【干旱脅迫對(duì)芫荽種子萌發(fā)的影響實(shí)證探究7200字（論文）】

干旱脅迫對(duì)芫荽種子萌發(fā)的影響實(shí)證研究摘要采用紗布培養(yǎng)法和盆栽法測(cè)定分析不同濃度PEG（0、3%、6%、9%、10%）脅迫下對(duì)芫荽種子萌發(fā)（發(fā)芽率、發(fā)芽勢(shì)、發(fā)芽指標(biāo)、活力指數(shù)）、滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)（可溶性蛋白、脯氨酸）、葉綠素含量、過(guò)氧化物酶活性（POD）、過(guò)氧化氫酶活性（CAT）以及丙二醛（MDA）含量的影響。本次實(shí)驗(yàn)采用意大利進(jìn)口芫荽種子為材料，用不同濃度PEG溶液對(duì)芫荽種子進(jìn)行脅迫處理。研究表明，隨著溶液中PEG濃度的增加，各濃度實(shí)驗(yàn)組的發(fā)芽率、發(fā)芽勢(shì)、發(fā)芽指數(shù)和活力指數(shù)等實(shí)驗(yàn)指標(biāo)均受到不同程度的抑制，在3%和6%的濃度下脅迫較小，在9%和12%的濃度下脅迫程度增強(qiáng)。就種子的發(fā)芽率和發(fā)芽勢(shì)來(lái)看，不同濃度PEG溶液處理下芫荽種子的發(fā)芽率和發(fā)芽勢(shì)在統(tǒng)計(jì)學(xué)上均存在極顯著差異（P<0.01）。隨著PEG濃度的增加，過(guò)氧化氫酶（CAT）活性，丙二醛（MDA），可溶性蛋白和過(guò)氧化物酶活性（POD）活性均有明顯升高，以及葉綠素含量具有明顯降低；脯氨酸含量先增高后緩慢降低，在統(tǒng)計(jì)學(xué)上均存在極顯著差異（P<0.01）關(guān)鍵詞：PEG；芫荽種子；脅迫；萌發(fā)；發(fā)芽率目錄TOC\o"1-3"\h\u1前言 -14-1前言1.1課題來(lái)源及意義芫荽(CorianderHerb)芫荽，別名胡荽、香菜。為雙子葉植物綱、傘形目、傘形科、芫荽[1]屬的一個(gè)植物種，有強(qiáng)烈的氣味。是湯、飲中的佐料，多用于做涼拌菜佐料，或燙料、面類菜中提味用。芫荽的生長(zhǎng)環(huán)境較嚴(yán)格，在種植該蔬菜時(shí)要注意保濕，還具有藥用價(jià)值：起表出體外又可開(kāi)胃消郁還可止痛解毒。目前，干旱已經(jīng)對(duì)全球作物造成傷害，最終形成巨額損失，極大地影響了農(nóng)業(yè)的可持續(xù)發(fā)展，還是導(dǎo)致農(nóng)作物減產(chǎn)的原因，所以干旱對(duì)植株的生長(zhǎng)造成了極大的影響。當(dāng)土壤中PEG含量大于3%時(shí)，大多植物的根部都會(huì)受到影響導(dǎo)致其無(wú)法呼吸從而無(wú)法獲取土中的營(yíng)養(yǎng)，甚至威脅到人類社會(huì)的可持續(xù)發(fā)展。所以，在目前全球變化領(lǐng)域上重點(diǎn)研究的問(wèn)題就是去開(kāi)展干旱對(duì)陸地生態(tài)系統(tǒng)影響的研究。造成干旱的原因有很多方面，包括一些自然因素[1]，人為因素之類的[2]。具體可分為以下幾個(gè)方面：氣象原因，長(zhǎng)期沒(méi)有降水或降水比較少等氣象條件是造成干旱的原因之一。人口因素，全球人口數(shù)量不斷增加導(dǎo)致生活和生產(chǎn)用水大量增加，造成一些地區(qū)水資源過(guò)度開(kāi)發(fā)，超出當(dāng)?shù)厮Y源的承載能力。1.2國(guó)內(nèi)外發(fā)展?fàn)顩r及研究背景近年來(lái),根據(jù)相關(guān)研究發(fā)現(xiàn)，芫荽具有較為全面的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)，各類營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)比例均衡，富含多種營(yíng)養(yǎng)，并且還具一定的藥用價(jià)值[1]。經(jīng)過(guò)研究表明，干旱極大的抑制了植株的生長(zhǎng)發(fā)育、光合作用、呼吸作用以及氮代謝等,植物在干旱環(huán)境下存活的關(guān)鍵是水分。國(guó)內(nèi)外學(xué)者對(duì)于干旱對(duì)植物的影響已經(jīng)做過(guò)較多研究。曹世宇等人以苦菜為材料，研究表明輕度的干旱脅迫及脅迫在10d左右，能夠保證植株正常生長(zhǎng)且增強(qiáng)代謝酚類等功能物質(zhì)，以提升苦菜的品質(zhì)[2]；呂新云等人以大豆籽粒為材料,.研究干旱脅迫下不同品種大豆籽粒發(fā)育期蛋白質(zhì)含量積累的研究，從而使大豆生長(zhǎng)飽滿提高大豆產(chǎn)量[3]；鐘磊等人以肉桂幼苗為材料，研究表明在輕度干旱脅迫下肉桂幼苗通過(guò)提高滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的積累和增強(qiáng)抗氧化酶活性從而減少對(duì)植物細(xì)胞的傷害，以此保障肉桂的正常發(fā)育，隨著干旱程度的不斷加深，葉綠素含量降低，相對(duì)含水量下降，滲透調(diào)節(jié)系統(tǒng)被破壞，使細(xì)胞膜受損，導(dǎo)致抗氧化酶活性降低，從而引起活性氧和NO的大量積累[4]。1.3研究目標(biāo)和內(nèi)容1.3.1研究目標(biāo)實(shí)驗(yàn)將采用不同濃度（0、3%、6%、9%、12%）的PEG溶液對(duì)種子進(jìn)行PEG脅迫處理，觀察種子萌發(fā)情況，測(cè)定種子的發(fā)芽率、發(fā)芽勢(shì)、發(fā)芽指數(shù)、活力指數(shù)、鮮重、根系MDA和H2O2酶影響。以及萌發(fā)后幼苗葉片的葉綠素、滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)可溶性蛋白、可溶性糖和脯氨酸、過(guò)氧化物酶（POD）活性、超氧化物歧化酶活性（SOD）、丙二醛的含量，分析數(shù)據(jù)，明確其影響，為芫荽在PEG模擬干旱脅迫的種植生產(chǎn)上提供理論基礎(chǔ)。1.3.2研究?jī)?nèi)容探究不同濃度(0、3%、6%、9%、12%)PEG脅迫對(duì)芫荽種子萌發(fā)的影響。2實(shí)驗(yàn)材料與方法 2.1實(shí)驗(yàn)材料2.1.1供試種子供試種子為芫荽種子（意大利進(jìn)口芫荽種子）2.1.2實(shí)驗(yàn)試劑表2-1主要試劑實(shí)驗(yàn)試劑出廠PEG600無(wú)錫市晶科化工公司無(wú)水乙醇冰乙酸磷酸石英砂碳酸鈣草酸鈉天津市匯杭化工科技有限公司天津市北辰方正試劑廠天津市致遠(yuǎn)化學(xué)試劑有限公司天津市大茂化學(xué)試劑廠天津市致遠(yuǎn)化學(xué)試劑有限公司天津市博迪化工有限公司2.1.3實(shí)驗(yàn)儀器表2-2主要儀器的型號(hào)實(shí)驗(yàn)儀器型號(hào)培養(yǎng)皿φ=9CM濾紙φ=9CM（中速）100張/盒恒溫培養(yǎng)箱Spx-800B-G型光照培養(yǎng)箱2.2實(shí)驗(yàn)方法2.2.1種子萌發(fā)選取成熟、顆粒飽滿的芫荽種子50粒，經(jīng)過(guò)0.5%的次氯酸鈉消毒20min，并用蒸餾水反復(fù)沖洗5次，用濾紙將其表面水分吸干，采用紗布培養(yǎng)法[9]，在培養(yǎng)皿中放入3層已經(jīng)消毒的紗布，均勻播種于培養(yǎng)皿中，對(duì)芫荽種子進(jìn)行萌發(fā)實(shí)驗(yàn)。用PEG配置不同濃度的PEG溶液（0、3%、6%、9%、12%），其中不加PEG只加蒸餾水的為對(duì)照。每一濃度設(shè)置3個(gè)重復(fù)組，放入恒溫培養(yǎng)箱中，23±2℃恒溫下進(jìn)行培養(yǎng)，光/暗周期為16/8h。后期通過(guò)稱重法來(lái)補(bǔ)充蒸餾水以保證培養(yǎng)皿中水分體積不變。2.2.2植株培養(yǎng)采用盆栽法進(jìn)行芫荽幼苗培養(yǎng)。將芫荽種子放置在鋪有3層濕紗布的培養(yǎng)皿中，發(fā)芽后待幼苗長(zhǎng)到兩片真葉時(shí)，選生長(zhǎng)狀況一致、健康的芫荽幼苗移栽于花盆中，待幼苗成活、長(zhǎng)勢(shì)穩(wěn)定后進(jìn)行處理，用不同濃度的PEG溶液（0、3%、6%、9%、12%）進(jìn)行干旱脅迫培養(yǎng)，處理9d后測(cè)定各項(xiàng)生理指標(biāo)[7]，每一個(gè)處理設(shè)置三個(gè)重復(fù)。2.2.3種子萌發(fā)指標(biāo)測(cè)定從種子萌發(fā)的第一天起，每天觀測(cè)并記錄種子萌發(fā)情況（胚根突破種皮為種子發(fā)芽標(biāo)準(zhǔn)），第9d時(shí)測(cè)定種子發(fā)芽勢(shì)，第12d時(shí)統(tǒng)計(jì)種子的發(fā)芽率[10]、發(fā)芽指數(shù)和活力指數(shù)，并測(cè)定種子的鮮重，萌發(fā)結(jié)束標(biāo)志為連續(xù)三天沒(méi)有新種子發(fā)芽。發(fā)芽率（GR）=萌發(fā)結(jié)束后總發(fā)芽數(shù)發(fā)芽勢(shì)（GE）=萌發(fā)高峰期總發(fā)芽數(shù)發(fā)芽指數(shù)GI活力指數(shù)VI）=種子平均鮮重（S）?發(fā)芽指數(shù)(GI)2.2.4植株生理指標(biāo)測(cè)定在干旱脅迫處理7d后，隨機(jī)抽取各處理組的15株幼苗，清洗并去除多余水分，進(jìn)行生理指標(biāo)測(cè)定。其中用愈創(chuàng)木酚法測(cè)定POD活性[11]；紫外線吸收法測(cè)定CAT活性；硫代巴比妥酸法測(cè)定MDA含量；酸性茚三酮顯色法測(cè)定Pro含量，葉綠素采用乙醇提取，采用考馬斯亮藍(lán)G-250法測(cè)定可溶性蛋白。2.3.2數(shù)據(jù)處理方法使用MicrosoftExcel2010進(jìn)行統(tǒng)計(jì)作圖，采用SPSS19.0軟件進(jìn)行單因素方差分析和多重比較及相關(guān)分析，最終得出結(jié)論。1、葉綠素含量的測(cè)定：（1）葉綠素[11]的提?。哼x取0.5g芫荽幼苗的葉片剪碎，放入研缽中，添加3ml乙醇、石英砂、碳酸鈣進(jìn)行研磨，將研磨后的勻漿放入離心管前再加入5ml乙醇并且洗滌后轉(zhuǎn)入10ml離心管中，用4000r/min離心10分鐘后，用其上清液使用乙醇定容到10毫升。（2）吸光值的測(cè)量：取提取液0.5ml，使用乙醇稀釋后進(jìn)行比色，在A663、645nm處測(cè)的吸光值進(jìn)行計(jì)算。2、過(guò)氧化物酶的活性的測(cè)定：（1）粗酶液[12]地提?。合?g芫荽幼苗的葉片中加入磷酸氫二鉀放置于研缽中進(jìn)行研磨，放入離心機(jī)4000r/min離心15分鐘，研缽中剩余的殘?jiān)谟昧姿釟涠浱崛∫淮?，將兩次的上清液進(jìn)行合并。（2）酶活性的測(cè)定[13]：將一只比色杯加入混合液4ml磷酸氫二鉀當(dāng)做對(duì)照組，另一只加入3ml混合液1ml酶液，測(cè)定在470nm處的吸光值，在測(cè)量的過(guò)程中，每間隔一分鐘進(jìn)行讀數(shù)，將數(shù)據(jù)代入公式計(jì)算。過(guò)氧化物酶活性=?A470?V1W?V2?0.01?t△A470—為反映時(shí)間內(nèi)吸光值的變化W—為所稱樣品重（g）T—為反應(yīng)時(shí)間（min）V1—為提取酶液總體積mlV2—為測(cè)定時(shí)所取酶液體積ml3、丙二醛含量的測(cè)定：（1）MDA[15]（丙二醛）的提?。簩?g芫荽幼苗葉片、2mlTCA和石英砂全部放入研缽中進(jìn)行研磨，將勻漿定容后放入離心機(jī)中，設(shè)定轉(zhuǎn)速4000r/min，離心10分鐘，最后取上清液為提取液。（2）顯色反應(yīng)[14]與測(cè)定：將第一步所述的上清液加入TBA混合后放入沸水中進(jìn)行反應(yīng)，取出混合液后再次離心，將離心后的上清液放入分光光度計(jì)下，分別測(cè)其在A600nm、A532nm和A450nm處的吸光值，將數(shù)值代入公式進(jìn)行計(jì)算。C=6.45?A532?A600?0.56?A450Y=CVC—MDA濃度μmol/lV—提取液體積mlW—植物組織鮮重g（取0.1g）Y—MDA含量μmol/g4、脯氨酸含量的測(cè)定：(1)將0.5g的芫荽幼苗葉片、10ml乙醇放入研缽中進(jìn)行研磨，將研磨后所得的勻漿用乙醇進(jìn)行洗滌后放入試管中加蓋并且加入少量的活性炭，放在遮光處一小時(shí)。提取物經(jīng)過(guò)過(guò)濾，加入1g人工沸石15min，在室溫離心3000r/min進(jìn)行5min。(2)標(biāo)準(zhǔn)曲線地制作:以100g/ml的脯氨酸為溶劑，制備0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10g/ml的標(biāo)準(zhǔn)溶液。2ml標(biāo)準(zhǔn)溶液、2ml磺基水楊酸、2ml冰醋酸和4ml酸性茚三酮[16]加入試管中，在沸水浴中一小時(shí)進(jìn)行顯色，冷卻后加入4ml甲苯，在渦流儀上震蕩30秒、測(cè)量吸收值在520nm處，以吸收值為坐標(biāo)和濃度為坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。(3)選取上清液2ml，并向其中加入2ml冰醋酸、2ml茚三酮溶液使其混合，在沸水中加熱20分鐘，待其冷卻后在515nm處測(cè)量光密度。脯氨酸含量（μg/g）=C?5C—由標(biāo)準(zhǔn)曲線查的待測(cè)樣品脯氨酸含量（μg）W—植物樣品重量（g）5—提取脯氨酸時(shí)80%乙醇體積（10mL）與測(cè)定時(shí)所取樣品液體積5、可溶性蛋白含量的測(cè)定[13]：（1）取2g芫荽葉片和2ml的蒸餾水放入研缽中進(jìn)行研磨，之后將勻漿倒入離心管中，并洗滌液放入離心管等待0.5-1h，進(jìn)行4000r/min的轉(zhuǎn)速離心20分鐘，取出上清液，轉(zhuǎn)移到10ml容量瓶，用蒸餾水進(jìn)行定容，得到的樣品為所需的提取液。（2）標(biāo)準(zhǔn)曲線[13]的制作：將一系列不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)牛血清蛋白溶液和2ml燃料試劑混合，在A595nm處用分光光度計(jì)測(cè)定，根據(jù)測(cè)定出來(lái)的結(jié)果，制作出蛋白質(zhì)濃度的標(biāo)準(zhǔn)曲線。（3）測(cè)定：采用另外兩個(gè)10毫升試管，取0.1毫升提取物放入試管中，加入5毫升考馬斯亮藍(lán)G-250[14]進(jìn)行混合，靜置3分鐘后用分光光度計(jì)測(cè)定在595nm處的值，通過(guò)上述所制作的標(biāo)準(zhǔn)曲線進(jìn)行查的。

6、過(guò)氧化氫酶活性的測(cè)定：選用0.5g香菜葉片和3ml磷酸緩沖液進(jìn)行研磨，研磨后轉(zhuǎn)入容量瓶中，并且用磷酸緩沖液進(jìn)行洗滌，定容到25ml后放入離心機(jī)以6000r/min離心15分鐘，將所得到的上清液預(yù)熱，加入過(guò)氧化氫0.3ml后開(kāi)始記錄時(shí)間，并且快速在240nm處進(jìn)行比色，測(cè)出吸光值，每隔一分鐘進(jìn)行一次讀數(shù)，總共四次。管號(hào)S1S2(對(duì)照)粗酶液（ml）0.20.2（ph7.8PBS）PH7.8磷酸（ml）1.51.5蒸餾水（ml）1.01.0表2-3試劑含量CAT活性=?A240?VtVt—粗酶提取液總體積（ml）；V1—測(cè)定用粗酶液體積（ml）；FW—樣品鮮重（g）；0.1—A240每下降0.1為1個(gè)酶活單位（u）；t—加過(guò)氧化氫到最后一次讀數(shù)時(shí)間（min）3結(jié)果與分析3.1PEG脅迫對(duì)芫荽種子萌發(fā)的影響表3-1PEG脅迫對(duì)芫荽種子萌發(fā)的各項(xiàng)實(shí)驗(yàn)指標(biāo)PEG濃度（%）發(fā)芽率（%）發(fā)芽勢(shì)（%）發(fā)芽指數(shù)活力指數(shù)069.7±1.513a71.9±2.152a7.23±0.551a0.57±0.044a362.33±3.924a58.8±2.987a6.28±0.497a0.43±0.034b644.53±4.917b47.77±7.032b5.20±1.671b3.67±1.170c931.17±6.426c35.24±9.917c3.93±2.150c2.75±1.505d1226.7±3.045c29.47±8.617c3.15±1.900d2.46±1.482e注：在表同一列中，小寫(xiě)字母相同代表兩者之間無(wú)顯著差異（P＞0.05），小寫(xiě)字母不同時(shí)代表兩者之間差異顯著（P＜0.05）

結(jié)論：由表3-1可知，發(fā)芽率在統(tǒng)計(jì)學(xué)上存在極顯著差異（P<0.01）.各組實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)表明發(fā)芽勢(shì)、發(fā)芽率發(fā)芽指數(shù)以及活力指數(shù)總體呈現(xiàn)下降趨勢(shì).對(duì)照組與3%濃度PEG脅迫處理的芫荽種子無(wú)顯著差異（P＞0.05）；對(duì)照組與6%濃度PEG脅迫處理的芫荽種子差異顯著（P＜0.01）；對(duì)照組與9%濃度PEG脅迫處理的芫荽種子差異顯著（P＜0.01）；對(duì)照組與12%濃度PEG脅迫處理的芫荽種子發(fā)芽率之間存在極顯著差異（P＜0.01）；同理分析可以分析其他不同濃度間的顯著關(guān)系。3.1.1PEG脅迫對(duì)芫荽中丙二醛含量的影響圖1不同濃度PEG溶液處理下芫荽丙二醛含量變化由圖1得，隨著PEG濃度的增大，芫荽的丙二醛含量總體出現(xiàn)上升趨勢(shì)。與對(duì)照組相比，PEG濃度為3%、6%、9%、12%中丙二醛的含量分別增加了50%、60%、75%、95%。說(shuō)明干旱脅迫的加深可以增加植物體內(nèi)丙二醛的含量。3.1.2PEG脅迫對(duì)芫荽中脯氨酸含量的影響

圖2不同濃度PEG溶液處理下芫荽脯氨酸含量變化由圖2得出，隨著PEG濃度的增大，芫荽的脯氨酸含量先是出現(xiàn)上升趨勢(shì)然后又呈現(xiàn)下降趨勢(shì)。在PEG為9%的時(shí)候，脯氨酸含量最高，幾乎是對(duì)照組的兩倍；當(dāng)PEG濃度繼續(xù)增加時(shí)，脯氨酸含量受到了影響，使其含量降低，但是其含量仍高于對(duì)照組。實(shí)驗(yàn)表明植物脯氨酸含量隨著干旱脅迫的加深在不斷增加，但是當(dāng)增加到一定程度時(shí)，植物中的脯氨酸含量達(dá)到最大值，繼續(xù)加強(qiáng)干旱脅迫就會(huì)使脯氨酸含量降低。3.1.3PEG脅迫對(duì)芫荽中可溶性蛋白含量的影響圖3不同濃度PEG溶液處理下芫荽可溶性蛋白含量變化由圖3得出，隨著PEG濃度的增大，芫荽的可溶性蛋白含量是出現(xiàn)上升趨勢(shì)然的。與對(duì)照組相比，在PEG為12%的時(shí)候，可溶性蛋白含量最高，幾乎是對(duì)照組的2.5倍。說(shuō)明干旱脅迫對(duì)植物中可溶性蛋白的含量是有影響的，隨著干旱程度的加深，其含量也不斷增加。3.1.4PEG脅迫對(duì)芫荽中葉綠素含量的影響圖4不同濃度PEG溶液處理下芫荽葉綠素含量變化由圖4得出，隨著PEG濃度的增大，芫荽中葉綠素含量是出現(xiàn)下降趨勢(shì)的。在對(duì)照組中，葉綠素的含量最高，但是隨著PEG濃度的不斷增加，與對(duì)照組相比，葉綠素含量呈下降趨勢(shì)，說(shuō)明干旱脅迫嚴(yán)重影響了植物的生長(zhǎng)。3.1.5PEG脅迫對(duì)芫荽中過(guò)氧化物酶活性含量的影響 圖5不同濃度PEG溶液處理下芫荽過(guò)氧化物酶活性變化 由圖5得，隨著PEG濃度的增大，芫荽的過(guò)氧化物酶活性總體出現(xiàn)上升趨勢(shì)。在對(duì)照組中，過(guò)氧化物酶活性最低。說(shuō)明干旱脅迫的加深可以使植物體內(nèi)過(guò)氧化物酶活性增加。3.1.6PEG脅迫對(duì)芫荽中過(guò)氧化氫酶活性的影響 圖6不同濃度PEG溶液處理下芫荽種子過(guò)氧化氫酶活性變化 由圖6可知，與對(duì)照組相比，隨著PEG濃度的不斷增大，過(guò)氧化氫酶活性是上升趨勢(shì)，但不是非常明顯，趨勢(shì)較平緩。說(shuō)明干旱脅迫對(duì)植物過(guò)氧化氫酶活性有影響但是影響不是非常明顯。4結(jié)論經(jīng)過(guò)研究得出芫荽種子的發(fā)芽率總體為下降趨勢(shì)，芫荽種子生長(zhǎng)隨著PEG濃度的增加其抑制作用也在增強(qiáng)，幼苗生長(zhǎng)指標(biāo)和生理指標(biāo)都呈一定規(guī)律的變化，如株高、根長(zhǎng)、鮮重、根鮮重都有明顯的降低，說(shuō)明干旱脅迫破壞了芫荽幼苗的代謝平衡，且在一定范圍內(nèi)，干旱越嚴(yán)重變化越明顯，而芫荽幼苗則通過(guò)提高抗氧化酶的活性、脯氨酸的含量以及抑制MDA的合成來(lái)減小干旱脅迫造成的危害；經(jīng)過(guò)實(shí)驗(yàn)表明，隨著PEG濃度的增加，過(guò)氧化氫酶（CAT）活性，丙二醛（MDA），可溶性蛋白和過(guò)氧化物酶活性（POD）活性均有明顯升高，以及葉綠素含量具有明顯降低；脯氨酸含量先增高后緩慢降低，當(dāng)脯氨酸含量在PEG濃度為3%-9%的含量在明顯升高，但是當(dāng)PEG濃度為12%時(shí)，其含量在明顯降低。綜上所訴，不同濃度PEG溶液處理組發(fā)芽指數(shù)在統(tǒng)計(jì)學(xué)上存在極顯著差異。5展望種子的萌發(fā)是植物整個(gè)生命活動(dòng)的起點(diǎn)，這一時(shí)期如果受到PEG脅迫會(huì)對(duì)種子生長(zhǎng)產(chǎn)生影響，本實(shí)驗(yàn)通過(guò)配制不同濃度PEG溶液來(lái)模擬干旱脅迫，從而對(duì)芫荽種子的萌發(fā)情況進(jìn)行研究。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明隨著PEG濃度的升高，對(duì)芫荽種子萌發(fā)的抑制作用也更加明顯，此次試驗(yàn)為芫荽種子在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)上的應(yīng)用提供了理論基礎(chǔ)和實(shí)踐依據(jù)。目前，干旱成為草地生態(tài)系統(tǒng)面臨的主要問(wèn)題，尋找一種促進(jìn)種子萌發(fā)并且提高出苗率對(duì)生產(chǎn)實(shí)踐有著重要的意義，但由于本實(shí)驗(yàn)對(duì)幼苗的生理指標(biāo)測(cè)定的不全，仍需要進(jìn)一步的研究。參考文獻(xiàn)[1]徐悅,單承鶯,馬世宏,等.芫荽的研究進(jìn)展與開(kāi)發(fā)展望[J].中國(guó)野生植物資源,2017,36(001):40-44.[2]曹世宇,張效寧,翟錫嬌,張偉興,劉婷婷,衛(wèi)旭陽(yáng),鄭少文,雷逢進(jìn).不同程度干旱脅迫對(duì)苦菜生理生化及功能物質(zhì)含量的影響[J/OL].食品與發(fā)酵工業(yè):1-9[2021-05-20]./10.13995/ki.11-1802/ts.026410.[3]]呂新云,趙晶云,任小俊,馬俊奎.干旱脅迫下不同品種大豆籽粒發(fā)育期蛋白質(zhì)含量積累的研究[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2021,49(05):50-52+55.[4]鐘磊,廖沛然,劉長(zhǎng)征,錢家萍,何婉聰,羅碧,楊全.干旱脅迫對(duì)肉桂幼苗生理生化及化學(xué)成分的影響[J].中國(guó)中藥雜志,2021,46(09):2158-2166.[5]鄒成林,翟瑞寧,欽潔,譚華,黃愛(ài)花,韋新興,黃開(kāi)健,莫潤(rùn)秀,黃艷芬.不同濃度PEG模擬干旱脅迫對(duì)玉米種子萌發(fā)特性的影響[J/OL].玉米科學(xué):1-16[2021-05-21]./kcms/detail/22.1201.s.20210412.1032.003.htm[6]許健,于海林,孫善文,王俊強(qiáng),韓業(yè)輝,于運(yùn)凱,周超,蘭宏宇,丁昕穎.PEG模擬干旱脅迫對(duì)不同品種玉米萌發(fā)期的影響[J].中國(guó)種業(yè),2021(01):61-64.[7]汪俊峰,余敏芬,李東賓,吳婷婷,鄭炳松,閆道良.褪黑素對(duì)模擬干旱脅迫下北美紅櫟幼樹(shù)幼樹(shù)光合性能及抗氧化酶系統(tǒng)的影響[J].生態(tài)科學(xué),2021,40(02):167-174.[8]許健,于海林,孫善文,王俊強(qiáng),韓業(yè)輝,于運(yùn)凱,周超,蘭宏宇,丁昕穎.PEG模擬干旱脅迫對(duì)不同品種玉米萌發(fā)期的影響[J].中國(guó)種業(yè),2021(01):61-64.[9]李誠(chéng),王苗,郭鳳霞,趙小榮.模擬干旱脅迫對(duì)瞿麥種子萌發(fā)的影響[J].農(nóng)業(yè)與技術(shù),2020,40(20):30-32.[10]趙璞,溫之雨,董文琦,田玉,劉京寶,馬春紅.PEG-