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文檔簡介

1、染色體導(dǎo)入系在QTL定位中的應(yīng)用S20135420 何濤 摘要:染色體導(dǎo)入系是指借助分子輔助選擇方法,通過連續(xù)回交和自交構(gòu)建的只含有一個或幾個導(dǎo)入片段與受體親本不同,其他遺傳背景與受體親本完全相同的家系或品系。相對于傳統(tǒng)的遺傳群體,導(dǎo)入系群體大大降低了供體材料的遺傳背景的干擾,提高了QTL分析的靈敏度和準(zhǔn)確性,是QTL鑒定、精細(xì)定位、互作分析、圖位克隆、性狀改良及雜種優(yōu)勢利用和基因表達分析的理想的實驗材料。本文對染色體導(dǎo)入系在QTL定位中的應(yīng)用進行綜述。關(guān)鍵詞:染色體、導(dǎo)入系、QTL作物絕大多數(shù)經(jīng)濟性狀都屬于數(shù)量性狀,因此研究數(shù)量性狀的遺傳機制對于作物遺傳育種有非常重要的意義。而準(zhǔn)確鑒定和定位

2、QTL是進行數(shù)量性狀遺傳效應(yīng)分析、作物雜種優(yōu)勢利用研究以及分子克隆的基礎(chǔ)。但由于用于QTL鑒定和定位的傳統(tǒng)分析群體遺傳背景復(fù)雜,很難對單個QTL進行準(zhǔn)確鑒定和定位1。所以一個良好的定位及分析群體是進行數(shù)量性狀遺傳研究的必須條件,本文對染色體導(dǎo)入系在QTL定位中的研究情況進行綜述。1 QTLQTL(quantitative trait locus),即數(shù)量性狀基因座,指控制數(shù)量性狀的基因在基因組中的位置。QTL 定位就是采用類似單基因定位的方法將QTL 定位在遺傳圖譜上,確定QTL 與遺傳標(biāo)記間的距離(以重組率表示)。作物許多重要的農(nóng)藝性狀如品質(zhì)、產(chǎn)量和抗逆性等都屬于復(fù)雜數(shù)量性狀。作物QTL 的

3、不斷深入研究揭示了這些復(fù)雜數(shù)量性狀的遺傳基礎(chǔ)。促進了這些性狀的遺傳改良,并使其分子剖析成為可能2-4。1.1 QTL的定位群體QTL定位的精度在很大程度上取決于遺傳圖譜的標(biāo)記飽和度和分離群體的重組信息量。根據(jù)分離群體的特點,作圖群體分為:1.臨時性群體。如F2及其衍生的F3、F4家系,回交群體(BC)等。F2群體是常用的作圖群體,該群體容易配制且包含親本任意一個位點的所有基因型,更適合于估算基因效應(yīng)和檢測不同類型的互作。但F2群體的一個不足之處是存在雜合基因型。對于顯性標(biāo)記,將無法識別顯性純合基因型和雜合基因型。F2群體的另一個缺點是不易長期保存?;亟蝗后w每一分離的基因座只有兩種基因型,直接反

4、映F1代配子的分離比例,因而其作圖效率最高,但缺點是不易保存。2.永久性分離群體。主要包括重組近交系(RILs)、雙單倍體群體(DH)、回交近交系(BILs)以及近等基因系(NILs)。它們共同的特點是系內(nèi)基因型是一致的,而系間基因型是不同的,系間除少數(shù)甚至一個染色體區(qū)段存在差異外,其余絕大部分染色體區(qū)段完全相同。因此,它們可以把種子分散到各個不同環(huán)境做重復(fù)試驗以增加QTL檢測的準(zhǔn)確性,特別是NIL,由于消除了其他背景的干擾,甚至是主效QTL對微效QTL的掩蓋,因此QTL定位效率很高5。但也正由于這類群體系內(nèi)基因型的一致性,因而不能估算顯性效應(yīng);而且,除非群體足夠大,否則它們提供的信息不如F2

5、等群體。如DH群體,由于在染色體加倍過程中可能存在基因丟失,因此構(gòu)建分子標(biāo)記連鎖圖時盡量不用這種群體。1.2 QTL定位分子標(biāo)記目前,研究所采用的分子標(biāo)記主要有基于分子雜交的RFLP(Restriction Fragment Length Polymorphism)6,基于PCR擴增的RAPD(Random Amplified Polymorphic DNA)7、SSR(Simple Sequence Repeat )8、AFLP(Amplified Fragment Length Polymorphism)9以及單核苷酸多態(tài)性標(biāo)記SNP( Single Nucleotide Polymorp

6、hism)10和表達序列標(biāo)簽EST(Expressed Sequence Tags)11等等。此外近年來還發(fā)展了序列標(biāo)志位點(Sequence tagged Sites,STS)12、轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子分子標(biāo)記(Sequence specific Amplification Polymorphism,S-SAP)13、IRAP(Inter retrotransposon Amplified Polymorphism)14、REMAP(Retrotransposon microsatellite Amplification Polymorphis)15和RBIP(Retrotrans Poson-bas

7、ed Insertion Polymorphism)15等。2 染色體導(dǎo)入系染色體導(dǎo)入系(chromosome introgression lines,CILs),又稱為染色體片段代換系 (chromosome segment substitution lines,CSSLs)或代換系(substitution lines,SLs),指只含有一個或幾個導(dǎo)入片段與受體親本不同,其他遺傳背景與受體親本完全相同的家系或品系。其中只含一個染色體片段與受體親本不同的,稱為單片段代換系(single segment substitution line,SSSL),這是最理想的代換系。相對于傳統(tǒng)的遺傳群體,

8、導(dǎo)入系群體大大降低了供體材料的遺傳背景的干擾,提高了QTL分析的靈敏度和準(zhǔn)確性,是QTL鑒定、精細(xì)定位、互作分析、圖位克隆、性狀改良及雜種優(yōu)勢利用和基因表達分析的理想的實驗材料。2.1染色體導(dǎo)入系的構(gòu)建 染色體導(dǎo)入系的構(gòu)建主要是通過多代回交來建立。先將供體親本與受體親本雜交獲得F1,再以受體親本作為輪回親本,經(jīng)過多代回交并結(jié)合MAS技術(shù)篩選構(gòu)建大規(guī)模染色體片段導(dǎo)入系或代換系16。 龍萍17利用我國和國際水稻所的21個優(yōu)良品種做輪回親本、來源于24個國家和地區(qū)的188份品種資源做供體親本,通過雜交、連續(xù)回交結(jié)合性狀篩選,構(gòu)建了近6萬份具有輪回親本遺傳背景的近等基因?qū)胂?。Li等對2萬個水稻ILs

9、的定向選擇,鑒定得到了許多來源不同的新基因和耐旱、耐漬、特異的農(nóng)藝性狀和生理性狀的導(dǎo)入系,如273個耐旱ILs,175個耐鹽ILs和203個抗飛虱的ILs。2.2染色體導(dǎo)入系在QTL中的應(yīng)用目前主要農(nóng)作物中,水稻、玉米、棉花、大豆等均已建立了導(dǎo)入系或代換系群體,并在QTL定位中得到了大量應(yīng)用。在水稻上,Li等18在定位水稻發(fā)芽率的研究中,將粳稻品種Nipponbare的染色體片段導(dǎo)入珍秈97,得到了143個染色體代換系群體,在2、5、6、10號染色體上定位出4個相關(guān)QTL。再通過利用CSSL的F2群體,在2號染色體上證實了一個主效QTL(qGR2),并從中找到一個在種子中優(yōu)先表達的候選基因Os

10、MADS29。楊雷等19以帶有晚抽穗基因的單片段代換系為供體,以華粳秈74為受體構(gòu)建單片段代換系,發(fā)展F2次級分離群體,定位出水稻第6染色體上存在與抽穗期相關(guān)的QTL,并鑒定出抽穗期由單基因控制,早抽穗表現(xiàn)為顯性。在此基礎(chǔ)上,Wang20等、Pei21等,進一步精細(xì)定位了qHD4-1和qHD8-1兩個QTL。趙芳明等22以 l6個單片段代換系(SSSL)及15個雙片段代換系分析了水稻粒型性狀QTL的加性及上位性效應(yīng),共檢測到9個水稻粒型性狀QTL和7對雙基因互作,揭示了同一粒長 QTL與不同單片段代換系聚合時會產(chǎn)生不同的互作效應(yīng)。李生強等23利用22個單片段代換系,共鑒定出22個與粒形相關(guān)的Q

11、TL,包括7個粒長QTL,6個粒寬QTL,5個谷粒長寬比QTL和4個粒厚QTL。朱金燕等24以85個單片段代換系為材料定位了24個水稻株高QTL。任德勇等25則利用染色體片段代換系進行了水稻穗長QTL加性及其上位性效應(yīng)分析。在棉花上,Wang P等26以海島棉(G.barbadense)TM-1為受體親本,陸地棉(G.barbadense)Hai7124為供體親本,構(gòu)建染色體片段導(dǎo)入系(CHSLs)。該群體由包含298個導(dǎo)入片段的174個群體組成,其中86個群體(49.1%)為單片段導(dǎo)入。導(dǎo)入片段平均長度為16.7 cM,總長度為2948.7 cM,覆蓋了83.3%的4倍體棉花基因組。利用此群

12、體,通過對4個環(huán)境下收集的數(shù)據(jù)進行綜合分析,發(fā)現(xiàn)了與棉花纖維質(zhì)量相關(guān)的43個加性效應(yīng)QTL和6個上位性效應(yīng)QTL,其中有6個QTL在各環(huán)境中均表現(xiàn)穩(wěn)定。在玉米上,Chung等27用Tx303和B73為親本構(gòu)建的82個代換系群體對玉米大斑病進行QTL定位和分析。得到了兩個可靠表達的QTL:qNLB1.06和qNLB1.02。在溫室與田間的重復(fù)試驗表明:qNLB1.06減少真菌侵入的效率,qNLB1.02增加侵染位點附近胼胝質(zhì)和多酚的積累,阻礙菌絲向維管束中生長。除了對玉米大斑病的抗性,qNLB1.02還與玉米細(xì)菌性枯萎病和普通銹病有關(guān),而qNLB1.06也增強對玉米細(xì)菌性枯萎病的抗性。Evert

13、on A. Brenner等28將31個外源玉米種質(zhì)導(dǎo)入PHZ51和PB47中,得到50個BC1DH群體,含有199個SNP位點分布在整個基因組,其中平均11.8%的標(biāo)記來自于外源供體等位基因。這50個BC1DH群體包含了輪回親本92.9%的基因組。利用此群體,通過關(guān)聯(lián)分析揭示了細(xì)胞壁消化、倒伏和花期推遲有關(guān)的數(shù)量性狀多態(tài)性。邢向茹等29以Ye478及Ye478為背景的5個染色體片段導(dǎo)人系為材料,研究了低氮脅迫下產(chǎn)量和苗期性狀的影響。展望理想狀態(tài)下,整個導(dǎo)入系覆蓋了受體親本的全基因組,不同導(dǎo)入系帶有供體親本基因組不同片段。與輪回親本比較,兩個株系之間性狀的任何顯著差異都是因為導(dǎo)入片段在供體與受

14、體間存在的等位差異,因而可有效消除基因組上其他位點因分離而產(chǎn)生的遺傳差異,提高QTL定位的準(zhǔn)確性和穩(wěn)定性。染色體導(dǎo)入系為更深入研究QTL提供了良好的條件,特別是染色體單片段代換系,在QTL的鑒定和精細(xì)定位,QTL遺傳效應(yīng)分析及QTL克隆以及應(yīng)用于品種改良和雜種優(yōu)勢利用的研究中具有巨大的優(yōu)越性,為我們的研究帶來極大的方便。參考文獻1.Darvasi A., Weinreb A., Minke V., Weller J.I., and Soller M. Detecting marker-QTL linkage and estimating QTL gene effect and map loca

15、tion using a saturated genetic map. Genetics, 1993, 134: 943-951.2.Zhu H, Hayes P, Kleinhofs A, Kudrna D, Liu Z, PromL , Steffenson B , Toojinda T, Vivar H, Gilchrist L , 1999. Does function follow form Principal QTLs for Fusarium head blight (FHB ) resistance are coincident with QTLs for infloresce

16、nce traits and plant height in a doubled-haploid population of barley. Theoretical and Applied Genetics, 99 (78 ): 122112323.YanJ Q, He C X,Benmoussa M, Wu P, Zhu J, 1998. Quantitative trait loci analysisfor the developmental behavior of tiller number in rice (Oryza sativa L.). Theoretical and Appli

17、ed Genetic, 97 (12) : 2672744.YanJ Q, ZhouJ , He C X, MebroukB , Wu P, 1998b. Molecular dissectionof developmental behaviorof plant height in rice (Oryza sativa L. ). Genetics, 150: 125712655.朱軍.運用混合線性模型定位復(fù)雜數(shù)量性狀基因的方法J. 浙江大學(xué)學(xué)報,1999, 333: 327 33516.GRODZICKER T, WII LIAMS J. SHARP P. SAMBROOK J. Physi

18、cal mapping of temperature-sensitive mutations of adenovirusesJ. Cold Spring Harbor. Syrup. Quant. Biol.1974.39:439446. 7.WILLIAMS J G K, KUBEI IK A R, LIVAK K J, et al. DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers J. Nucleic.Acids.Res. , 1 990,18:6 531-6535. 8.AKKA

19、YA M S. BHAGWAT A A. CREGAN P B. Length polymorphisms of simple sequence repeat DNA in soybeanJ. Genera , 1992, 132:1131-1139. 9.VOS P, HOGERS R, BLEEKER M, et a1. AFI P:A new technique for DNA fingerprintingJ.Nucl.Acid.Res.1995, 23:4407-4414. 10.CHO R J, MINDRINOS M, RICHARDS D R. el a1. Genome wid

20、e mapping with biallelic markers in Arabidopsis thalianaJ. Nature Genetics。1 999, 23:203-207. 11.ADAMS M D, KEI I EY J M , GOCAYNE J D, el al. Complementary DNA sequencing:expressed sequence tags and human genome projectJ. Science, 1991, 252(5013):1651-1656. 12.OLSON M, HOOD L, CANTOR C, et al. A co

21、mmon language for physical mapping of the human genomeJ. SciemP, 1989, 245(4925):1434-1435.13.WAUGH R, MCLEAN K , FI AVEI 1 A J, el al. Genetic distribution of BARE-1-like retrotransposable elements in the barley genome revealed by sequence-specific amplification polymorphism(S-SAP)J. Mo1. Gen. Gene

22、t. , 1997, 253:687-694. 14.KALENDAR R, GROB T, REGINA M, el al. IRAP and REMAP:two new retrotransposon-based DNA finger-printing techniquesJ. Theor.App1.Genet. , 1999, 98:704-711. 15.FLAVELL A J,KNOX M R, PEARCE S R, ELLIS T H N. Retrotransposon-based insertion polymorphism (RBIP)for high throghput

23、marker analysisJ. Plant. J, 1998, 16:643-650. 16.Eshed Y; Zamir D. An introgression line population of Lycopersicon pennellii in the cultivated tomato enables the identification and fine mapping of yield-associated QTL J. GENETICS, 1995, 141(3): 1147-1162.17.龍萍, 楊華, 余四斌. 水稻導(dǎo)入系群體的構(gòu)建與保存J. 植物遺傳資源學(xué)報, 20

24、09, 10(1): 51-54.18.Li M, Sun P, Zhou H, Chen S, Yu S (2011) Identification of quantitative trait loci associated with germination using chromosome segment substitution lines of rice (Oryza sativa L.). TAG Theoretical and Applied Genetics 123: 411-420.19.楊雷, 柳絮, 吳振映, 王文英, 姚方印, et al. (2011) 水稻單片段代換系

25、抽穗期qtl鑒定及遺傳分析J. 山東農(nóng)業(yè)科學(xué).20.Wang B, Zhu C, Liu X, Wang W, Ding H, et al. (2011) Fine Mapping of qHD4-1, a QTL Controlling the Heading Date, to a 20.7-kb DNA Fragment in Rice (Oryza sativa L.)J. Plant Molecular Biology Reporter 29: 702-713.21.Pei C, Liu X, Wang W, Ding H, Jiang M, et al. (2011) Fine Ma

26、pping of qHD8-1, a QTL Controlling the Heading Date, to a 26-kb DNA Fragment in Rice (Oryza sativa L.)J. Journal of Plant Biology 54: 190-198.22.趙芳明, 張桂權(quán), 曾瑞珍, 楊正林, 凌英華, et al. (2011) 基于單片段代換系的水稻粒型qtl加性及上位性效應(yīng)分析J. 作物學(xué)報.23.李生強, 崔國昆, 關(guān)成冉, 王俊, 梁國華 (2011) 基于水稻單片段代換系的粒形qtl定位. 中國水稻科學(xué).24.朱金燕, 嵇朝球, 周勇, 王軍, 王中德, et al

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