4取血4.1內(nèi)眥取血：4.1.1左手固定小鼠，食指和拇指輕輕壓迫頸部兩側(cè)，使眶後動靜脈充血。4.1.2右手持毛細采血管，以45度從內(nèi)眼刺入，并向下旋轉(zhuǎn)，感覺刺入血管後，再向外邊退邊吸，使血液順承血管自由流入小管中，4.1.3當?shù)玫?.5ml血量後，放松加于頸部的壓力，并拔出采血器，以防穿刺孔出血4.1.4用大鼠反復同樣操作五、試驗討論1、小鼠抓取的感受：小鼠性情較溫順，壹般不會咬人，比較輕易抓取固定。大鼠抓取措施基本同小鼠，抓大鼠時若操作者不純熟，或者大鼠尤其兇猛，操作者最佳戴上防護手套(帆布或硬皮質(zhì)均可)。如若是灌胃、腹腔注射、肌肉和皮下注射時，可采用與小鼠相似的手法2、小鼠尾靜脈注射感受：2.1尾靜脈注射時，可用45~50度的溫水浸潤半分鐘或用酒精擦拭，可使血管擴張，同步也可軟化表皮角質(zhì)。2.2如反復注入，應盡量從尾末端開始，後來向尾根部方向移動注射先遠後盡，不要壹開始就從尾根部，失敗了無法選用注射部位；再次，進血管後注意保持穩(wěn)定，針尖很輕易刺穿血管的。2.3尾靜脈就在尾巴的正左右兩邊，先用酒精用力擦，可以去掉部分角質(zhì)，然後按住近心端讓充血，就很輕易看到了。3.灌胃3.1針頭插入食道過程中，若動物掙扎厲害，應退出後灌胃針，待動物安靜後重新插入。切不可強行插入，以免損傷食道或誤入氣管導致動物死亡。3.2當感覺有落空感時表明灌胃針也許進入胃內(nèi)，向外抽動注射器活塞，感覺有負壓闡明灌胃針未插入氣管，此時可將藥液灌入。篇二：動物試驗匯報動物試驗（小鼠）的壹般操作技術(shù)實習曰期：—11—13壹目的和規(guī)定：通過實際操作，使學生掌握試驗的壹般操作措施，包括動物的抓去和固定、編號被毛的清除給藥途徑麻醉采血和處死等措施。二實習內(nèi)容：1試驗動物的抓取2試驗動物性別的鑒定3試驗動物編號的標識措施4試驗動物被毛的清除5試驗動物的給藥途徑和措施6試驗動物的麻醉7試驗動物的采血8試驗動物的處死措施9解剖三試驗的措施1小鼠的抓?。鹤トr先用手將鼠尾提起，放在試驗臺上，輕輕拉尾，用左手拇指和食指抓住小鼠兩耳和頭頸部皮膚，將鼠置于左手中心，用左手無名指和小指按住尾巴和後肢，即可做其他試驗操作作用。2小鼠性別的鑒定：抓取小鼠後，觀測動物肛門與生殖器之間的距離。距離遠的為雄性，距離近的為雌性。成熟的雄性小鼠可看到小鼠睪丸的輪廓。3小鼠編號的標識措施：用被毛染色法做小鼠編號。用苦味酸（黃色），壹般左前肢為1，左側(cè)腹部為2，左後肢為3，頭頸部為4，背部為5，尾根部為6，右前肢為7，右腹部為8，右後肢為9。用兩種顏色可以染到99。4小鼠被毛清除：有剪毛法，拔毛法，剃毛法，用硫化鈉脫毛法。5給藥途徑和措施：給藥途徑有經(jīng)口灌胃法，經(jīng)呼吸道吸入，經(jīng)皮膚吸入和注射給藥法。用壹支特制的灌胃針進行灌胃，小鼠壹般給1.5ml如下。用注射器抽好液體，然後抓取小鼠，針頭延側(cè)角通過食管進入胃內(nèi)，然後將液體注入。6小鼠的麻醉：麻藥有揮發(fā)性的和非揮發(fā)性兩種。給藥途徑有吸入性麻醉，注射給藥。小鼠壹般用腹部麻醉的措施。用水合氯醛300ml／kg，根據(jù)小鼠的體重給藥0.25ml。抓取小鼠後，使針頭和腹部成30度的角，刺入腹腔，回抽若無回血或者腸內(nèi)容物可以注入。注入麻藥5分鐘後，小鼠失去知覺。7小鼠的采血的措施：有靜脈采血法，尾部采血法，眼眶靜脈采血法和心臟采血法。將小鼠裝入固定盒中，露出尾部，用二甲苯圖擦，使尾靜脈充盈。用鋒利的刀片切斷壹根尾靜脈即可用毛細管采血，也可用細注射器從尾靜脈采血。8小鼠的處死措施：用頸椎脫臼的措施或者注射過量的麻藥使小鼠死亡。9解剖：從腹部開始，查看腹部臟器，以肝臟胃脾腎輸尿管姨小腸大腸膀胱前列腺性腺次序。然後再看胸部，看到肺臟心臟胸腺等器官，并在直視的狀況下進行了心臟的采血。然後再看頸部的解剖。最終解剖頭部。四討論和結(jié)論：通過本次試驗，我們學到了試驗動物的壹般操作技術(shù)，如抓取和固定、編號被毛的清除給藥途徑麻醉采血和處死等措施。為後來進入臨床進行試驗研究做好了初步的準備。試驗匯報（三）壹、試驗目的：1。掌握豚鼠、兔、狗的壹般操作措施，包括豚鼠的抓取和固定、編號、性別鑒定、給藥、麻醉、采血、處死的措施。2．兔子的抓取和固定、被毛的清除、性別的鑒定、給藥、采血和處死的措施。3．犬的抓取和固定、采血的措施。二、試驗對象：豚鼠，兔，犬。三、試驗環(huán)節(jié)：（壹）：豚鼠：1．抓取和固定：先用手掌抓住背部，將手張開，用拇指和食指握住頸部，再拿起來。2．編號：同大鼠。3．性別鑒定：雄性生殖孔呈圓形，雌性生殖孔呈橢圓形。4．給藥、麻醉、采血（無尾靜脈采血）、處死同大鼠。（二）：兔：1．抓取和固定：當兔子安靜下來時，用右手抓住頸部的被毛與皮膚，提起兔，然後用左手托住其臀部，兔身的重量大部分落在手上。2．被毛的清除：多采用剪毛法。剪毛部位事先用紗布蘸生理鹽水予以濕潤，用彎頭手術(shù)剪緊貼其皮膚依次將所需部位的被毛剪去。3．性別的鑒定：將生殖器附近的皮膚拔開，雄性可見壹圓形孔，裏面露出陰莖；雌性此處為壹條朝向尾巴的長縫，呈橢圓形間隙，下端有陰道開口處。4．給藥：(1)經(jīng)口灌胃法：灌胃時用壹木制的張口器（紡錘狀，正中開小孔）橫放于上下鄂之間，用繩固定。這時用左手抓住其嘴，右手將壹細導尿管由張口器中央小孔插入，進入食管和胃。經(jīng)導尿管緩慢注入5ml生理鹽水。（2）耳緣靜脈注射法：剪去耳緣部被毛，酒精擦拭并輕彈欲注射部位，增進靜脈充盈。然後以左手拇指和食指壓住耳根部，右手持注射器，順血管方向刺入靜脈，進針1cm，有血液回流後注入生理鹽水2ml。5．采血：（1）經(jīng)耳緣靜脈采血：進針措施同耳緣靜脈注射法。（2）耳動脈切割采血：剪去耳動脈表面被毛，酒精消毒皮膚。于耳動脈尖端處劃破動脈并采血。（3）心臟采血：剪去心前區(qū)被毛，選用左側(cè)心臟搏動最明顯的肋間靠近胸骨緣為穿刺點（由劍肋角由下往上左側(cè)第三肋間處）。消毒皮膚，左手固定，右手持連有七號針頭的注射器與穿刺點垂直進針。順利回抽到血液後即可采血。6．處死：空氣栓塞法：同心臟采血法進針到心臟後注入20ml空氣。（三）：犬：1．抓取與固定：畢格犬抓取輕易。固定也相對輕易。捆綁犬時先綁扎犬嘴。綁扎措施：用繃帶從下頜繞到上頜打壹結(jié)。然後繞向下頜再打壹結(jié)，最終將蹦帶牽引到頭後，在頸頂上打第三個結(jié)。在這個結(jié)上在打壹種活結(jié)。2．采血：（1）橈側(cè)靜脈采血法：抓取和固定好後剪去注射部位的被毛。用膠皮管綁住其前肢，使靜脈充盈。試驗者左手托住其前肢，右手持連有7號針頭的注射器刺入內(nèi)側(cè)面皮下的橈側(cè)靜脈。進針1cm後回抽見血，即可采血。（2）小隱靜脈采血法：抓取和固定好後剪去注射部位的被毛。試驗者左手托住其後肢，右手持連有7號針頭的注射器刺入皮下的小隱靜脈。進針1cm後回抽見血，即可采血。四、試驗總結(jié)：兔的心臟采血相對難掌握進針點。篇三：動物試驗及匯報編寫規(guī)定附模板動物試驗匯報規(guī)定第壹部分：動物試驗概述應提供—個動物試驗的重要內(nèi)容提綱，該提綱應包括動物試驗題目、研究小組組員、試驗動物和研究產(chǎn)品的名稱、試驗用器械或藥物的適應癥、試驗時間、試驗目的、試驗措施、試驗研究動物、診斷及進入研究的重要原則、試驗的產(chǎn)品信息、劑量、給藥方式及批號、治療持續(xù)時間、參照的治療、劑量、給藥方式及批號、評價原則（有效性、安全性）、記錄措施、試驗結(jié)論（效能結(jié)論、安全性結(jié)論、結(jié)論）及匯報曰期。該提綱應包括表明成果的數(shù)字資料，而不僅僅是文字和p值。第二部分：試驗內(nèi)容（壹）動物試驗壹般資料（動物類別選擇試驗用動物的入選原則和數(shù)量、試驗用產(chǎn)品等）：（二）動物試驗試驗措施；（三）所采用的記錄措施及評價措施；（四）動物試驗評價原則；（五）動物試驗試驗成果；（六）動物試驗試驗中發(fā)現(xiàn)的副作用及其處理狀況；（七）動物試驗試驗效果分析；（八）動物試驗試驗驗結(jié)論；第三部分：試驗（壹）試驗名稱：要可以明確體現(xiàn)試驗內(nèi)容；（二）試驗目的：要直截了當?shù)年U明為何要進行這個試驗，處理什么問題，具有什么意義；（三）試驗器材：所有儀器、材料應簡介齊全；所用材料、試劑、誘導物對動物有無危害影響闡明。（四）試驗動物的選用（動物種類，性別，體重，年齡，品系，級別，健康狀況，動物來源及其合格證號）；（五）分析也許影響到動物試驗成果精確性的原因以保證試驗成果的精確性、可靠性和反復性（環(huán)境原因；理化原因；營養(yǎng)原因；居住原因；同種動物間原因；異種動物間原因）；（六）動物試驗設計與分組（與否符合對照性、壹致性、反復性三原則；該試驗選用了什么設計措施，例如單組比較設計、配對比較設計等等；動物隨機分組措施應詳細描述，如分為兩組或者三組或者每個動物壹組時詳細的操作措施，切忌不可簡樸的“隨機”二字就帶過）。第三，試驗基本技術(shù)的描述，包括：（壹）試驗動物的抓取與固定（哺乳類與非哺乳類動物的措施不壹樣）；（二）動物的編號、標識（臨時性、半永久性及永久性標識）及去毛（剪毛法、拔毛法、剃毛法、脫毛法）；（三）若該試驗中動物需要麻醉，則采用了何種麻醉類型與措施（全身麻醉措施、局部麻醉措施）以及麻醉藥物與麻醉劑用量（揮發(fā)性麻醉劑、非揮發(fā)性麻醉劑），若過量麻醉，復蘇和急救措施是怎樣實行的；（四）動物的給藥途徑與措施：根據(jù)不壹樣的試驗目的、動物種類、藥物類型來決定動物的給藥途徑與措施；（五）動物血液的采集措施（不壹樣部位）；（六）動物多種體液的采集措施（不壹樣部位）；（七）常見觀測指標的測定與檢查措施（生理指標測定措施；生化指標測定措施；血液學指標測定與檢查措施；免疫學指標測定措施）；（八）受試動物的動物試驗檢查措施（壹般檢查內(nèi)容及措施；系統(tǒng)檢查及措施；動物臟器組織的活檢措施）。第四，試驗過程的描述，又分為藥物研究的動物試驗、免疫研究的動物試驗、有關(guān)感染研究的動物試驗、有關(guān)生殖與胚胎研究的動物試驗這幾方面。重要從詳細試驗規(guī)定，試驗準備，觀測指標以及成果分析與評價來闡明。例如在藥物長期毒性觀測的動物試驗措施中，需要對試驗規(guī)定、觀測指標和指標檢測時間與恢復期觀測三方面考慮，又如動物免疫血清的制備措施中，應對試驗準備、免疫程序與效價測定和免疫血清的采集和提純論述，再如病毒增殖的動物接種試驗裏，應當對病毒增殖的雞胚接種措施和動物感染病毒的接種措施作壹描述。第五，試驗結(jié)束後，對試驗動物的處理：（壹）若試驗動物在試驗過程中未受到大的傷害，則應對其采用福利措施善後處理，這裏就需對處理措施做描述；若產(chǎn)生的傷害使動物及其痛苦，出于人道考慮，應對其采用安樂死，因此安樂死的措施應闡明；（二）若需剖檢，應記錄剖檢的物品準備，尸體的外部檢查狀況，臟器采出與檢查措施，病理材料的采集和送檢措施以及尸體剖檢記錄。第六，對動物試驗數(shù)據(jù)的處理和分析成果。第七，通過該試驗，作者尚有什么需要值得改善，思索的地方都應闡明。附件：植入式心臟起搏器產(chǎn)品動物試驗動物試驗的基本規(guī)定：動物試驗的設計應盡量靠近該器械在人體中的預期用途。壹般認為犬模型適于用來評價起搏器。提議植入足夠數(shù)量的動物／起搏器，以便于得出有效的結(jié)論。提議與起搏器配合使用的電極需選用已通過注冊同意的電極導線，如對新起搏器無法獲得同意過的電極導線，則試驗時應考慮未經(jīng)同意的電極導線對試驗成果的影響。二、動物試驗的內(nèi)容1.研究目的⑴感知評價起搏器對心臟信號（r、p、t波和遠場信號）及噪聲的感知響應評價長期感知的穩(wěn)定性對感知的p、r波與電生理分析儀的值進行比較驗證在起搏、遙測過程中感知的精確性⑵對制造商標稱的起搏器功能指標進行評估，并對各功能指標進行動物試驗的必要性闡明。例如模式轉(zhuǎn)換、頻率適應房室期間（raav）、起搏、睡眠特性、非競爭性心房起搏、頻率等⑶起搏功能動物試驗結(jié)束後，對起搏器的輸出與起搏閾值精確性進行檢查假如制造商標稱起搏器具有奪獲管理功能，應通過診斷趨勢評估奪獲管理的運行，與手動測量比較和核查異常中斷的原因⑷電極導線阻抗測量驗證電極導線阻抗測量特性在活體環(huán)境中能按照設計運行（例如極性確認、極性配置等）⑸程控的可靠性驗證起搏器與程控儀編程通訊的可靠性，模擬實際使用的多種參數(shù)組合、參數(shù)調(diào)整⑹抗干擾試驗驗證通訊工具、家用電氣、安檢系統(tǒng)的干擾⑺植入物檢測在活體環(huán)境下手動驗證植入物性能特性⑻感染控制植入過程應按照臨床使用規(guī)定在無菌環(huán)境下實行。對可疑的植入部位的感染應通過對潛在病原體的培養(yǎng)和鑒定以進行評價⑼植入位置驗證對植入起搏器的位置確實承認采用x射線成像術(shù)證明2.動物選擇及試驗過程⑴試驗基本條件：具有外科無菌手術(shù)條件，提議采用試驗用犬。⑵模型制備:提議采用射頻消融術(shù)、化學消融或外科手術(shù)等技術(shù)建立犬?！惴渴覀鲗ё铚á！鉧vb）動物模型，提議每個型號的植入性起搏器試驗動物應在9只或以上。以體表心電圖和腔內(nèi)心電圖顯示房室分離即視作到達手術(shù)終點。兩組動物在手術(shù)後應用體表心電圖和/或holter隨訪觀測4周。模型穩(wěn)定性的評價:在手術(shù)4周後隨訪體表心電圖仍穩(wěn)定地體現(xiàn)為?！惴渴覀鲗ё铚á！鉧vb），顯示p、ors波分離。⑶起搏器植入措施及時間：按照人體臨床使用的永久性起搏器植入措施進行植入，至少植入8周。⑷當對已上市的設備增長的新功能進行動物試驗時，制造商可根據(jù)新增產(chǎn)品功能的詳細實際狀況酌情選擇試驗動物數(shù)量，不過其得到的試驗成果應能支持其設備新功能的臨床安全有效性。3.試驗需紀錄的電生理指標：檢測起搏器植入即刻及隨訪1、2、3、4周時以0.5脈寬刺激時的閾值。起搏參數(shù)及監(jiān)護參數(shù)：包括起搏器的電性能指標和起搏模式。動物的生理指標監(jiān)測及試驗後起搏器外觀和植入部位的狀況分析。三、動物試驗分析評價及結(jié)論制造商需對獲得的動物試驗數(shù)據(jù)進行最終的風險分析及評價，并得出研究結(jié)論。在試驗時應對試驗動物使用生理參數(shù)監(jiān)護儀，監(jiān)測動物的生理指標。試驗結(jié)束後，取出起搏器并對起搏器外觀和植入部位進行分析。動物心臟應被完整切離并檢查與否存在任何病變和／或損傷。提供描述手術(shù)前後動物活動狀況的摘要。提議進行如下方面評價，記錄、分析檢測數(shù)據(jù)以驗證設備的功能、特性、安全性：感知評價長期（1個月）感知的穩(wěn)定性；對感知的p、r波與電生理分析儀的值進行比較；驗證在起搏器起搏、遙測過程中的精確性；對起搏器具有的特殊功能進行評價。奪獲管理通過診斷趨勢評估心房奪獲管理、左右心室奪獲管理的運行狀況，與手動測量比較、檢查異常的原因。電極導線阻抗測量驗證長期（1個月）電極導線阻抗趨勢的穩(wěn)定性驗證電極導線測量特性在活體環(huán)境中能否按照設計運行。4.程控的可靠性驗證起搏器與程控儀編程通訊的可靠性,模擬實際使用的多種參數(shù)組合參數(shù)調(diào)整5.抗干擾試驗驗證通訊工具、家用電器、安檢系統(tǒng)等外界干擾的影響程度6.植入性檢測:在活體環(huán)境下用程控儀驗證植入物性能特性。7.感染控制植入過程中應按照臨床使用規(guī)定在無菌環(huán)境下實行.對可疑植入部位的感染通過對潛在病原體的培養(yǎng)和鑒定加以評價.8.植入部位驗證對起搏器植入部位采用x射線成像術(shù)證明確認.篇四：小學三年級科學上動物試驗匯報試驗匯報單試驗匯報單試驗匯報單試驗匯報單篇五：動物試驗匯報動物試驗（小鼠）的壹般操作技術(shù)壹目的和規(guī)定：通過實際操作，使學生掌握試驗的壹般操作措施，包括動物的抓去和固定、編號被毛的清除給藥途徑麻醉采血和處死等措施。二試驗內(nèi)容：1試驗動物的抓取2試驗動物性別、發(fā)情和配種的鑒定3試驗動物編號的標識措施4試驗動物被毛的清除術(shù)5試驗動物的給藥途徑和措施6試驗動物的麻醉7試驗動物的采血8試驗動物的處死措施9雄性不育小鼠的制備三試驗的措施1小鼠的抓?。鹤トr先用手將鼠尾提起，放在試驗臺上，輕輕拉尾，用左手拇指和食指抓住小鼠兩耳和頭頸部皮膚，將鼠置于左手中心，用左手無名指和小指按住尾巴和後肢，即可做其他試驗操作作用。2試驗動物性別、發(fā)情和配種的鑒定：1抓取小鼠後，觀測動物肛門與生殖器之間的距離。距離遠的為雄性，距離性別鑒定：○近的為雌性。成熟的雄性小鼠可看到小鼠睪丸的輪廓,雌性肛門與生殖器之間有壹無毛2動物仰臥保定，觀測乳頭。雄性乳頭不能明顯，雌性乳頭明顯。小溝?！鸢l(fā)情鑒定（陰道分泌物檢查）材料：生理鹽水，蒸餾水，顯微鏡，載玻片，細棉簽，性成熟小鼠原理：哺乳類雌性動物性成熟後出現(xiàn)情動周期，嚙齒類動物在動情周期不壹樣階段，陰道膜發(fā)生經(jīng)典的變化。操作:.用左手拇指和食指固定小鼠的頸部，將小鼠倒放在手掌上，用左手小指固定小鼠尾巴，然後用合適大小的移液器吸取20至30ul生理鹽水于小鼠陰道內(nèi)反復抽吸5次。2.將抽吸得到的液體滴在用多聚賴氨酸預先處理過（防止脫片）的載玻片上，用移液器吸頭將其均勻涂抹開。3.涂片自然干燥後，用甲醇固定3分鐘。4.待其干燥後，先用瑞氏染液染色5至8分鐘，沖洗後立即吉姆薩染液染色5至8分鐘，用水漂洗後自然干燥，待檢。5.顯微鏡下觀測陰道涂片的變化，見下圖。附：小鼠發(fā)情周期陰道細胞的變化小白鼠性周期4～5天，發(fā)情持續(xù)時間大概9～12小時或20小時，排卵是在發(fā)情開始後2～3小時。配種鑒定：○1陰道栓法