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文檔簡介
植物組織中總氮、蛋白氮含量的測定(微量凱氏法)氮素代謝在植物的新陳代謝中占主導(dǎo)地位。植物組織中有機(jī)氰化物的含量隨著植物的生理狀況及環(huán)境條件的不同而發(fā)生變化。所以測定其含量,對(duì)研究植物的氮素吸收、運(yùn)輸和代謝規(guī)律,以及確定農(nóng)產(chǎn)品的品質(zhì)、營養(yǎng)價(jià)值等具有一定意義。一、原理植物組織中的有機(jī)氰化物包括蛋白氮和非蛋白氮。非蛋白氮主要是氨基酸和酰胺,以及少量無機(jī)氮化物,是可溶于三氯乙酸溶液的小分子??杉尤肴纫宜?,使其最終濃度為5%,將蛋白質(zhì)沉淀出來,分別測定總氮、蛋白氮或非蛋白氮,通常只測定總氮或蛋白氮。將植物材料與濃硫酸共熱,硫酸分解為二氧化硫、水和原子態(tài)氧,并將有機(jī)物氧化分解成二氧化碳和水;而其中的氮轉(zhuǎn)變成氨,并進(jìn)一步生成硫酸銨。為了加速有機(jī)物質(zhì)的分解,在消化時(shí)通常加入多種催化劑,如硫酸銅、硫酸鉀和硒粉等。消化完成后、加入過量的NaOH,將NH4+轉(zhuǎn)變成NH3,通過蒸餾把NH3,導(dǎo)入過量的硼酸溶液中,再用標(biāo)準(zhǔn)鹽酸滴定,直到硼酸溶液恢復(fù)原來的氫離子濃度。滴定消耗的標(biāo)準(zhǔn)鹽酸摩爾數(shù)即為NH3的摩爾數(shù),通過計(jì)算,可得出含氮量。以甘氨酸為例,上述反應(yīng)如下:蛋白質(zhì)是一類復(fù)雜的含氮化合物,每種蛋白質(zhì)都有其恒定的含氮量(約在14%~18%,平均約含氯16%),所以,可用蛋白氮的量乘以6.25(100/16=6.25),算出蛋白質(zhì)的含量。若以總氮含量乘以6.25,就是樣品的粗蛋白含量。試樣中若含有硝態(tài)氮時(shí),首先要使硝態(tài)氮還原為銨態(tài)氮,可加入水楊酸和硫代硫酸鈉,使硝態(tài)氮與水楊酸在室溫下作用生成硝基水楊酸,再用硫代硫酸鈉(Na2S2O3)或Zn粉使硝基水楊酸轉(zhuǎn)化為銨鹽。由于水楊酸與硫代硫酸鈉會(huì)消耗一部分硫酸,所以消化時(shí)的硫酸用量要酌情增加。二、材料、儀器設(shè)備及試劑(一)材料各種干燥、粉碎、過篩(60~80目)的植物樣品。(二)儀器設(shè)備消化管,微量凱氏定氮蒸餾裝置一套(圖2-30-1),三角燒瓶,微量滴定管,量筒,容量瓶,燒杯,移液管等。試劑濃硫酸(AR級(jí))。(2)5%三氯乙酸。(3)30%過氧化氫。(4)40%NaOH。(5)混合催化劑:K2SO4:CuSO4·5H2O=3:1或Se:CuSO2·5H,0:KSO4=1:5:50,充分研細(xì)、混勻,貯于廣口瓶中備用。(6)混合指示劑:取200mL0.1%甲基紅酒精溶液和50mL0.1%甲烯藍(lán)酒精溶液混合,貯于棕色瓶中備用。本指示劑在pH=5.2時(shí)為紫紅色,pH=5.4時(shí)為暗灰或褐色,pH=5.6時(shí)為綠色,變色點(diǎn)pT為5.4,變色范圍為pH5.2~5.6,非常靈敏。(7)2%硼酸溶液:按100:1的體積比加入混合指示劑,搖勻后溶液呈紫紅色即可。(8)0.0100mol/L的標(biāo)準(zhǔn)鹽酸溶液:取比重1.19的分析純鹽酸8.4mL,加無氨蒸餾水稀釋至1L,再以硼酸鈉標(biāo)定。標(biāo)定方法:精確稱取四硼酸鈉(Na2B407·10H20)0.50g,溶于50mL蒸餾水中,加混合指示劑2~3滴,用配好的鹽酸溶液滴至淺紅色。精確計(jì)算鹽酸的濃度并稀釋成0.0100mol/L。標(biāo)準(zhǔn)硫酸銨溶液(約含N0.6mg/mL):取適量硫酸銨(A.R)于110℃烘箱內(nèi)烘30min后取出,置于干燥器中冷卻后,準(zhǔn)確稱取2.829g,加無氨蒸餾水溶解并定容至1000mL。三、實(shí)驗(yàn)步驟(一)樣品提取分離準(zhǔn)確稱取烘至恒重的樣品0.1000g~0.5000g(依樣品含氮量而定,含氮1~3mg為宜),置10mL離心管中,加入5mL5%三氯乙酸,90℃水浴中浸提15min,不時(shí)攪拌,取出后用少量蒸餾水沖洗玻棒,待溶液冷卻后,4000r/min離心15min,上清液棄去。并用5%三氯乙酸洗沉淀2~3次,離心,棄去上清液,最后用蒸餾水將沉淀無損地洗入鋪有濾紙的漏斗上,去掉濾液后,將沉淀和濾紙?jiān)?0℃下烘干,用于蛋白氮的測定。(二)樣品的消化取4支消化管編號(hào)。1號(hào)管直接放入稱好的材料用于測定總氮,2號(hào)管放入上述烘干的濾紙和沉淀,用于蛋白氮的測定,3號(hào)管放入同樣濾紙一張,4號(hào)管不加任何樣品作為空白對(duì)照、注意將樣品放入消化管底部。向各消化管加濃硫酸5mL,混合催化劑0.3~0.5g,將樣品浸泡數(shù)小時(shí)或放置過夜后,在管口蓋一小漏斗,放在遠(yuǎn)紅外消煮爐上加熱消化。開始時(shí)溫度可稍低,以防止內(nèi)容物上升至管口。泡沫多時(shí),可從小漏斗加入2~3滴無水乙醇。到管口出現(xiàn)白色霧狀物時(shí),泡沫已不再產(chǎn)生,此時(shí)可逐漸升溫,使內(nèi)容物達(dá)到微沸,直到消化液變?yōu)榍宄和该鳛橹?。消化過程中,若在消化管上部發(fā)現(xiàn)有黑色顆粒時(shí),應(yīng)小心地轉(zhuǎn)動(dòng)消化管,用消化液將它沖洗下來,以保證樣品消化完全。消化過程約需2~3h。(三)定容消化完畢,待溶液冷卻后,沿管壁仔細(xì)加入10mL左右無氨蒸餾水,以沖洗管壁,再將消化液小心轉(zhuǎn)入100ml.容量瓶中。以無氨水少量多次沖洗消化管,洗滌液并入容量瓶。冷卻后用無氮水定容至刻度,混勻備用。(四)蒸餾及滴定蒸餾及滴定過程可分以下幾步進(jìn)行;1.儀器的洗滌先經(jīng)一般洗滌后,還要用水蒸氣洗滌。可按下列方法進(jìn)行蒸氣洗滌。先在蒸氣發(fā)生器中加入2/3體積的蒸餾水(事先加入幾滴濃硫酸,使其酸化,加入甲基紅指示劑,并加入少許沸石或毛細(xì)玻璃管以防止爆沸)。打開漏斗下的夾子,用電爐或酒精爐加熱至沸騰,使水蒸氣通入儀器的各個(gè)部分,以達(dá)到清洗的目的。在冷凝管下端放置一個(gè)三角瓶接收冷凝水,然后關(guān)緊漏斗下的夾子,繼續(xù)用蒸氣洗滌5min。沖洗完畢,夾緊蒸氣發(fā)生器與收集器之間的連接橡膠管,蒸餾瓶中的廢液由于減壓而倒吸進(jìn)入收集器,打開收集器下端的活塞排除廢液。如此清洗2~3次,再在冷凝管下端換放一個(gè)盛有硼酸-指示劑混合液的三角瓶,使冷凝管下口完全浸沒在液面以下0.5cm處,蒸餾1~2min,觀察三角瓶內(nèi)的溶液是否變色。如不變色,表示蒸餾裝置內(nèi)部已洗干凈。移去三角瓶,再蒸餾1~2min,用蒸餾水沖洗冷凝管下口,關(guān)閉電爐,儀器即可供測定樣品使用(圖2-30-1)。2.標(biāo)準(zhǔn)硫酸銨測定為了熟悉蒸餾和滴定的操作技術(shù),并檢驗(yàn)實(shí)驗(yàn)的準(zhǔn)確性,找出系統(tǒng)誤差、常用已知濃度的標(biāo)準(zhǔn)硫酸銨測試三次。在三角瓶中加入20mL硼酸-指示劑混合液,將此三角瓶承接在冷凝管下端,并使冷凝管的出口浸入溶液中。注意在加樣前務(wù)必打開收集器活塞,以免三角瓶內(nèi)液體倒吸。準(zhǔn)確吸取2mL硫酸銨標(biāo)準(zhǔn)溶液,加到漏斗中,小心打開漏斗下的夾子,使硫酸銨緩慢流入蒸餾瓶中,用少量蒸餾水洗滌漏斗三次(每次約1~2mL),一并放入蒸餾瓶中。然后用量筒向漏斗里加入10mL40%的氫氧化鈉溶液、使堿液慢慢流入蒸餾瓶中,待堿液尚未流完時(shí),將夾子夾緊,向漏斗中加約5mL蒸餾水,再慢慢打開夾子,使一半蒸餾水流入蒸溜瓶,另一半留在漏斗中作水封。關(guān)閉收集器活塞,加熱蒸汽發(fā)生器,開始蒸餾。三角瓶中硼酸-指示劑混合液由于吸收了氨,由紫紅色變成綠色。自變色時(shí)起,再蒸餾3~5min后,移動(dòng)三角瓶,使瓶內(nèi)液面離開冷凝管下口約1cm,并用少量蒸餾水洗滌冷凝管下口,繼續(xù)蒸餾1min,移開三角瓶,蓋上表面皿。按上述方法再用標(biāo)準(zhǔn)硫酸銨測定兩次。另取2ml蒸餾水代替硫酸銨溶液進(jìn)行空白測定。將各次蒸餾的三角瓶一起滴定。取三次滴定的平均值進(jìn)行含氮量的計(jì)算,并將結(jié)果與標(biāo)準(zhǔn)值(即加入硫酸銨中的含氮量)進(jìn)行比較,得到氮的回收率。每次蒸餾完畢,移去電爐,夾緊蒸氣發(fā)生器與收集器之間的橡膠管,排除廢液,并用蒸餾水沖洗漏斗幾次,廢液排出,如此反復(fù)沖洗干凈后,即可進(jìn)行下一個(gè)樣品的蒸餾。3.樣品及空白的蒸餾準(zhǔn)確吸取稀釋后的消化液5mL,通過漏斗加入到蒸餾瓶中,再用少量蒸餾水洗滌漏斗3次,其余操作按標(biāo)準(zhǔn)硫酸銨的蒸餾進(jìn)行。4.滴定樣品與空白蒸餾完畢后,一起進(jìn)行滴定。選用微量酸式滴定管,加入0.0100mol/L標(biāo)準(zhǔn)鹽酸溶液進(jìn)行滴定,直至三角瓶中硼酸-指示劑混合液由綠色變回淡紫紅色即為滴定終點(diǎn),記錄鹽酸的用量。四、結(jié)果計(jì)算含氮量為0.6mg/mL;V為標(biāo)準(zhǔn)硫酸銨的滴定值/mL;V。為空白的滴定值/mL;V,為蛋白氮的滴
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